27.12.2012 Views

1/2006 - Potravinárstvo

1/2006 - Potravinárstvo

1/2006 - Potravinárstvo

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

<strong>Potravinárstvo</strong><br />

Tab. 1: (pokračovanie)<br />

Organizmus Oxidovaný eikozanoid Metódy analýzy Literatúra<br />

Acanthamoeba castellanii prostaglandíny chromatografia HADAS (1988)<br />

Tetrahymena species PGB, E, F RIA CSABA a NAGY (1987)<br />

Aloe vera PGE2, TXB2, iné prostanoidy rádiometrická analýza AFZAL et al., (1991)<br />

Sója<br />

15S-HPETE, PGF2α pri špec.<br />

podmienkach - LX<br />

RIA, GC-MS GARDNER (1991)<br />

Hmyz hlavne PGE2, PGF2α hlavne GC-MS BLOMQUIST et al., (1991)<br />

Tethys fimbria<br />

tri PG-1,15-laktóny PGE3 a<br />

HPLC, NMR DIMARZO et al., (1991)<br />

Morské živočíchy a iné vyššie a<br />

nižšie stavovce<br />

PGE 2<br />

PG merané ako PGE 2 alebo<br />

PGE 3 a iné<br />

MATERIÁL A METÓDY<br />

10 g sójových bôbov sme nechali cez noc namočených vo<br />

vode (90 ml) pri laboratórnej teplote. Napučanú sóju sme<br />

oddelili dekantáciou a zhomogenizovali v 80 ml 0,05M<br />

fosfátového tlmivého roztoku (KH2PO4 6,80 g/l, NaOH 1,7<br />

g/l, pH=7,7, teplota 5-10°C) 3 min v mixéri. Homogenát<br />

sme kvantitatívne preniesli do odmerného valca a tlmivým<br />

roztokom, doplnili na objem 100 ml. Do troch 250 ml<br />

kultivačných baniek sme odpipetovali po 1ml zriedeného<br />

homogenátu, pridali 49 ml tlmivého roztoku a pH upravili<br />

na 7,4. pomocou 1M NaOH. V slepom pokuse sme<br />

homogenát v banke povarili 2 min. Po ochladení na 0-5°C<br />

sme pridali 90 µl etanolu a 3 µl AA. Pri transformačnom<br />

experimente sme k homogenátu v banke, ktorý bol<br />

ochladený na 0-5°C pridali 90 µl etanolu a 3 µl AA.<br />

Všetky banky sme potom umiestnili na 3 h na závesnú<br />

rotačnú trepačku (3 Hz) a inkubovali pri 28°C. Po<br />

skončení transformácie sme obsah baniek okyslili 5M HCl<br />

na pH = 3 a extrahovali dichlórmetánom (2 x 50 ml). Po<br />

prefiltrovaní extraktu cez bezvodý síran sodný sme<br />

rozpúšťadlo odparili za vákua a odparok rozpustili v 1 ml<br />

chloroformu. 500 µl tohto roztoku sme delili na tenkej<br />

vrstve (Silufol, 20 x 20 cm) v sústave n-heptán : dietyléter<br />

: kyselina octová = 70:30:1 (v/v). Látky, ktoré ostali na<br />

štarte boli zo silikagélu extrahované zmesou metanol :<br />

chloroform = 2:1 (v/v), (3 x 6 ml) a rozpúšťadlo sme<br />

odfúkali v prúde dusíka. Získané metabolity sme po<br />

derivatizácii analyzovali systémom GC/MS. Eikozanoidy<br />

boli analyzované po prevedení hydroxy-, keto- a<br />

karboxylových skupín na trimetylsilyléterové, Ometyloxímové<br />

a metylesterové deriváty. Derivatizáciu<br />

sme uskutočňovali nasledovným postupom (PACE-<br />

ASCIAK, 1989):<br />

Metylestery: Ku vzorke zbavenej rozpúšťadiel sme pridali<br />

0.5 ml roztoku diazometánu (pripraveného z N-metyl-Nnitrózo-p-toluénsulfónamidu<br />

v zmesi éter : metanol (9:1,<br />

v/v). Obsah sme dôkladne premiešali a nechali reagovať<br />

275<br />

TMSO OTMS<br />

323<br />

173<br />

425<br />

COOCH 3<br />

Sumárny vzorec: C 27 H 52 O 4 Si 2<br />

Mh = 496<br />

bioanalýza (svalstvo žalúdka<br />

potkana)<br />

GERWICK (1993)<br />

30 min pri laboratórnej teplote. Po skončení reakcie boli<br />

rozpúšťadlá odfúkané dusíkom do sucha.<br />

O-metyloxímy: K suchej vzorke sme pridali 50 µl roztoku<br />

metoxyamínhydrochloridu v pyridíne (20 mg/ml) a<br />

inkubovali 1h pri 60°C (prípadne nechali reagovať cez noc<br />

pri laboratórnej teplote). Po skončení reakcie sme<br />

rozpúšťadlo odfúkali dusíkom, pridali 20 µl vody a<br />

metylestery-metyloxímy sme extrahovali 2 x 50 µl<br />

etylacetátu. Rozpúšťadlo sme opäť odfúkali v prúde<br />

dusíka.<br />

Trimetylsilylétery: K suchej vzorke sme pridali 100 µl bis-<br />

(trimetylsilyl)-trifluoroacetamidu (BSTFA) a inkubovali<br />

15 min pri 60°C (alebo nechali reagovať cez noc pri<br />

laboratórnej teplote). Po skončení reakcie sme BSTFA<br />

odfúkali prúdom dusíka. Derivatizovanú vzorku sme<br />

rozpustili v heptáne a analyzovali metódou GC/MS za<br />

týchto podmienok:<br />

Prístroj: GC/MS 25RFA (Kratos Analytical, Manchester)<br />

Kolóna: CP Sil 8CB (Supelco, USA), dĺžka - 25 m,<br />

vnútorný priemer - 0.32 mm,<br />

hrúbka fázy – 0,12 µm<br />

Prietok He: 1 ml/min<br />

Nástrek: 1 µl heptánového roztoku, splitless (30 s)<br />

Teplota injektora: 250°C<br />

Teplotný program: 80°C (1 min), 10°C/min - 250°C<br />

Spôsob ionizácie: elektrónovým nárazom (EI), energia<br />

elektrónov: 70 eV<br />

Teplota iónového zdroja: 240°C<br />

Rýchlosť scanu (rozvoja spektra): 0,6s/dekáda<br />

VÝSLEDKY A DISKUSIA<br />

Keďže sójový homogenát intenzívne transformoval<br />

exogénnu AA na polárne, PG-podobné látky (po 1 h<br />

biotransformácie bol stupeň premeny AA asi 21%,)<br />

pokúsili sme sa identifikovať jednotlivé sójové AA<br />

metabolity. Interpretácia záznamu GC/MS vyhovuje<br />

fragmentačným schémam uvedený nižšie.<br />

Obr. 1: Fragmentačná schéma pre MeTMS derivát 14,15-<br />

dihydroxy-5,8,11-eikozatriénovej kyseliny. Majoritné ióny<br />

sú podčiarknuté.<br />

ročník 4 83 1/2010

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!