CamSep 3 2
308 P.M. Wantusiak, P. Piszcz, M. Skwarek, B.K. Głód Rys. 9. Zależność CPA od stosunku objętościowego miodu do wody, użytych w procesie fermentacji. Badane miody pitne (według wzrostu CPA): czwórniak, trójniak, dwójniak, półtorak. Fig. 9. Correlation between CPA and the ratio honey/water, used in fermentation process. CPA oznaczono również w ziołomiodach. Największą zdolnością antyoksydacyjną charakteryzuje się ziołomiód pokrzywowy (rysunek 10), natomiast pomiar całkowitej zawartości polifenoli (tabela 2) klasyfikuje go na ostatnim miejscu. Okazuje się, że polifenole nie wpływają na wartości CPA ziołomiodów w sposób liniowy, tak jak w przypadku miodów i miodów pitnych, a CPA pochodzące od nie-polifenoli ma dużo większy wpływ. Rys. 10. CPA ziołomiodów o stężeniu 1 mg/ml. Wyniki przedstawiają średnie ± SD z 3 niezależnych doświadczeń. Warunki chromatograficzne jak na rysunku 1. Fig. 10. TAPs of the various herbhoneys (final concentration 1 mg/ml). Data are presented as means from 3 independent experiments ± SD. Chromatographic conditions as on figure 1. Camera Separatoria Vol. 3, No 2/2011
Właściwości antyoksydacyjne miodów wyznaczone metodami chromatograficznymi 309 Tabela 2. Całkowita zawartość polifenoli w ziołomiodach, w przeliczeniu na ekwiwalent kwasu galusowego (GA) w 1 g. Wyniki przedstawiają średnie ± SD z 3 niezależnych doświadczeń. Table 2. Total polyphenols content in herbhoneys (expressed as gallic acid equivalent). The data represent means ± SD of 3 independent experiments. Odmiana miodu mg GA/ 1 g miodu z propolisem 0,53±0,06 z pyłkiem 0,43±0,04 sosnowy 0,36±0,02 aloesowy 0,33±0,03 głogowy 0,27±0,03 aroniowy 0,25±0,02 pokrzywowy 0,23±0,02 Antyoksydanty oznaczać można elektrochemicznie (reakcja utleniania), a więc również stosując detektor elektrochemiczny po ich chromatograficznym rozdziale. W pracy zaproponowano alternatywną metodę pomiaru CPA – pomiar całkowitego pola powierzchni wszystkich pików zarejestrowanych na detektorze amperometrycznym (CPA ED ). W tym przypadku antyoksydanty nie są utleniane wygenerowanym rodnikiem, jak w opisywanej do tej pory metodzie, a na powierzchni elektrody. Do badań zastosowano elektrodę z węgla szklistego, dogodną do pracy w środowisku wodnym. Olbrzymią zaletą tej metody jest możliwość dokonywania pomiarów przy różnych potencjałach elektrody pracującej (rysunek 11). W pewnym sensie może to symulować oddziaływanie badanych próbek z różnymi rodnikami. Związki dające piki przy niskich potencjałach są silnymi antyoksydantami, przy wysokich – słabymi. Pomiary przedstawione w pracy wykonywane były w układzie faz odwróconych. Retencja w tym przypadku jest wprost proporcjonalna do hydrofobowości próbki, która jest wprost proporcjonalna do jej pola powierzchni cząsteczkowej, a odwrotnie proporcjonalna do polarności (określonej np. przez moment dipolowy lub stałą dysocjacji). Oznacz to, że CPA ED , można odnieść do niskocząsteczkowych, polarnych związków, wymywanych w objętości martwej kolumny oraz niepolarnych dużych związków organicznych [29]. Vol. 3, No 2/2011 Camera Separatoria
- Page 19 and 20: Vol. 3, No 2/2012 Camera Separatori
- Page 21 and 22: Vol. 3, No 2/2012 Camera Separatori
- Page 23 and 24: Techniki i metody chromatografii ci
- Page 25 and 26: Vol. 3, No 2/2012 Camera Separatori
- Page 27 and 28: Vol. 3, No 2/2012 Camera Separatori
- Page 29 and 30: Techniki i metody chromatografii ci
- Page 31 and 32: Techniki i metody chromatografii ci
- Page 33 and 34: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 35 and 36: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 37 and 38: Badania emisji lotnych związków o
- Page 39 and 40: Badania emisji lotnych związków o
- Page 41 and 42: Badania emisji lotnych związków o
- Page 43 and 44: Badania emisji lotnych związków o
- Page 45 and 46: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 47 and 48: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 49 and 50: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 51 and 52: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 53 and 54: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 55 and 56: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 57 and 58: Opracowanie optymalnych warunków r
- Page 59 and 60: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 61 and 62: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 63 and 64: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 65 and 66: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 67 and 68: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 69: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 73 and 74: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 75 and 76: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 77 and 78: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 79 and 80: Właściwości antyoksydacyjne miod
- Page 81 and 82: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 83 and 84: Nowa metoda rozdzielania składnik
- Page 85 and 86: Nowa metoda rozdzielania składnik
- Page 87 and 88: Nowa metoda rozdzielania składnik
- Page 89 and 90: Nowa metoda rozdzielania składnik
- Page 91 and 92: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 93 and 94: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 95 and 96: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 97 and 98: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 99 and 100: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 101 and 102: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 103 and 104: Zastosowanie pakietów oprogramowan
- Page 105 and 106: CAMERA SEPARATORIA previously POST
- Page 107 and 108: Instrukcje dla autorów 345 Rysunki
- Page 109 and 110: Instrukcje dla autorów 347 Instruc
- Page 111 and 112: Instrukcje dla autorów 349 print o
Właściwości antyoksydacyjne miodów wyznaczone metodami chromatograficznymi<br />
309<br />
Tabela 2. Całkowita zawartość polifenoli w ziołomiodach, w przeliczeniu na<br />
ekwiwalent kwasu galusowego (GA) w 1 g. Wyniki przedstawiają<br />
średnie ± SD z 3 niezależnych doświadczeń.<br />
Table 2. Total polyphenols content in herbhoneys (expressed as gallic<br />
acid equivalent). The data represent means ± SD of 3 independent<br />
experiments.<br />
Odmiana miodu<br />
mg GA/ 1 g miodu<br />
z propolisem 0,53±0,06<br />
z pyłkiem 0,43±0,04<br />
sosnowy 0,36±0,02<br />
aloesowy 0,33±0,03<br />
głogowy 0,27±0,03<br />
aroniowy 0,25±0,02<br />
pokrzywowy 0,23±0,02<br />
Antyoksydanty oznaczać można elektrochemicznie (reakcja utleniania),<br />
a więc również stosując detektor elektrochemiczny po ich chromatograficznym<br />
rozdziale. W pracy zaproponowano alternatywną metodę pomiaru<br />
CPA – pomiar całkowitego pola powierzchni wszystkich pików zarejestrowanych<br />
na detektorze amperometrycznym (CPA ED ). W tym przypadku antyoksydanty<br />
nie są utleniane wygenerowanym rodnikiem, jak w opisywanej do tej<br />
pory metodzie, a na powierzchni elektrody. Do badań zastosowano elektrodę<br />
z węgla szklistego, dogodną do pracy w środowisku wodnym. Olbrzymią<br />
zaletą tej metody jest możliwość dokonywania pomiarów przy różnych potencjałach<br />
elektrody pracującej (rysunek 11). W pewnym sensie może to<br />
symulować oddziaływanie badanych próbek z różnymi rodnikami. Związki<br />
dające piki przy niskich potencjałach są silnymi antyoksydantami, przy wysokich<br />
– słabymi. Pomiary przedstawione w pracy wykonywane były w układzie<br />
faz odwróconych. Retencja w tym przypadku jest wprost proporcjonalna<br />
do hydrofobowości próbki, która jest wprost proporcjonalna do jej pola<br />
powierzchni cząsteczkowej, a odwrotnie proporcjonalna do polarności (określonej<br />
np. przez moment dipolowy lub stałą dysocjacji). Oznacz to, że<br />
CPA ED , można odnieść do niskocząsteczkowych, polarnych związków, wymywanych<br />
w objętości martwej kolumny oraz niepolarnych dużych związków<br />
organicznych [29].<br />
Vol. 3, No 2/2011<br />
Camera Separatoria