Farm Przegl Nauk, 2010, 7nością: cytokin (np. TNF-α), mitogenów (np. anti-CD2, anti-CD3), bakterii (endotoksyny Staphylococcus aureus, Mycobacteriumtuberculosis), wirusów (np. HTLV-1, HBV), leków (np.cykloheksamid) i innych czynników np. stresu oksydacyjnegoczy związków przeciwnowotworowych [19-25]. AktywacjaNF-κB zachodzi w ciągu kilku minut po ekspozycji na czynnikindukujący, zatem nie wymaga syntezy białek de novo. Procesten polega na fosforylacji IκB (inhibitora NF-kB) co prowadzido ich ubikwitynacji i oddysocjowania od NF-κB. AktywnyNF-κB ulega translokacji z cytoplazmy do jądra komórkowego,gdzie pobudza transkrypcję odpowiednich genów [26-28].Wpływ kamptotecyny na ekspresję NF-κB nie jestznany. Wysunięto przypuszczenie, że potencjalnym punktemuchwytu inhibitorowego działania tego alkaloiduna biosyntezę kolagenu może być czynnik transkrypcyjnyNF-κB. Ocenie poddano ekspresję NF-κB, receptoraβ 1-integrynowego oraz biosyntezę kolagenu w fibroblastachskóry ludzkiej poddanych działaniu kamptotecyny.Materiały i metodyMateriałyL-prolina, kolagenaza bakteryjna typu VII, trypsyna, pożywkaDMEM, kamptotecyna - Sigma, USA, płodowa surowicabydlęca – Gibco, USA, L-5[ 3 H] prolina (28 Ci/mmol), Amersham,U.K. Przeciwciała poliklonalne królicze przeciw NFκB,β-aktynie, receptorowi β1-integrynowemu, przeciwciała drugorzędoweznakowane fosfatazą, Santa Gruz, USA. Fibroblasty –American Type Culture Collection, Rockville, USA.MetodyPrzygotowanie hodowli fibroblastów.Fibroblasty skóry ludzkiej hodowano w DMEM z dodatkiem10 % płodowej surowicy bydlęcej (FBS), 2 mmol/lglutaminy, 50 µg/ml penicyliny, 50 µg/ml streptomycynyw temperaturze 37 o C, w atmosferze 5 % CO 2. Fibroblastyprzenoszono z butelek „Costar” do 6 oczkowych płytek„Costar” stosując bufor fosforanowy z dodatkiem0,05 % trypsyny i 0,02 % EDTA. Komórki liczono w hemocytometrzei przenoszono w ilości 1x10 5 komórek na oczkow 1 ml pożywki hodowlanej. Pożywkę hodowlaną wymienianona świeżą, co 48 godzin. Fibroblasty osiągały stan inhibicjikontaktowej w 6 dniu wzrostu. W większości przypadkówkomórki takie użyto do dalszych doświadczeń. Do badańużywano komórek pomiędzy 8 i 14 pasażem. Fibroblastyw stanie inhibicji kontaktowej płukano trzykrotnie 0,15 mol/lNaCl, zawieszano w 0,15 mol/l NaCl i wirowano przy obrotach200 x g, a supernatant odrzucono. Następnie, odwirowanekomórki zawieszono w 0,3 ml 0,05 mol/l buforu Tris-HClo pH 7,8 i poddano działaniu ultradźwięków trzykrotnie po10 sekund w temp. 0 o C. Próby wirowano przy 16.000 x g wtemp. 0 o C przez 30 minut. W uzyskanym supernatancie oznaczonobiałko i użyto do dalszych doświadczeń.Test cytotoksycznościPomiar cytotoksyczności przeprowadzono według metodyopisanej przez Carmichael’a [29]. Oceniono żywotnośćkomórek przy użyciu soli tetrazolinowej (MTT). W żywychkomórkach barwnik ten ulega konwersji do purpurowegoformazonu pod wpływem mitochondrialnych dehydrogenaz.W martwych komórkach konwersja ta nie zachodzi.Komórki w stanie inhibicji kontaktowej inkubowano w pożywcezawierającej równe stężenia badanego związku przez24 godziny w inkubatorze z CO 2w temp. 37 o C. Następniepodłoże usunięto, komórki przepłukano 3 x 1 ml PBS, dodano1 ml PBS oraz 50µl MTT o stężeniu 5 mg/ml i kontynuowanoinkubację przez 4 godziny. Po tym czasie usuniętomedium i dodano do komórek 1 ml 0,1 mol/l kwasu solnegow absolutnym izopropanolu. Po ok. 10 minutach, w lizaciekomórek mierzono absorbancję przy 570 nm i 630 nm. Odwartości absorbancji przy 570 nm odjęto wartość absorbancjitła (630nm). Różnicę wartości absorbancji uzyskanąw hodowlach komórek kontrolnych przyjęto za 100%. Posłużyłaona za wartość porównawczą względem komórek inkubowanychw obecności kamptotecyny. Przeżywalność tychkomórek przedstawiono jako procent wartości kontrolnej.Oznaczanie zawartości białkaBiałko zawarte w supernatancie homogenatów komórkowychoznaczano metodą Lowry i wsp. [30].Elektroforetyczny rozdział białek na żelu poliakrylamidowymz SDSBadane próby zawierające 20 µg białka rozpuszczonow buforze 0,125 mol/l Tris-HCl o pH 6,8 zawierającym 3 %SDS, 20 % glicerol i 0,1 % błękit bromofenolowy. Próbkipoddano rozdziałowi elektroforetycznemu na żelu poliakryloamidowymzłożonym z 10 % żelu zagęszczającego(zawierającego 0,4 % SDS, 1,5 mol/l bufor Tris-HCl o pH8,8) i 6 % żelu rozdzielającego (zawierającego 0,4 % SDS,0,5 mol/l bufor Tris-HCl o pH 6,8) w buforze elektrodowymzawierającym 1,92 mol/l glicyny, 0,25 mol/l Tris i 1 % SDS.Doświadczenie prowadzono przy natężeniu prądu 100 mAna żel przez godzinę w temperaturze pokojowej.Analiza białek metodą „Western immunoblot”Po rozdziale elektroforetycznym żele zrównoważono5 minutową inkubacją w 20 % (v/v) metanolowym roztworze,który zawierał 25 mmol/l Tris i 0,2 mol/l glicyny. Białkazostały przetransferowane na nitrocelulozę o porach 0,2 µmz użyciem zestawu LKB 2117 Multiphor II, pod wpływemnapięcia 100 mA w ciągu 1 godziny, zgodnie z metodą opisanąw podręczniku dołączonym do aparatu. Niespecyficznewiązania nitrocelulozy zablokowano poddając ją działaniu5 % roztworu beztłuszczowego mleka w TBS-T przez 1 godzinęw temperaturze pokojowej, wolno mieszając. Następnienitrocelulozę inkubowano z poliklonalnym przeciwciałemprzeciw NF-κB lub polikolnalnym przeciwciałem przeciwreceptorowi β 1-integrynowemu lub poliklonalnalnym przeciwciałemprzeciw β-aktynie w 5 % roztworze mleka beztłuszczowegow TBS-T o stężeniu 1:3000 przez 24 godzinyw temperaturze pokojowej. Po inkubacji nitrocelulozę płukanow roztworze TBS-T (1x15 minut, 2x10 minut) wolno mieszając.W celu wykrycia analizowanych białek dodano drugie34
Cytotoksyczność[% wartości kontrolnej]120100806040200przeciwciało przeciw króliczej Fc IgG, znakowane fosfatazą alkalicznąw stężeniu 1:5000 w TBS-T i poddano inkubacji przez 30minut, wolno mieszając. Następnie nitrocelulozę delikatnie płukanoTBS-T (5x10 minut) i poddano działaniu odczynnika Sigma–Fast BCIP/NBT aby wybarwić immunoreaktywne białko.Pomiar biosyntezy kolagenu0 0,1 15 50Kamptotecyna [µM]Ryc. 1. Ocena przeżywalności fibroblastów skóry ludzkiej poddanychdziałaniu kamptotecyny (CPT). Komórki inkubowano przez 24 godzinyw pożywce z dodatkiem różnych stężeń CPT. Przedstawiono wartościśrednie ± S.D.Wbudowywanie 5[ 3 H]-proliny[dpm x 10 -3 / mg białka]353025201510500 0,1 15 50Kamptotecyna [µM]Ryc. 2. Biosynteza kolagenu w hodowli fibroblastów skóry ludzkiejw stanie inhibicji kontaktowej inkubowanych przez 24 godziny w pożywcez dodatkiem 0,1, 15, 50 µ M CPT. Przedstawiono wartości średnie± S.D.Pomiar biosyntezy kolagenu wykonano według metodyopisanej przez Peterkofsky i wsp. [31]. Fibroblastycopyright © 2010 Grupa dr. A. R. Kwiecińskiego ISSN 1425-5073skóry ludzkiej w stanie inhibicji kontaktowej wpożywce przez 24 godziny z dodatkiem 5[ 3 H]-proliny (5 µCi/ml, 28 Ci/mmol). Komórki dwukrotnieprzemyto 1 ml DPBS z 10 mmol/l proliny,następnie zawieszono je w 1,5 ml DPBSz 10 mmol/l proliny. Zawiesinę komórek poddanohomogenizacji ultradźwiękami (3 x 20 s wtemp. 0 o C). Białka zawarte w homogenatachwytrącono przez dodanie 1,5 ml 20% TCA z 20mmol/l proliną. Po 5 minutach wytrącone białkaodwirowano (1000 x g w temp. 4 o C przez 10minut), supernatant odrzucono, a osad rozpuszczonow 0,6 ml 0,2 mol/l NaOH. Pobierano po 2próby po 0,2 ml lizatu. Każdą próbę zobojętnianoprzez dodanie 0,16 ml 0,15 mol/l HCl i 0,1 ml1 mol/l Tris-HCl o pH 7,2, a następnie dodano20 µl 62,5 mmol/l N-etylomaleimidu (NEM), 10µl CaCl 2oraz 10 µl DPBS z kolagenazą o stężeniu1 mg/ml (próba badana) lub bez kolagenazy(próba kontrolna). Próby inkubowano przez 90minut w temperaturze 37 o C. Następnie dodano0,5 ml zimnego 10% TCA i chłodzono przez 5minut w temperaturze 0 o C. Po 5 minutach próbyodwirowano, a supernatant przeniesiono dofiolek scyntylacyjnych z 4 ml płynu scyntylacyjnego.Ilość powstałego kolagenu wyrażonow dpm 5[ 3 H]-proliny wbudowanej do białekpodatnych na działanie kolagenazy bakteryjnej,w przeliczeniu na µg białka.Analiza statystycznWyniki poddano analizie statystycznej. Obliczonośrednie arytmetyczne z poszczególnychpomiarów i odchylenia standardowe oraz dokonanoanalizy statystycznej przy użyciu testu „t” –studenta. Za istotne statystycznie przyjęto różnicepomiędzy średnimi przy poziomie ufności p
- Page 1: Farmaceutycznycopyright © 2010 Gru
- Page 4 and 5: Zdj. Zygmunt WieczorekSzanowni Pań
- Page 6 and 7: TUGraz2 nd AnnouncementCall for Pap
- Page 8 and 9: Call for PapersWe cordially invite
- Page 10 and 11: Farm Przegl Nauk, 2010,7, 10-14Risk
- Page 12 and 13: Farm Przegl Nauk, 2010, 7mal distri
- Page 14 and 15: Farm Przegl Nauk, 2010, 73. McMurra
- Page 16 and 17: Farm Przegl Nauk, 2010, 7Ryc. 1. Me
- Page 18 and 19: Farm Przegl Nauk, 2010, 7Ryc. 5. Sz
- Page 20 and 21: Farm Przegl Nauk, 2010,7, 20-22Mety
- Page 22 and 23: Farm Przegl Nauk, 2010, 7znaczne il
- Page 26 and 27: Farm Przegl Nauk, 2010, 7szenie wyd
- Page 28 and 29: Farm Przegl Nauk, 2010,7, 28-32Por
- Page 30 and 31: Farm Przegl Nauk, 2010, 7Wyniki i d
- Page 32 and 33: Farm Przegl Nauk, 2010, 710. Carpin
- Page 36 and 37: Farm Przegl Nauk, 2010, 7A.B.0 0.1
- Page 38 and 39: Farm Przegl Nauk, 2010, 719. Wang C
- Page 40 and 41: Farm Przegl Nauk, 2010, 7Ryc. 1. Iz
- Page 42 and 43: Farm Przegl Nauk, 2010, 7Ryc. 2. St
- Page 44 and 45: Farm Przegl Nauk, 2010, 7INFORMATIO
- Page 46: WYDAWCA6PRENUMERATAProsimy o wypeł