Ivana Jovanovic MT.pdf (7089 KB) - Institut tehniÄkih nauka SANU
Ivana Jovanovic MT.pdf (7089 KB) - Institut tehniÄkih nauka SANU Ivana Jovanovic MT.pdf (7089 KB) - Institut tehniÄkih nauka SANU
Ivana Jovanović Magistarska teza a) b) c) d) e) f) Faktor oblika, f L Slika 4.50 Rezultati stereoloških merenja čestica praha PDLLA u kojem je inkorporiran protein HRP-serija 5. a) poprečni presek-A A , b) obim-L P , c) feret X, d) feret Y, e) maksimalni prečnik čestice-D max , f) faktor oblika-f L 92
Ivana Jovanović Magistarska teza 4.3.3 Rezultati SDS-PAGE elektroforeze prahova kompozita (PDLLA+BSA i PDLLA+HRP) Kvalitativna analiza kompozitnog praha sastavljanog od polimera PDLLA i proteina, BSA ili HRP, je urađena primenom elektroforeze. Za razdvajanje i karakterizaciju proteina korišćena je tehnika jednodimenzionalne elektroforeze u poliakrilamidnom gelu u prisustvu sodium-dodecilsulfata (SDS-PAGE) po modifikovanoj metodi Sambrook-a i sar. (1989) [118], koju je postavio Laemmli (1970) [119]. Ova metoda se zasniva na razdvajanju proteina na osnovu njihovih molekulskih masa, gde poliakrilamidni gel služi kao inertni matriks kroz čije se pore proteini kreću pod uticajem električnog polja. Veličina pora varira u zavisnosti od procenta akril- i bis-akrilamida u gelu i podešava se prema opsegu molekulskih masa proteina koji se razdvajaju. Negativno naelektrisani molekuli SDS-a, prisutni u rastvoru u kome se resuspenduju uzorci, vezuju se svojim hidrofobnim delom za hidrofobne delove molekula proteina. Pošto je količina SDS-a vezanog za jedinicu mase proteina konstantna (1.4 g SDS-a / 1 g proteina), šarža proteina je određena SDS-om a ne šaržama amino kiselina. Tako je veličina negativne šarže svakog proteina direktno proporcionalna njegovoj molekulskoj težini. U električnom polju, tokom elektroforeze, negativno naelektrisani proteini kreću se ka pozitivnom polu kroz poliakrilamidni gel koji služi kao molekulsko sito. Ovako se proteini razdvajaju u niz diskretnih traka koje postaju vidljive nakon bojenja gelova. U eksperimentima je kao gel za razdvajanje korišćen 12% poliakrilamidni gel sledećeg sastava: 11.7% akrilamid, 0.3% metilen-bis-akrilamid, 0.375 M Tris-HCl, pH 8.8, 0.1% SDS, 0.05% amonijum - persulfat i 0.05% TEMED (tetrametil-etilen-diamin). Preko polimerizovanog gela za razdvajanje u pločama, naliven je 4% gel za skoncentrisavanje uzoraka u sastavu: 3.9% akrilamid, 0.1% metilen-bis-akrilamid, 0.125 M Tris-HCl, pH 6.8, 0.1% SDS, 0.05% amonijum - persulfat, 0.1% TEMED. Proteini su pre nanošenja na elektroforezu rastvoreni u puferu za uzorke: 2% SDS, 0.0625 M Tris-HCl, pH 6.8, 5% β-merkaptoetanol, 8.8% glicerol i 0.05% bromfenol plavo. Kao pufer za elektroforezu korišćen je Tris-glicinski pufer, pH 8.8: 0.195 M glicin, 25 mM Tris-HCl, pH 8.8, 0.1% SDS. Kroz gel za skoncentrisavanje uzorci su putovali pri naponu 0.12 kV, a nakon ulaska u gel za razdvajanje napon je povećan na 0.15 kV. Elektroforeza je trajala jedan sat, odnosno do izlaska boje bromfenol plavo iz gela, a rađena je u mini Bio-Rad sistemu (Mini-PROTEAN II electrophoresis cell). Po završetku elektroforeze gelovi su bojeni Coomassie plavim. Bojenje proteina u poliakrilamidnom gelu Nakon elektroforeze proteini su bojeni potapanjem gela u rastvor: 0.2% Coomassie plavo (Coomassie Brilliant Blue R-250), 45% metanol i 10% glacijalna sirćetna kiselina, preko noći uz mešanje. Odbojavanje gelova, u cilju uklanjanja nespecifično vezane boje, vršeno je u smeši metanola, vode i glacijalne sirćetne kiseline u odnosu 4.5 : 4.5 : 1 (v/v). Sa gela elektroforeze se može potvrditi prisustvo proteina u različitim serijama. Trake predstavljaju serije koje su rađene pod različitim uslovima i navedene su u tabeli 3.3. Na osnovu 93
- Page 46 and 47: Ivana Jovanović Magistarska teza 3
- Page 48 and 49: Ivana Jovanović Magistarska teza P
- Page 50 and 51: Ivana Jovanović Magistarska teza 3
- Page 52 and 53: Ivana Jovanović Magistarska teza 3
- Page 54 and 55: Ivana Jovanović Magistarska teza r
- Page 56 and 57: Ivana Jovanović Magistarska teza L
- Page 58 and 59: Ivana Jovanović Magistarska teza 4
- Page 60 and 61: Ivana Jovanović Magistarska teza S
- Page 62 and 63: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 64 and 65: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 66 and 67: Ivana Jovanović Magistarska teza 1
- Page 68 and 69: Ivana Jovanović Magistarska teza r
- Page 70 and 71: Ivana Jovanović Magistarska teza S
- Page 72 and 73: Ivana Jovanović Magistarska teza 4
- Page 74 and 75: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 76 and 77: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 78 and 79: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 80 and 81: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 82 and 83: Ivana Jovanović Magistarska teza 0
- Page 84 and 85: Ivana Jovanović Magistarska teza S
- Page 86 and 87: Ivana Jovanović Magistarska teza S
- Page 88 and 89: Ivana Jovanović Magistarska teza a
- Page 90 and 91: Ivana Jovanović Magistarska teza a
- Page 92 and 93: Ivana Jovanović Magistarska teza a
- Page 94 and 95: Ivana Jovanović Magistarska teza a
- Page 98 and 99: Ivana Jovanović Magistarska teza e
- Page 100 and 101: Ivana Jovanović Magistarska teza 4
- Page 102 and 103: Ivana Jovanović Magistarska teza 5
- Page 104 and 105: Ivana Jovanović Magistarska teza T
- Page 106 and 107: Ivana Jovanović Magistarska teza 5
- Page 108 and 109: Ivana Jovanović Magistarska teza 1
- Page 110 and 111: Ivana Jovanović Magistarska teza n
- Page 112 and 113: Ivana Jovanović Magistarska teza h
- Page 114 and 115: Ivana Jovanović Magistarska teza d
- Page 116 and 117: Ivana Jovanović Magistarska teza F
- Page 118 and 119: Ivana Jovanović Magistarska teza 6
- Page 120 and 121: Ivana Jovanović Magistarska teza 2
- Page 122 and 123: Ivana Jovanović Magistarska teza n
- Page 124 and 125: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 126 and 127: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 128 and 129: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 130 and 131: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 132 and 133: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 134 and 135: Ivana Jovanović Magistarska teza [
- Page 136: Nagrade • Nagrada za najbolji pos
<strong>Ivana</strong> Jovanović<br />
Magistarska teza<br />
4.3.3 Rezultati SDS-PAGE elektroforeze prahova kompozita<br />
(PDLLA+BSA i PDLLA+HRP)<br />
Kvalitativna analiza kompozitnog praha sastavljanog od polimera PDLLA i proteina, BSA ili<br />
HRP, je urađena primenom elektroforeze. Za razdvajanje i karakterizaciju proteina korišćena je<br />
tehnika jednodimenzionalne elektroforeze u poliakrilamidnom gelu u prisustvu sodium-dodecilsulfata<br />
(SDS-PAGE) po modifikovanoj metodi Sambrook-a i sar. (1989) [118], koju je postavio Laemmli<br />
(1970) [119].<br />
Ova metoda se zasniva na razdvajanju proteina na osnovu njihovih molekulskih masa, gde<br />
poliakrilamidni gel služi kao inertni matriks kroz čije se pore proteini kreću pod uticajem električnog<br />
polja. Veličina pora varira u zavisnosti od procenta akril- i bis-akrilamida u gelu i podešava se prema<br />
opsegu molekulskih masa proteina koji se razdvajaju. Negativno naelektrisani molekuli SDS-a,<br />
prisutni u rastvoru u kome se resuspenduju uzorci, vezuju se svojim hidrofobnim delom za<br />
hidrofobne delove molekula proteina. Pošto je količina SDS-a vezanog za jedinicu mase proteina<br />
konstantna (1.4 g SDS-a / 1 g proteina), šarža proteina je određena SDS-om a ne šaržama amino<br />
kiselina. Tako je veličina negativne šarže svakog proteina direktno proporcionalna njegovoj<br />
molekulskoj težini. U električnom polju, tokom elektroforeze, negativno naelektrisani proteini kreću<br />
se ka pozitivnom polu kroz poliakrilamidni gel koji služi kao molekulsko sito. Ovako se proteini<br />
razdvajaju u niz diskretnih traka koje postaju vidljive nakon bojenja gelova.<br />
U eksperimentima je kao gel za razdvajanje korišćen 12% poliakrilamidni gel sledećeg<br />
sastava: 11.7% akrilamid, 0.3% metilen-bis-akrilamid, 0.375 M Tris-HCl, pH 8.8, 0.1% SDS, 0.05%<br />
amonijum - persulfat i 0.05% TEMED (tetrametil-etilen-diamin). Preko polimerizovanog gela za<br />
razdvajanje u pločama, naliven je 4% gel za skoncentrisavanje uzoraka u sastavu: 3.9% akrilamid,<br />
0.1% metilen-bis-akrilamid, 0.125 M Tris-HCl, pH 6.8, 0.1% SDS, 0.05% amonijum - persulfat, 0.1%<br />
TEMED. Proteini su pre nanošenja na elektroforezu rastvoreni u puferu za uzorke: 2% SDS, 0.0625<br />
M Tris-HCl, pH 6.8, 5% β-merkaptoetanol, 8.8% glicerol i 0.05% bromfenol plavo. Kao pufer za<br />
elektroforezu korišćen je Tris-glicinski pufer, pH 8.8: 0.195 M glicin, 25 mM Tris-HCl, pH 8.8, 0.1%<br />
SDS. Kroz gel za skoncentrisavanje uzorci su putovali pri naponu 0.12 kV, a nakon ulaska u gel za<br />
razdvajanje napon je povećan na 0.15 kV. Elektroforeza je trajala jedan sat, odnosno do izlaska boje<br />
bromfenol plavo iz gela, a rađena je u mini Bio-Rad sistemu (Mini-PROTEAN II electrophoresis cell).<br />
Po završetku elektroforeze gelovi su bojeni Coomassie plavim.<br />
Bojenje proteina u poliakrilamidnom gelu<br />
Nakon elektroforeze proteini su bojeni potapanjem gela u rastvor: 0.2% Coomassie plavo<br />
(Coomassie Brilliant Blue R-250), 45% metanol i 10% glacijalna sirćetna kiselina, preko noći uz<br />
mešanje. Odbojavanje gelova, u cilju uklanjanja nespecifično vezane boje, vršeno je u smeši<br />
metanola, vode i glacijalne sirćetne kiseline u odnosu 4.5 : 4.5 : 1 (v/v).<br />
Sa gela elektroforeze se može potvrditi prisustvo proteina u različitim serijama. Trake<br />
predstavljaju serije koje su rađene pod različitim uslovima i navedene su u tabeli 3.3. Na osnovu<br />
93