Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy
Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy
Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
Farm Przegl Nauk, 2009,2<br />
czy CYP2B1/2. Obecnie w leczeniu zatruć GE stosuje się<br />
specyficzne odtrutki, jak etanol czy 4-metylopirazol [1].<br />
W dostępnym piśmiennictwie brak jest danych porównawczych<br />
dotyczących oceny skuteczności i ryzyka stosowania<br />
obu tych terapii. Ponadto często zatruciu glikolem etylenowym<br />
towarzyszy spożycie alkoholu etylowego. W takich<br />
przypadkach zastosowanie 4-metylopirazolu może doprowadzić<br />
do wystąpienia interakcji pomiędzy ksenobiotykami.<br />
Wykazano bowiem, że równoczesne podanie etanolu<br />
i 4-metylopirazolu zdrowym ochotnikom powoduje<br />
o około 40% obniżenie szybkości eliminacji etanolu i 50%<br />
obniżenie wydalania 4-metylopirazolu utrzymujące się do<br />
8 godzin od podania ksenobiotyków [2, 3]. Te wzajemne<br />
modyfikacje mogą mieć kliniczne implikacje u wielu pacjentów,<br />
którzy równocześnie spożyli etanol i glikol etylenowy.<br />
W dostępnym piśmiennictwie brak jest danych czy<br />
podobne interakcje mogą zachodzić również po łącznym<br />
podaniu glikolu etylenowego, etanolu i 4-metylopirazolu.<br />
Badania ostatnich lat wykazały, że glikol etylenowy może<br />
być również utleniony do formaldehydu z uwolnieniem nadtlenku<br />
wodoru. Istotny udział w tej reakcji odgrywa cytochrom<br />
P450, a zwłaszcza jego izoforma CYP2E1 oraz izoenzymy<br />
indukowane fenobarbitalem i 3-metylocholantrenem.<br />
Utlenianie glikolu etylenowego do formaldehydu za pośrednictwem<br />
cytochromu P450 prowadzi do wytworzenia nadtlenku<br />
wodoru. Powstające w obecności Fe(II) rodniki ponadtlenkowe<br />
odpowiedzialne są za wywoływanie stresu oksydacyjnego związanego<br />
z naruszeniem równowagi pomiędzy procesami generacji<br />
aktywnych form tlenu i procesami antyoksydacyjnymi.<br />
W latach 70-tych w doświadczalnym zatruciu glikolem<br />
etylenowym u zwierząt wykazano skuteczność<br />
4-metylopirazolu. W 1998 roku 4-metylopirazol został dopuszczony<br />
w USA do stosowania klinicznego jako specyficzna<br />
odtrutka w leczeniu zatruć glikolem etylenowym u osób<br />
powyżej 12. roku życia [4]. 4-Metylopirazol skuteczniej niż<br />
etanol ogranicza przemiany glikolu etylenowego zachodzące<br />
za pośrednictwem dehydrogenazy alkoholowej, zarówno<br />
u zwierząt jak i u ludzi [5, 6]. Ponadto jego działanie inhibicyjne<br />
utrzymuje się znacznie dłużej stąd też 4-metylopirazol<br />
zalecany jest w przypadkach ostrych i ciężkich zatruć [6, 7].<br />
Glikol etylenowy jest inhibitorem cytochromu P450.<br />
W biotransformacji glikolu bierze udział wiele izoenzymów<br />
cytochromu P450. Izoformy CYP2E1 i CYP2B1/2 biorą<br />
udział w tym metabolizmie w stopniu istotnym. Dane literaturowe<br />
wskazują, że CYP2E1 efektywnie bierze udział<br />
w metabolizmie glikolu i sugerują, że glikol ten jest induktorem<br />
CYP2E1. Wydaje się, że delikatny wpływ stymulujący<br />
glikol ma także na CYP2B1/2, ale w stosunku do innych<br />
izoform ma on raczej charakter inhibitorowy.<br />
W świetle powyższych danych celem niniejszej pracy<br />
była ocena przydatności 4-metylopirazolu w postępowaniu<br />
leczniczym w zatruciach pojedynczych glikolem etylenowym.<br />
Dokonano oceny aktywności enzymów biorących<br />
udział w metabolizmie glikolu etylenowego.<br />
Materiały i metody<br />
Zwierzęta<br />
Badania przeprowadzono na dojrzałych szczurach samcach<br />
szczepu Wistar. Każde zwierzę przebywało osobno<br />
62<br />
w klatkach plastikowych a hodowla była prowadzona<br />
w tym samym pomieszczeniu. Grupy liczyły po 5 zwierząt<br />
dla każdego z punktów czasowych w poszczególnych grupach<br />
badawczych. W czasie trwania eksperymentu szczury<br />
były hodowane w standardowych warunkach (21 O C, wilgotność<br />
55-60%, dzień-noc 12:12 godz.).<br />
Szczury karmiono paszą standardową (Labofeed), którą<br />
usuwano na 12 godzin przed zabiciem, pozostawiając wolny<br />
dostęp do wody. Szczury usypiano za pomocą ketaminy<br />
podanej domięśniowo w dawce 10 mg/kg m.c. Natychmiast<br />
pobierano wątroby oraz nerki i umieszczano je w lodowatym<br />
roztworze soli fizjologicznej.<br />
Materiał do badań (nerki, wątroba) pobierano od zwierząt<br />
po 8; 12; 18; 24; 36 i 48 godzin od podania ksenobiotyku.<br />
Traktowanie<br />
Glikol etylenowy w dawce 3830 mg/kg m.c. (1/2<br />
DL 50 ) był podawany per os sondą dożołądkowo, natomiast<br />
4-metylopirazol w dawce 10 mg/kg m.c. dootrzewnowo<br />
(jest to standardowa dawka stosowana w terapii).<br />
Ksenobiotyki były podawane wg następującego schematu:<br />
- grupa kontrolna<br />
- zwierzęta otrzymujące glikol etylenowy<br />
- zwierzęta otrzymujące 4-metylopirazol<br />
- zwierzęta otrzymujące oba oceniane ksenobiotyki<br />
Izolacja frakcji mikrosomalnej<br />
Wątrobową i nerkową frakcję mikrosomalną izolowano<br />
według metody Dallnera [8]. Po kilkukrotnym przepłukaniu<br />
w roztworze soli fizjologicznej, wątroby cięto na niewielkie<br />
skrawki i rozdrabniano w homogenizatorze Pottera-Elvehjema<br />
z tłokiem teflonowym, przy 400 obrotach na minutę i czterech<br />
pełnych ruchach tłoka. Środowiskiem homogenizacyjnym był<br />
0,25 molowy roztwór sacharozy w 10 milimolowym buforze<br />
Tris-HCl o pH=7,4. Na 1 gram tkanki dodawano 5 cm 3 tego<br />
roztworu. Ten i kolejne etapy obróbki wątroby prowadzano<br />
w temperaturze 2-4 0 C. Uzyskany homogenat poddano procesowi<br />
wirowania różnicowego, w którym kolejno osadzano<br />
frakcję jądrową (10 min., 900g), mitochondrialną (20 min.,<br />
20000g) i wreszcie mikrosomalną (90 min., 105000g).<br />
Czyste frakcje mikrosomalne zawieszano w zbuforowanym<br />
20% o/o roztworze glicerolu tak, aby stężenie białka<br />
było nie mniejsze niż 5 mg/cm 3 . Próby te natychmiast zamrażano<br />
w temperaturze -20 0 C.<br />
Metody oznaczania składników układu cytochromu P450<br />
W uzyskanych mikrosomach wykonano oznaczenia:<br />
- stężenia białka metodą Lowry’ego i wsp. [9].<br />
- zawartości cytochromów P450 i b 5 - spektrofotometrycznie<br />
wykonując tzw. widmo różnicowe, metodą Estabrooka<br />
i Werringloera [10].<br />
- aktywności reduktazy NADPH-cytochrom P450 i reduktazy<br />
NADH-cytochrom b 5 - spektrofotometrycznie metodą<br />
Hodgesa i Leonarda [11].<br />
- analiza ekspresji białek P450 w komórkach wątroby<br />
i nerek przeprowadzono techniką elekroforetyczną i<br />
Western blottingu. Analiza ilościowa izoform 2E1, 1A2