11.06.2013 Views

Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy

Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy

Pokaż cały numer - Farmaceutyczny Przegląd Naukowy

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

Farm Przegl Nauk, 2009,2<br />

czy CYP2B1/2. Obecnie w leczeniu zatruć GE stosuje się<br />

specyficzne odtrutki, jak etanol czy 4-metylopirazol [1].<br />

W dostępnym piśmiennictwie brak jest danych porównawczych<br />

dotyczących oceny skuteczności i ryzyka stosowania<br />

obu tych terapii. Ponadto często zatruciu glikolem etylenowym<br />

towarzyszy spożycie alkoholu etylowego. W takich<br />

przypadkach zastosowanie 4-metylopirazolu może doprowadzić<br />

do wystąpienia interakcji pomiędzy ksenobiotykami.<br />

Wykazano bowiem, że równoczesne podanie etanolu<br />

i 4-metylopirazolu zdrowym ochotnikom powoduje<br />

o około 40% obniżenie szybkości eliminacji etanolu i 50%<br />

obniżenie wydalania 4-metylopirazolu utrzymujące się do<br />

8 godzin od podania ksenobiotyków [2, 3]. Te wzajemne<br />

modyfikacje mogą mieć kliniczne implikacje u wielu pacjentów,<br />

którzy równocześnie spożyli etanol i glikol etylenowy.<br />

W dostępnym piśmiennictwie brak jest danych czy<br />

podobne interakcje mogą zachodzić również po łącznym<br />

podaniu glikolu etylenowego, etanolu i 4-metylopirazolu.<br />

Badania ostatnich lat wykazały, że glikol etylenowy może<br />

być również utleniony do formaldehydu z uwolnieniem nadtlenku<br />

wodoru. Istotny udział w tej reakcji odgrywa cytochrom<br />

P450, a zwłaszcza jego izoforma CYP2E1 oraz izoenzymy<br />

indukowane fenobarbitalem i 3-metylocholantrenem.<br />

Utlenianie glikolu etylenowego do formaldehydu za pośrednictwem<br />

cytochromu P450 prowadzi do wytworzenia nadtlenku<br />

wodoru. Powstające w obecności Fe(II) rodniki ponadtlenkowe<br />

odpowiedzialne są za wywoływanie stresu oksydacyjnego związanego<br />

z naruszeniem równowagi pomiędzy procesami generacji<br />

aktywnych form tlenu i procesami antyoksydacyjnymi.<br />

W latach 70-tych w doświadczalnym zatruciu glikolem<br />

etylenowym u zwierząt wykazano skuteczność<br />

4-metylopirazolu. W 1998 roku 4-metylopirazol został dopuszczony<br />

w USA do stosowania klinicznego jako specyficzna<br />

odtrutka w leczeniu zatruć glikolem etylenowym u osób<br />

powyżej 12. roku życia [4]. 4-Metylopirazol skuteczniej niż<br />

etanol ogranicza przemiany glikolu etylenowego zachodzące<br />

za pośrednictwem dehydrogenazy alkoholowej, zarówno<br />

u zwierząt jak i u ludzi [5, 6]. Ponadto jego działanie inhibicyjne<br />

utrzymuje się znacznie dłużej stąd też 4-metylopirazol<br />

zalecany jest w przypadkach ostrych i ciężkich zatruć [6, 7].<br />

Glikol etylenowy jest inhibitorem cytochromu P450.<br />

W biotransformacji glikolu bierze udział wiele izoenzymów<br />

cytochromu P450. Izoformy CYP2E1 i CYP2B1/2 biorą<br />

udział w tym metabolizmie w stopniu istotnym. Dane literaturowe<br />

wskazują, że CYP2E1 efektywnie bierze udział<br />

w metabolizmie glikolu i sugerują, że glikol ten jest induktorem<br />

CYP2E1. Wydaje się, że delikatny wpływ stymulujący<br />

glikol ma także na CYP2B1/2, ale w stosunku do innych<br />

izoform ma on raczej charakter inhibitorowy.<br />

W świetle powyższych danych celem niniejszej pracy<br />

była ocena przydatności 4-metylopirazolu w postępowaniu<br />

leczniczym w zatruciach pojedynczych glikolem etylenowym.<br />

Dokonano oceny aktywności enzymów biorących<br />

udział w metabolizmie glikolu etylenowego.<br />

Materiały i metody<br />

Zwierzęta<br />

Badania przeprowadzono na dojrzałych szczurach samcach<br />

szczepu Wistar. Każde zwierzę przebywało osobno<br />

62<br />

w klatkach plastikowych a hodowla była prowadzona<br />

w tym samym pomieszczeniu. Grupy liczyły po 5 zwierząt<br />

dla każdego z punktów czasowych w poszczególnych grupach<br />

badawczych. W czasie trwania eksperymentu szczury<br />

były hodowane w standardowych warunkach (21 O C, wilgotność<br />

55-60%, dzień-noc 12:12 godz.).<br />

Szczury karmiono paszą standardową (Labofeed), którą<br />

usuwano na 12 godzin przed zabiciem, pozostawiając wolny<br />

dostęp do wody. Szczury usypiano za pomocą ketaminy<br />

podanej domięśniowo w dawce 10 mg/kg m.c. Natychmiast<br />

pobierano wątroby oraz nerki i umieszczano je w lodowatym<br />

roztworze soli fizjologicznej.<br />

Materiał do badań (nerki, wątroba) pobierano od zwierząt<br />

po 8; 12; 18; 24; 36 i 48 godzin od podania ksenobiotyku.<br />

Traktowanie<br />

Glikol etylenowy w dawce 3830 mg/kg m.c. (1/2<br />

DL 50 ) był podawany per os sondą dożołądkowo, natomiast<br />

4-metylopirazol w dawce 10 mg/kg m.c. dootrzewnowo<br />

(jest to standardowa dawka stosowana w terapii).<br />

Ksenobiotyki były podawane wg następującego schematu:<br />

- grupa kontrolna<br />

- zwierzęta otrzymujące glikol etylenowy<br />

- zwierzęta otrzymujące 4-metylopirazol<br />

- zwierzęta otrzymujące oba oceniane ksenobiotyki<br />

Izolacja frakcji mikrosomalnej<br />

Wątrobową i nerkową frakcję mikrosomalną izolowano<br />

według metody Dallnera [8]. Po kilkukrotnym przepłukaniu<br />

w roztworze soli fizjologicznej, wątroby cięto na niewielkie<br />

skrawki i rozdrabniano w homogenizatorze Pottera-Elvehjema<br />

z tłokiem teflonowym, przy 400 obrotach na minutę i czterech<br />

pełnych ruchach tłoka. Środowiskiem homogenizacyjnym był<br />

0,25 molowy roztwór sacharozy w 10 milimolowym buforze<br />

Tris-HCl o pH=7,4. Na 1 gram tkanki dodawano 5 cm 3 tego<br />

roztworu. Ten i kolejne etapy obróbki wątroby prowadzano<br />

w temperaturze 2-4 0 C. Uzyskany homogenat poddano procesowi<br />

wirowania różnicowego, w którym kolejno osadzano<br />

frakcję jądrową (10 min., 900g), mitochondrialną (20 min.,<br />

20000g) i wreszcie mikrosomalną (90 min., 105000g).<br />

Czyste frakcje mikrosomalne zawieszano w zbuforowanym<br />

20% o/o roztworze glicerolu tak, aby stężenie białka<br />

było nie mniejsze niż 5 mg/cm 3 . Próby te natychmiast zamrażano<br />

w temperaturze -20 0 C.<br />

Metody oznaczania składników układu cytochromu P450<br />

W uzyskanych mikrosomach wykonano oznaczenia:<br />

- stężenia białka metodą Lowry’ego i wsp. [9].<br />

- zawartości cytochromów P450 i b 5 - spektrofotometrycznie<br />

wykonując tzw. widmo różnicowe, metodą Estabrooka<br />

i Werringloera [10].<br />

- aktywności reduktazy NADPH-cytochrom P450 i reduktazy<br />

NADH-cytochrom b 5 - spektrofotometrycznie metodą<br />

Hodgesa i Leonarda [11].<br />

- analiza ekspresji białek P450 w komórkach wątroby<br />

i nerek przeprowadzono techniką elekroforetyczną i<br />

Western blottingu. Analiza ilościowa izoform 2E1, 1A2

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!