Skrypt ćwiczeniowy - Katerda i Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej
Skrypt ćwiczeniowy - Katerda i Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej
Skrypt ćwiczeniowy - Katerda i Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
Inne istotne cechy, które powinien posiadać dobry wektor:<br />
1. Obecność jednego lub kilku genów markerowych, służących do wyróżnienia i<br />
selekcji transformantów, czyli komórek, które pobrały zrekombinowany wektor<br />
(głównie są to geny oporności na antybiotyk np. ampicylinę, tetracyklinę,<br />
chloramfenikol, kanamycynę)<br />
2. Powinien być dobrze scharakteryzowaną pod względem fizycznym i chemicznym<br />
cząsteczką, łatwą do oczyszczenia.<br />
3. Nie powinien zawierać genów, których rozprzestrzenianie może stanowić<br />
zagrożenie dla życia lub zdrowia ludzi, zwierząt czy roślin.<br />
Gwałtowny rozwój biologii molekularnej sprawił, że ilość konstruowanych wektorów jest<br />
olbrzymia i nie sposób w skrócie opisać całej wiedzy na ich temat. Tworzono serie wektorów<br />
przeznaczonych do bardzo konkretnych celów. Jedną z ważniejszych to grupa wektorów<br />
ekspresyjnych.<br />
1.1.2. Wektory ekspresyjne<br />
● Zawierają one silny promotor, podlegający regulacji zewnętrznej, służący do<br />
wyrażania obcych genów<br />
Wykorzystuje się m. in. promotor laktozowy, dziki lub zmodyfikowany (lacUV5),<br />
tryptofanowy, lambdowe PL (promotor lewy) i PR (p. prawy), promotory fuzyjne tac<br />
(połączenie laktozowego i tryptofanowego) i inne.<br />
● Mogą zawierać też terminatory transkrypcji oraz sygnały translacyjne.<br />
● Obce geny mogą być wyrażone jako białko natywne lub jako fuzja z innym, dobrze<br />
scharakteryzowanym białkiem.<br />
● Ważnymi seriami wektorów w tej grupie są wektory zawierające promotor faga T7<br />
rozpoznawane wyłącznie przez polimerazę faga T7.<br />
Polimeraza RNA faga T7 jest bardzo specyficzna wobec swoich promotorów, nie<br />
rozpoznaje również obcych (inne niż faga) sygnałów terminacyjnych. Przeprowadzana<br />
przez nią transkrypcja przebiega 5 razy szybciej niż w przypadku polimerazy RNA E.<br />
coli. Ponadto jest białkiem niewrażliwym na rifampicynę (antybiotyk ten blokuje<br />
polimerazę RNA E. coli).<br />
Zespół F. Studiera skonstruował serię wektorów pET (plazmid for expression by T7<br />
RNA polymerase). Wektory wykorzystywane do ekspresji produktu białkowego<br />
klonowanego genu.<br />
Posiadają promotor i terminator dla polimerazy RNA faga T7 oraz sygnały startu<br />
translacji pochodzące od fagowego genu 10 (główne białko kapsydu).<br />
Do promotora polimerazy T7 dodano operator promotora laktozowego w pozycji +2<br />
(patrz mapa plazmidu pET16b). Daje to możliwość regulacji ekspresji przy pomocy<br />
represora LacI, dla którego gen też został wprowadzony do wektorów pET (Warto<br />
przypomnieć sobie regulacje operonu laktozowego!). Aby zaszła wydajna ekspresja<br />
klonowanego genu z takiego wektora w szczepie bakteryjnym musi posiadać on gen<br />
polimerazy RNA faga T7.<br />
Aby ułatwić oczyszczanie klonowanego białka dodatkowo do wektorów pET<br />
wprowadzono za MCS sekwencje kodującą 10 lub 6 reszt histydyny. Dzięki temu<br />
produkt białkowy na swym N lub C końcu dodatkowo uzyskiwał polihistydynowy<br />
„ogon”. Do oczyszczania takiego białka można wykorzystać chromatografię<br />
powinowactwa (roz. 9). Wektory i szczepy oraz zestawy do oczyszczania<br />
wykorzystywane do stworzenia takiego produktu białkowego nazwano systemem pET<br />
His-Tag lub systemem ekspresyjnym z udziałem polimerazy faga T7.