Academos 3 2011 pentru PDF - Akademos - Academia de Ştiinţe a ...

AkademosMicroelemente (în mg/ml): Trilon B – 0.885,MnSO 4– 0.309, MoO 3– 0.15, ZnSO 4– 0.44, CuSO 4– 0.098.Componenţi organici: Sol. de zaharoză – 1.6 %(16 g/l); autolizat de drojdii – 0.8 % (8 g/l) ;Prin cultivarea tulpinii Pseudomonas sp.1 CNM-PsB-01 pe acest mediu se obţine un complex deenzime lipolitice cu o activitate de 1774 nMol/s.gBAU.M2. Compoziţia mediului nutritiv cu componenţi organici optimizaţi, pentru menţinereaşi cultivarea de laborator / industrială a tulpiniiPseudomonas sp.2 CNM-PsB-02:Macroelemente (în g/l): NaCl – 120; NaHCO 3–2,0; NaNO 3– 0,5; KH 2PO 4- 0,05; MgSO . 47H 2O –0,75; KCl – 0,15; FeCl 3– 0.5 ml/l din 2.5 g/l; CaCl 2– 0.4 ml/l din 2.5 g/l.Microelemente (în mg/ml): Trilon B – 0.885,MnSO 4– 0.309, MoO 3– 0.15, ZnSO 4– 0.44, CuSO 4– 0.098.Componenţi organici: Sol. de zaharoză – 1.4 %(14 g/l); autolizat de drojdii – 0.9 % (9 g/l);Prin cultivarea tulpinii Pseudomonas sp.2 CNM-PsB-02 pe acest mediu se obţine un complex deenzime lipolitice cu o activitate de 1935 nMol/s.gBAU.M3. Compoziţia mediului nutritiv, principialnou, cu componenţi organici optimizaţi şi inductor,pentru cultivarea de laborator şi industrială a tulpiniiPseudomonas sp.1 CNM-PsB-01, în scopul obţineriibiomasei cu conţinut sporit de enzime lipolitice:Macroelemente (în g/l): NaCl – 120; NaHCO 3–2,0; NaNO 3– 0,5; KH 2PO 4– 0,05; MgSO 4x 7H 2O– 0,75; KCl – 0,15; FeCl 3– 0.5 ml/l din 2.5 g/l;CaCl 2– 0.4 ml/l din 2.5 g/l.Microelemente (in mg/ml): Trilon B – 0.885,MnSO 4– 0.309, MoO 3– 0.15, ZnSO 4– 0.44, CuSO 4– 0.098.Componenţi organici: Sol. de zaharoză – 0,5 %(5 g/l); autolizat de drojdii – 1,5 % (15 g/l); extractdin Dunaliella salina – 1,0 g/l.Prin cultivarea tulpinii Pseudomonas sp.1 CNM-PsB-01 pe acest mediu se obţine un complex deenzime lipolitice cu o activitate de 1370 nMol/s.gBAU.M4. Compoziţia mediului nutritiv, principialnou, cu componenţi organici optimizaţi şi inductor,pentru cultivarea de laborator şi industrială a tulpiniiPseudomonas sp.2 CNM-PsB-02, în scopul obţineriibiomasei cu conţinut sporit de enzime lipolitice:Macroelemente (în g/l): NaCl – 120; NaHCO 3–2,0; NaNO 3– 0,5; KH 2PO 4– 0,05; MgSO . 47H 2O– 0,75; KCl – 0,15; FeCl 3– 0.5 ml/l din 2.5 g/l;CaCl 2– 0.4 ml/l din 2.5 g/l.Microelemente (in mg/ml): Trilon B – 0.885,MnSO 4– 0.309, MoO 3– 0.15, ZnSO 4– 0.44, CuSO 4– 0.098.Componenţi organici: Sol. de zaharoză – 0,7%(7 g/l); autolizat de drojdii – 2,25 % (22,5 g/l);extract din Dunaliella salina – 0,7 g/l.Prin cultivarea tulpinii Pseudomonas sp.2 CNM-PsB-02 pe acest mediu se obţine un complex deenzime lipolitice cu o activitate de 3576 nMol/s.gBAU.Utilizarea mediilor propuse în practicamicrobiologică şi posibila lor aplicare înbiotehnologie ar asigura obţinerea unui complexenzimatic cu o activitate lipolitică net superioară,faţă de cele obţinute, folosind culturile înrudite.Preţul de cost al preparatului enzimatic nou esteredus, rezultat obţinut prin folosirea mediilornutritive ieftine şi componenţi accesibili. Mai multdecât atât, utilizarea lichidului cultural rezultat dupăsepararea biomasei de Dunaliella salina, în loculmediului mineral Ben-Amotz, ar asigura scădereaconsiderabilă a costului produsului final.Astfel, combinarea principiilor biotehnologieimoderne şi utilizarea raţională a resurselornutritive secundare (lichidul cultural sterilizatrefolosit), vor permite obţinerea în cadrul aceluiaşiciclu biotehnologic de sinteză a două produse deimportanţă majoră: biomasa preţioasă de Dunaliellasalina şi complexul enzimatic obţinut la cultivareabacteriilor Pseudomonas pe mediul reutilizat.Bibliografie[1] Lass, A., Zimmermann, R., Oberer, M. andZechner, R. (2011). Lipolysis – a highly regulated multienzymecomplex mediates the catabolism of cellular fatstores. Prog Lipid Res 50, 14-27.[2] Tan, T., Lu, J., Nie, K., Deng, L. and Wang, F.(2010). Biodiesel production with immobilized lipase: Areview. Biotechnol Adv 28, 628-34.[3] Rudic, V. (1993) Aspecte noi ale biotehnologieimoderne. Chisinău, Ştiinţa.[4] Shimada, Y., Sugihara, A. and Tominaga, Y.(1994). Microbial lipase: structure and production.Bioprocess Technol 19, 359-71.[5] Yeniad, B., Naik, H. and Heise, A. (2011).Lipases in Polymer Chemistry. Adv Biochem EngBiotechnol, ISSN:1616-8542.[6] Sugiura, M., Isobe, M., Oikawa, T. and Oono,H. (1976). Sterol ester hydrolytic activity of lipoproteinlipase from Pseudomonas fl uorescence. Chem PharmBull (Tokyo) 24, 1202-8.[7] Sonoki, S. and Ikezawa, H. (1976). Studieson phospholipase C from Pseudomonas aureofaciens.II. Further studies on the properties of the enzyme. JBiochem 80, 361-6.[8] Ben-Amotz, A. and Avron, M. (1972).Photosynthetic Activities of the Halophilic AlgaDunaliella parva. Plant Physiol 49, 240-3.[9] Box, G.P. and Wilson, K.B. (1951). On theExperimental Attainment of Optimum Conditions.Journal of the Royal Statistical Society 13(1), 1-45.92 - nr. 3(22), septembrie 2011