Manual de Procedimentos de Coleta e Metodologias de - Cemig

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Para coletas em diferentes profundidades, são utilizadas as garrafas do tipo Kemmerer e van Dorn, que consistem, basicamente, num tubo cilíndrico aberto em ambas as extremidades, preso a uma corda (cabo) graduada, que por sua vez é mergulhada até a profundidade desejada. Então, um mensageiro (peso) é acionado, disparando um dispositivo que fecha, hermeticamente, ambas as extremidades da garrafa. As bombas de sucção são utilizadas também, principalmente quando há necessidade de coletar grande número de estações de amostragens em um curto espaço de tempo. As bombas peristálticas e de diafragma são menos prejudiciais aos organismos do que as centrífugas (APHA,1998). Transporte e preservação da amostra A amostra viva deverá ser transportada em caixas de isopor com gelo e ocupar, no máximo, dois terços do volume do frasco, para garantir quantidade suficiente de oxigênio até o momento da análise. O gelo deve ser o bastante para refrigeração pois, se congelados, os organismos podem morrer e dificultar, assim, a taxonomia. Para a análise qualitativa, não é necessária a preservação da amostra, desde que haja alguns cuidados, como evitar a exposição ao excesso de luz, manter a amostra refrigerada e realizar a análise em, no máximo, 24 horas após a coleta. Ao contrário, a amostra deverá ser preservada em solução de formol, numa concentração de 4%. Em caso de florações, recomenda-se que a amostra seja preservada em formol, visando oportunizar outros estudos, que complementem as análises e permitam manter um registro de espécies formadoras de florações em mananciais de abastecimento público. Para análise quantitativa, a amostra é usualmente preservada em solução de lugol, em concentrações de 0,3% a 0,5% para ambientes oligotróficos e de 0,5% a 1,0% para ambientes eutróficos. O material deve ser mantido em frascos de vidro âmbar e acondicionado em ambiente protegido de luminosidade. A solução de lugol facilita a sedimentação, por outro lado, pode dificultar a identificação dos organismos, além de ser muito volátil. Para o preparo da solução de lugol, são utilizados: 10g de iodo puro; 20g de iodeto de potássio; 20mL de ácido acético glacial; 200mL de água destilada. Dissolva em água destilada o iodo e o iodeto. Acrescente o ácido acético e 20
complete o volume com água destilada até 200 mL. Essa solução também deve ser mantida em vidro âmbar e ambiente protegido de luminosidade. Para o preparo da Solução Transeau (fixar Fitoplâncton), são utilizados: 100mL de formol 40% 300mL de álcool 96% 600mL de água Cianotoxinas As cianotoxinas são produzidas por algumas espécies de cianobactérias, que podem afetar a biota aquática e resultar em efeitos tóxicos também para os mamíferos terrestres (Sivonen & Jones, 1999). A razão da produção ainda não foi esclarecida. Coleta de amostra Caso haja uma nata verde sobrenadante, coletar um frasco de cinco litros, que permitirá a classificação até a espécie, o bioensaio com camundongos e a análise da microcistina (se for o caso), pelo kit ELISA. Coletando amostras para análises microbiológicas de água potável Embora pareça simples coletar uma amostra de água, cuidados especiais são requeridos, uma vez que os problemas podem ocorrer independentemente da técnica utilizada. Se as amostras coletadas não forem válidas, o cuidadoso trabalho subsequente pode tornar-se inútil. A água pode ser amostrada em três locais diferentes: 1 - Amostragem de torneira ou bomba; 2 - Amostragem de um curso d’água ou reservatório; - Amostragem de poços artesianos e fontes similares. 21
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S. W.,v.XXXII,p. 201-208, 1913 155.
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57. OLIVEIRA, L. G.; FROEHLICH, C.
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7.4 Sugestão de Ficha de Coleta 77
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