Manual de Procedimentos de Coleta e Metodologias de - Cemig

Manual de Procedimentos de Coleta e Metodologias de - Cemig Manual de Procedimentos de Coleta e Metodologias de - Cemig

09.02.2013 Views

ATENÇÃO Ao iniciar a coleta ou após a mudança de ponto, deve-se lavar os equipamentos com água destilada ou criar um ambiente com a própria água do ponto de coleta, a fim de evitar a contaminação das amostras e ocasionar falsos resultados do monitoramento. Zooplâncton: l As amostragens de zooplâncton deverão propiciar análises qualitativas e quantitativas. Para análises qualitativas, a coleta deverá ser feita com a rede de nylon de 35μ de poro nos ambientes lóticos e de 68μ de poro nos lênticos, em arrastos horizontais ou deixando a rede contra a correnteza por 15 minutos. Quando possível, realizar também arrastos verticais. Já nos pontos limnéticos, as amostras deverão ser obtidas pela filtragem da coluna d’água, a partir de um metro do fundo até a superfície, por meio de arrasto vertical, da ZONA FÓTICA ou, no mínimo, de cinco metros. Quando o disco de Secchi marcar abaixo de dois metros, utilizar uma rede de arrasto de, no mínimo, 30cm de diâmetro. O material filtrado deverá ser estocado em frasco de 250mL e refrigerado até a realização do exame a fresco. Para análise quantitativa, tanto no ambiente lótico quanto no lêntico, a coleta deverá ser feita na porção subsuperficial da coluna d’água, por filtragem de 200 litros de água na rede de nylon de 35μ de poro para lótico e 68μ de poro para lêntico, com auxílio de um balde de volume certificado. Para estocagem do material filtrado, colocar 100mL da amostra em um frasco de tampa plástica de 150 mL, gotejar 0,2 a 0,3mL de rosa de bengala e acrescentar 4mL de formol. No caso da análise quantitativa, o material deverá ser fixado, após 15 minutos, em formalina a 5%. Para o preparo da solução de rosa de bengala, são utilizados 0,5g de rosa de bengala e 100 mL de água destilada. Dissolva a substância em água destilada e, em seguida, complete o volume até 100mL. Fitoplâncton: Os organismos fitoplanctônicos deverão ser coletados com a rede de nylon de 25μ de poro, específica para captura de fitoplâncton. Em ambiente lótico, a 18

amostragem qualitativa deverá ser realizada por meio de arrasto horizontal, posicionando a rede contra a correnteza durante 15 minutos. Quando possível, coloque-a verticalmente. A amostragem qualitativa no reservatório (ambiente limnético) deverá ser por arrastos verticais na zona fótica. O material filtrado no arrasto deverá ser estocado em frasco de 250mL e refrigerado até a realização do exame a fresco. Para análise quantitativa, tanto no ambiente lótico quanto no ambiente lêntico, a coleta de um litro de água deverá ser feita na porção subsuperficial da coluna d’água, corada e preservada em lugol acético. Cianobactérias Em estudos da comunidade de cianobactérias, a metodologia de coleta deve atender aos objetivos do programa de monitoramento, de acordo com os usos específicos do corpo hídrico, levando em conta as características do manancial (lêntico ou lótico), bem como os demais aspectos do ambiente, que podem interferir na distribuição dos organismos planctônicos. Para que a amostra seja representativa do sistema, no caso de florações, deve- se considerar a distribuição espacial (horizontal e vertical) e a ação dos ventos, especialmente para as cianobactérias, que formam escumas superficiais pela deposição junto às margens. Alguns procedimentos utilizados na coleta e análise de cianobactérias são empregados, com maior frequência, no monitoramento de mananciais de abastecimento público pelas companhias de saneamento. Os procedimentos variam de acordo com o tipo de análise a ser realizada, conforme descrito a seguir: Coleta análise qualitativa Utiliza-se rede de plâncton de nylon com 20mm de abertura de malha e a coleta é realizada por meio de arraste horizontal repetidas vezes na subsuperfície (20cm abaixo da superfície) ou com o auxílio da embarcação. Ou ainda por arraste vertical, mergulhando a rede até uma profundidade previamente estabelecida e, em seguida, trazendo-a até a superfície. Coleta análise quantitativa A coleta de amostra para análise quantitativa pode ser realizada manualmente ou com auxílio de amostradores especiais, como garrafas de amostragens e bombas de sucção. Na coleta manual, o frasco de polietileno ou vidro neutro é levado a uma profundidade de 20cm aproximadamente. Em casos de florações superficiais, a coleta é realizada diretamente nos pontos de maior concentração de organismos (escuma). 19

ATENÇÃO<br />

Ao iniciar a coleta ou após a mudança <strong>de</strong> ponto, <strong>de</strong>ve-se lavar os equipamentos<br />

com água <strong>de</strong>stilada ou criar um ambiente com a própria água do ponto <strong>de</strong> coleta,<br />

a fim <strong>de</strong> evitar a contaminação das amostras e ocasionar falsos resultados do<br />

monitoramento.<br />

Zooplâncton:<br />

l<br />

As amostragens <strong>de</strong> zooplâncton <strong>de</strong>verão propiciar análises qualitativas e<br />

quantitativas. Para análises qualitativas, a coleta <strong>de</strong>verá ser feita com a re<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

nylon <strong>de</strong> 35μ <strong>de</strong> poro nos ambientes lóticos e <strong>de</strong> 68μ <strong>de</strong> poro nos lênticos, em<br />

arrastos horizontais ou <strong>de</strong>ixando a re<strong>de</strong> contra a correnteza por 15 minutos. Quando<br />

possível, realizar também arrastos verticais.<br />

Já nos pontos limnéticos, as amostras <strong>de</strong>verão ser obtidas pela filtragem da<br />

coluna d’água, a partir <strong>de</strong> um metro do fundo até a superfície, por meio <strong>de</strong> arrasto<br />

vertical, da ZONA FÓTICA ou, no mínimo, <strong>de</strong> cinco metros. Quando o disco <strong>de</strong><br />

Secchi marcar abaixo <strong>de</strong> dois metros, utilizar uma re<strong>de</strong> <strong>de</strong> arrasto <strong>de</strong>, no mínimo,<br />

30cm <strong>de</strong> diâmetro. O material filtrado <strong>de</strong>verá ser estocado em frasco <strong>de</strong> 250mL e<br />

refrigerado até a realização do exame a fresco.<br />

Para análise quantitativa, tanto no ambiente lótico quanto no lêntico, a coleta<br />

<strong>de</strong>verá ser feita na porção subsuperficial da coluna d’água, por filtragem <strong>de</strong> 200<br />

litros <strong>de</strong> água na re<strong>de</strong> <strong>de</strong> nylon <strong>de</strong> 35μ <strong>de</strong> poro para lótico e 68μ <strong>de</strong> poro para lêntico,<br />

com auxílio <strong>de</strong> um bal<strong>de</strong> <strong>de</strong> volume certificado. Para estocagem do material filtrado,<br />

colocar 100mL da amostra em um frasco <strong>de</strong> tampa plástica <strong>de</strong> 150 mL, gotejar<br />

0,2 a 0,3mL <strong>de</strong> rosa <strong>de</strong> bengala e acrescentar 4mL <strong>de</strong> formol. No caso da análise<br />

quantitativa, o material <strong>de</strong>verá ser fixado, após 15 minutos, em formalina a 5%.<br />

Para o preparo da solução <strong>de</strong> rosa <strong>de</strong> bengala, são utilizados 0,5g <strong>de</strong> rosa <strong>de</strong><br />

bengala e 100 mL <strong>de</strong> água <strong>de</strong>stilada. Dissolva a substância em água <strong>de</strong>stilada e, em<br />

seguida, complete o volume até 100mL.<br />

Fitoplâncton:<br />

Os organismos fitoplanctônicos <strong>de</strong>verão ser coletados com a re<strong>de</strong> <strong>de</strong> nylon<br />

<strong>de</strong> 25μ <strong>de</strong> poro, específica para captura <strong>de</strong> fitoplâncton. Em ambiente lótico, a<br />

18

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!