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Cirilo, PDRMATERIAL E MÉTODOS33Também foram extraídas as amostras de RNA do miométrio adjacente desses casos(n=34). O protocolo estabelecido para extração de RNA foi o RNeasy Mini Kit (Qiagen). Aqualidade e a pureza do RNA foram avaliadas utilizando-se espectrofotômetro (NanoDropND-1000 Spectrophotometer v.3.0.1, Labtrade) e o Bioanalyzer (RNA 6000 NanoLabChipkit 2100 Agilent Technologies), respectivamente.3.4 CGH array – Marcação, hibridação e análiseForam utilizadas as lâminas Agilent Human 4x44K CGH Microarrays (AgilentTechnologies). Esta é uma plataforma de oligonucleotídeos de 60pb com espaçamentomédio entre as sondas de aproximadamente 43Kb. A resolução desta plataforma é deaproximadamente 76Kb, que é o resultado da razão entre o número de pares de base dogenoma humano (~ 3.260Mb) sobre o espaçamento das sondas na plataforma (43Kb).Possuem aproximadamente 43.000 sondas que mapeiam genes bem caracterizados,particularmente aqueles envolvidos em câncer, incluindo sequências codificadoras e nãocodificadoras(http://www.chem.agilent.com). DNA Genômico Universal (Promega) foiutilizado como amostra referência, que é constituído por amostras genômicasprovenientes de vários doadores.Amostras tumorais com moléculas de DNA de alto peso molecular foramsubmetidas à marcação pelo Kit Bioprime CGH Labeling Module (Invitrogen), de acordocom especificações do fabricante. Para a realização dos experimentos foram utilizados500ng de DNA os quais foram submetidos a uma etapa de digestão enzimática randômicaem reação contendo água ultra-pura estéril; 2,6µL de tampão 10x; 0,2µL de BSA; 0,5µL decada enzima (AluI e RsaI) totalizando 26µL. As reações foram incubadas a 37°C por 2horas, 65°C por 20min e mantidas em gelo durante o procedimento. Foram adicionados nareação 20µL de Random Primer (Invitrogen), e então, as amostras foram desnaturadas a95°C por 5min e transferidas para o gelo. As amostras de referência e teste foram
Cirilo, PDRMATERIAL E MÉTODOS34marcadas com 1,5µL de Cy3 e Cy5 dCTPs, respectivamente acrescidas de 5µL do dNTP mixe 1µL da enzima Exo-Klenow. A reação de marcação foi realizada a 37°C por 2horas, 65°Cpor 10min e mantidas em gelo durante a reação. As amostras foram purificadas em minicolunasde celulose (Microcon YM-30, Millipore) e ressuspendidas em 21µL de TE (tampãoTris-EDTA) 1x pH=8.0 (Prodimol). A eficiência de marcação das amostras foi obtidabaseando-se na razão entre pmol/µL do corante sobre concentração em µg/µL. Asamostras referência e teste com eficiências semelhantes foram combinadas. Adicionou-sea cada reação Human Cot DNA, 10X Blocking Agent e 2X Hi-RPM Hybridization Solution. Areação foi desnaturada a 95°C por 3min e incubada a 37°C por 30min. As amostras foramaplicadas nas lâminas e permaneceram a 65°C a 20rpm por 24hs. Após este período, asimagens de hibridação de cada lâmina foram capturadas usando o Scanner AgilentG2565CA. Os dados foram extraídos pelo programa Feature Extraction v.10.1.1.1 (AgilentTechnologies).A análise dos dados foi realizada utilizando o programa Nexus v.5.0 (Biodiscovery).Apenas os casos que apresentaram valores de qualidade de hibridação ≤0,3 foramselecionados para análise. Todas as amostras preencheram este critério. As amostrasforam hibridadas utilizando DNA de referência masculino pois essa estratégia, é umcontrole de hibridação a cada experimento, devido à competição não balanceada nahibridação das sequências dos cromossomos sexuais. Portanto, alterações envolvendo oscromossomos X e Y foram excluídas das análises.O algoritmo Rank Segmentation foi utilizado para segmentar cada intervalocromossômico e estimar o número de cópias. Este método é uma variante do algoritmoCBS, que utiliza um modelo paramétrico, em vez de testes de permutação, para determinara significância dos agrupamentos de segmentação (Olshen et al., 2004). Os parâmetros deanálise foram: limiar de significância de 1,00E- 4 , espaçamento máximo de 1Mb entresondas adjacentes e a presença de três sondas consecutivas alteradas para determinaçãode um segmento de DNA alterado. Os limiares para a classificação de ganhos ou perdas
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Cirilo, PDRMATERIAL E MÉTODOS34marcadas com 1,5µL <strong>de</strong> Cy3 e Cy5 dCTPs, respectivamente acrescidas <strong>de</strong> 5µL do dNTP mixe 1µL da enzima Exo-Klenow. A reação <strong>de</strong> marcação foi realizada a 37°C por 2horas, 65°Cpor 10min e mantidas em gelo durante a reação. As amostras foram purificadas em minicolunas<strong>de</strong> celulose (Microcon YM-30, Millipore) e ressuspendidas em 21µL <strong>de</strong> TE (tampãoTris-EDTA) 1x pH=8.0 (Prodimol). A eficiência <strong>de</strong> marcação das amostras foi obtidabaseando-se na razão entre pmol/µL do corante sobre concentração em µg/µL. Asamostras referência e teste com eficiências semelhantes foram combinadas. Adicionou-sea cada reação Human Cot DNA, 10X Blocking Agent e 2X Hi-RPM Hybridization Solution. Areação foi <strong>de</strong>snaturada a 95°C por 3min e incubada a 37°C por 30min. As amostras foramaplicadas nas lâminas e permaneceram a 65°C a 20rpm por 24hs. Após este período, asimagens <strong>de</strong> hibridação <strong>de</strong> cada lâmina foram capturadas usando o Scanner AgilentG2565CA. Os dados foram extraídos pelo programa Feature Extraction v.10.1.1.1 (AgilentTechnologies).A análise dos dados foi realizada utilizando o programa Nexus v.5.0 (Biodiscovery).Apenas os casos que apresentaram valores <strong>de</strong> qualida<strong>de</strong> <strong>de</strong> hibridação ≤0,3 foramselecionados para análise. Todas as amostras preencheram este critério. As amostrasforam hibridadas utilizando DNA <strong>de</strong> referência masculino pois essa estratégia, é umcontrole <strong>de</strong> hibridação a cada experimento, <strong>de</strong>vido à competição não balanceada nahibridação das sequências dos cromossomos sexuais. Portanto, alterações envolvendo oscromossomos X e Y foram excluídas das análises.O algoritmo Rank Segmentation foi utilizado para segmentar cada intervalocromossômico e estimar o número <strong>de</strong> cópias. Este método é uma variante do algoritmoCBS, que utiliza um mo<strong>de</strong>lo paramétrico, em vez <strong>de</strong> testes <strong>de</strong> permutação, para <strong>de</strong>terminara significância dos agrupamentos <strong>de</strong> segmentação (Olshen et al., 2004). Os parâmetros <strong>de</strong>análise foram: limiar <strong>de</strong> significância <strong>de</strong> 1,00E- 4 , espaçamento máximo <strong>de</strong> 1Mb entresondas adjacentes e a presença <strong>de</strong> três sondas consecutivas alteradas para <strong>de</strong>terminação<strong>de</strong> um segmento <strong>de</strong> DNA alterado. Os limiares para a classificação <strong>de</strong> ganhos ou perdas