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Compostos fenólicos e atividade antioxidante de extratos da casca ...

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www.ital.sp.gov.br/bj<br />

<strong>Compostos</strong> fenólicos e <strong>ativi<strong>da</strong><strong>de</strong></strong> <strong>antioxi<strong>da</strong>nte</strong> <strong>de</strong> <strong>extratos</strong> <strong>da</strong> <strong>casca</strong> <strong>de</strong> noz-pecã [Carya illinoinensis (Wangenh.) C. Koch]<br />

PRADO, A. C. P. et al.<br />

<strong>da</strong> marca Tecnal ® ), seca em estufa com circulação <strong>de</strong> ar<br />

(mo<strong>de</strong>lo 400/D 200 °C <strong>da</strong> marca Nova Ética ® ), e moí<strong>da</strong> em<br />

moinho analítico <strong>de</strong> laboratório (mo<strong>de</strong>lo A-11 <strong>da</strong> marca<br />

IKA Works ® ). O pó foi peneirado a 60 mesh e submetido<br />

à extração sequencial com éter, acetona, álcool e água<br />

<strong>de</strong>stila<strong>da</strong> à temperatura ambiente. Após ca<strong>da</strong> etapa <strong>de</strong><br />

extração, os resíduos <strong>da</strong> extração sequencial foram secos<br />

em estufa com circulação <strong>de</strong> ar a 40 °C até a evaporação<br />

completa do solvente e submetidos ao processo <strong>de</strong><br />

extração subsequente com o próximo solvente. O procedimento<br />

realizado po<strong>de</strong> ser observado na Figura 1.<br />

Os <strong>extratos</strong> foram filtrados a vácuo em papel filtro,<br />

marca Whatman 541, 125 mm, e os volumes completados<br />

até 100 mL e armazenados em frasco âmbar, com atmosfera<br />

<strong>de</strong> nitrogênio, em freezer, para análises posteriores<br />

(WILKINSON, 2000).<br />

2.3 Determinação do peso seco dos <strong>extratos</strong> -<br />

Extrato Seco (ES)<br />

A <strong>de</strong>terminação do extrato seco (ES) foi realiza<strong>da</strong><br />

por gravimetria, tomando-se uma alíquota <strong>de</strong> 5 mL em<br />

cadinho <strong>de</strong> porcelana, previamente tarado, seguido <strong>de</strong><br />

secagem em estufa a 105,0 ± 0,5 °C até peso constante<br />

(HORWITZ, 2005). Os resultados do peso seco, além <strong>de</strong><br />

<strong>de</strong>monstrarem o rendimento do processo <strong>de</strong> extração,<br />

foram utilizados no cálculo <strong>da</strong>s alíquotas <strong>de</strong> extrato (200,<br />

300 e 500 ppm que equivalem a μL.mL –1 extrato seco<br />

2,5 g <strong>de</strong> <strong>casca</strong> seca moí<strong>da</strong> <strong>de</strong>sengordura<strong>da</strong><br />

100 mL éter<br />

1 h agitação<br />

Filtração<br />

Sobrena<strong>da</strong>nte<br />

(extrato etéreo)<br />

Sobrena<strong>da</strong>nte<br />

(extrato acetona)<br />

Sobrena<strong>da</strong>nte<br />

(extrato alcoólico)<br />

Sobrena<strong>da</strong>nte<br />

(extrato aquoso)<br />

Resíduo<br />

Resíduo<br />

Resíduo<br />

Resíduo<br />

(<strong>de</strong>sprezado)<br />

100 mL acetona<br />

1 h agitação<br />

Filtração<br />

100 mL álcool<br />

1 h agitação<br />

Filtração<br />

100 mL água<br />

1 h agitação<br />

Filtração<br />

Figura 1. Diagrama do procedimento <strong>de</strong> extração <strong>da</strong> <strong>casca</strong> <strong>de</strong><br />

noz-pecã com diferentes solventes. Realizado <strong>de</strong> acordo com<br />

o proposto por Moreira (2003).<br />

presente na solução <strong>de</strong> extrato), utiliza<strong>da</strong>s na análise <strong>de</strong><br />

<strong>ativi<strong>da</strong><strong>de</strong></strong> <strong>antioxi<strong>da</strong>nte</strong> no sistema mo<strong>de</strong>lo ß-caroteno e<br />

ácido linoleico. To<strong>da</strong>s as <strong>de</strong>terminações foram realiza<strong>da</strong>s<br />

em triplicata.<br />

2.4 Determinação <strong>de</strong> compostos fenólicos totais<br />

O conteúdo <strong>de</strong> fenólicos totais foi <strong>de</strong>terminado<br />

utilizando o método colorimétrico <strong>de</strong> Folin-Ciocalteau<br />

com algumas modificações (BEAL, 2006; BUDINI et al.,<br />

1980). Alíquotas (100 μL) <strong>de</strong> diluições apropria<strong>da</strong>s dos<br />

<strong>extratos</strong> foram oxi<strong>da</strong><strong>da</strong>s com 500 μL do reagente <strong>de</strong><br />

Follin-Ciacauteau. A reação foi neutraliza<strong>da</strong> com 1,5 mL<br />

<strong>de</strong> carbonato <strong>de</strong> sódio saturado (75 g.L –1 ) e os volumes<br />

foram completados até 10 mL através <strong>da</strong> adição <strong>de</strong><br />

água <strong>de</strong>ioniza<strong>da</strong>. Após incubação por 2 h à temperatura<br />

ambiente, a absorbância <strong>da</strong> solução azul resultante foi<br />

medi<strong>da</strong> a 764 nm. A quantificação foi feita com base em<br />

curva padrão <strong>de</strong> ácido gálico e os resultados expressos<br />

em mg GAE.g –1 (equivalente <strong>de</strong> ácido gálico) em peso<br />

seco.<br />

2.5 Determinação do teor <strong>de</strong> taninos con<strong>de</strong>nsados<br />

Para a <strong>de</strong>terminação do teor <strong>de</strong> taninos con<strong>de</strong>nsados<br />

proce<strong>de</strong>u-se <strong>de</strong> acordo com Price et al. (1978) e<br />

a<strong>da</strong>ptado por Villarreal-Lozoya et al. (2007). Foram coleta<strong>da</strong>s<br />

alíquotas <strong>de</strong> 1 mL <strong>de</strong> diluições apropria<strong>da</strong>s dos<br />

<strong>extratos</strong> e coloca<strong>da</strong>s em 2 tubos <strong>de</strong> ensaio separados<br />

(1 para a amostra e outro para o branco). Foram, então,<br />

adicionados 5 mL do reagente Vanilina (0,5 g <strong>de</strong> reagente<br />

e 200 mL <strong>de</strong> HCl 4%/metanol) para as amostras, e HCl<br />

4%/metanol para o branco. Os tubos <strong>de</strong> ensaio foram<br />

mantidos ao abrigo <strong>da</strong> luz por um período <strong>de</strong> 20 min e as<br />

medi<strong>da</strong>s <strong>da</strong>s absorbâncias foram realiza<strong>da</strong>s em espectrofotômetro<br />

em 500 nm. Os resultados foram expressos em<br />

mg CE.g –1 (mg equivalente <strong>de</strong> catequina.g –1 <strong>de</strong> amostra<br />

<strong>de</strong>sengordura<strong>da</strong>).<br />

2.6 Determinação <strong>da</strong> capaci<strong>da</strong><strong>de</strong> <strong>antioxi<strong>da</strong>nte</strong><br />

2.6.1 Método ABTS<br />

O método ABTS [2,2’-azino-bis-(3- etilbenzotiazolina-6-ácido<br />

sulfônico)] foi realizado <strong>de</strong> acordo com Re<br />

et al. (1999) com algumas modificações. Após o preparo<br />

do radical ABTS - [2,2’-azino-bis-(3- etilbenzotiazolina-<br />

6-ácido sulfônico)] - (7 mM - 0,03836 g do reativo ABTS<br />

dissolvido em 10 mL <strong>de</strong> água <strong>de</strong>ioniza<strong>da</strong>), foi prepara<strong>da</strong><br />

uma solução <strong>de</strong> persulfato potássico (2,45 mM - 10 mL <strong>de</strong><br />

ABTS e 10 mL <strong>de</strong> persulfato misturados, homogeneizados<br />

e mantidos num frasco âmbar pelo mínimo <strong>de</strong> 16 h protegido<br />

<strong>da</strong> luz). Para o ensaio <strong>da</strong> amostra, foi pipeta<strong>da</strong> uma<br />

alíquota <strong>de</strong> 200 μL do radical formado e diluído em 10 mL<br />

<strong>de</strong> etanol 96° P.A. Medi<strong>da</strong>s <strong>de</strong> absorbância em cubetas<br />

<strong>de</strong> 10 mm a 734 nm foram realiza<strong>da</strong>s para certificação <strong>da</strong><br />

Braz. J. Food Technol., v. 12, n. 4, p. 323-332, out./<strong>de</strong>z. 2009 325

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