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Anais do XVII Encontro de Iniciação Científica – ISSN 1982-0178<br />
Anais do II Encontro de Iniciação em Desenvolvimento Tecnológico e Inovação – ISSN 2237-0420<br />
25 e 26 de setembro de 2012<br />
AVALIAÇÃO DA ATIVIDADE REGENERADORA DE IMPLANTES IN-<br />
TRAÓSSEO DE GUTA-PERCHA REVESTIDO POR MICRODILUI-<br />
ÇÃO DINAMIZADA DE Arnica montana<br />
Thais Batista Fernandes<br />
Faculdade de Ciências Farmacêuticas<br />
Centro de Ciências da Vida<br />
thais.bf@puccampinas.edu.br<br />
Pedro Paulo Barros<br />
Grupo de Pesquisa ou Programa do Orientador<br />
Centro de Ciências da Vida<br />
barrospp@puc-campinas.edu.br<br />
Resumo: Este trabalho avaliou in vivo, a resposta<br />
tecidual óssea após realização de implante, em falha<br />
óssea tibial, de um tipo de material biocompatível, o<br />
guta-percha, revestido com solução microdiluida e<br />
dinamizada de Arnica Montana. Foram utilizados 16<br />
ratos albinos da linhagem Wistar divididos em 4 grupos.<br />
Os corpos de prova do material, cones de gutapercha<br />
revestidos com microdiluição dinamizada de<br />
Arnica montana, permaneceram implantados por 24<br />
horas, 1 semana, 2 semanas e 4 semanas em falha<br />
óssea na tíbia da pata esquerda traseira e no tecido<br />
subcutâneo da região dorsal. Lâminas histológicas<br />
dos espécimes do tecido ósseo e subcutâneo, contendo<br />
os corpos de prova do material, foram coradas<br />
em Hematoxilina-Eosina, fotografados e analisadas<br />
histomorfometricamente. A resposta tecidual foi analisada<br />
levando-se em consideração a presença e<br />
intensidade de inflamação e de componentes do infiltrado<br />
celular inflamatório, fibrócitos e fibroblastos,<br />
associadas ao processo cicatricial e de regeneração<br />
óssea. Conclusão: O material implantado não interferiu<br />
significativamente no processo de ossificação da<br />
falha óssea. Os resultados obtidos mostram que a<br />
microdiluição dinamizada de Arnica montana não<br />
desencadeou processo inflamatório, não havendo<br />
alterações no perfil normal de cicatrização, sugerindo<br />
que o material também não interfira neste processo<br />
regenerativo.<br />
Palavras-chave: Homeopatia, Implantes, Arnica<br />
montana, ratos.<br />
Área do Conhecimento: Saúde (400.00.00-1) - Materiais<br />
Odontológicos (4.02.09.00-8).<br />
1. INTRODUÇÃO<br />
Em fraturas de ossos compactos, onde há perda<br />
substancial de tecido ósseo, a reconstituição da peça<br />
óssea, pode ser realizada com diferentes materiais<br />
para enxerto, autógenos ou não, com o intuito de<br />
recuperar o osso perdido e tornar possível sua reabilitação.<br />
Nestes casos, o enxerto ósseo é fixado na<br />
sua nova posição e somente as células osteogênicas<br />
do periósteo, endósteo e osteócitos próximos às superfícies<br />
banhadas pelo líquido tissular, possuem<br />
condições favoráveis de sobrevivência [1]. A aquisição<br />
de enxerto ósseo autógeno traz riscos ao paciente,<br />
incluindo incisão cirúrgica adicional, aumento<br />
da morbidade pós-operatória, debilitação do local<br />
doador e quantidade disponível insatisfatória de enxerto<br />
autógeno, como nas crianças e adultos submetidos<br />
a procedimentos operatórios anteriores [2,3].<br />
Para manter ou auxiliar a capacidade regenerativa<br />
inerente, de forma relativamente inalterada, utilizamse<br />
substitutos ósseos [4] osteoindutores e osteocondutores.<br />
Uma das vantagens desses substitutos ósseos<br />
é não produzir trauma adicional ao paciente ou<br />
qualquer outro tipo de risco conforme citado. O material<br />
osteoindutor estimula as células indiferenciadas<br />
da ferida a se converterem fenotipicamente em células<br />
osteoprogenitoras, e conseqüentemente osteoblastos,<br />
responsáveis pela neoformação óssea [5].<br />
Os osteocondutores não têm capacidade de induzir a<br />
citodiferenciação de osteoblastos, mas podem preencher<br />
a falha, orientando as novas células originadas<br />
por proliferação de células osteoprogenitoras<br />
[5,6].<br />
Assim, atualmente, a regeneração tecidual guiada<br />
(RTG) tem apresentado bons resultados, especificamente<br />
a regeneração óssea guiada (ROG), que foi<br />
uma seqüência lógica e natural dos princípios criados<br />
para a RTG. O princípio da ROG baseia-se na<br />
função desempenhada pelo periósteo no organismo,<br />
ou seja, isolar o tecido ósseo do tecido adjacente,<br />
criando desta forma condições ideais para a neoformação<br />
óssea [7]. Este autor, estudando a capacidade<br />
osteogênica do periósteo em ratos adultos, observou<br />
que se houvesse deslocamento ou fosse excisionado,<br />
perderia esta característica. Em 1971 foi<br />
realizado novo estudo pelo mesmo autor em ratos<br />
jovens, sendo verificado que o deslocamento do periósteo<br />
não levava à perda da capacidade osteogêni-
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ca, o que foi explicado pela melhor atividade osteoblástica<br />
dos animais jovens.<br />
Devido às diferenças de velocidade de divisão e diferenciação<br />
celulares dos diferentes tecidos, o tecido<br />
conjuntivo frouxo e o tecido epitelial competem com<br />
vantagem com o tecido ósseo ou outros, como o ligamento<br />
periodontal, por exemplo, e impedem a regeneração<br />
desses últimos [8,9,10,11,12] e assim a<br />
ROG favorece significativamente a neoformação óssea<br />
na consolidação de falhas e fraturas. Evidentemente,<br />
o processo de ossificação depende também<br />
da ocorrência de mineralização efetiva, e para esta<br />
existem requisitos básicos, como uma concentração<br />
adequada de íons cálcio e fosfato, presença de matriz<br />
a ser calcificada, agentes de nucleação e controle<br />
de agentes reguladores (promotores e inibidores).<br />
Adicionalmente, a formação óssea depende de dois<br />
pré requisitos indispensáveis: suporte sangüíneo<br />
amplo e suporte mecânico [13] sendo que o segundo<br />
pode ser dado pelos diversos materiais utilizados na<br />
ROG.<br />
Os biomateriais inorgânicos são compostos alternativos<br />
ao uso de enxertos ósseos autógenos por serem<br />
produzidos com propriedades potencialmente semelhantes<br />
às do tecido receptor e quando usados em<br />
defeitos de ossos longos constituem-se um obstáculo<br />
à invasão do tecido mole vizinho, permitindo crescimento<br />
de tecido ósseo diretamente sobre suas trabéculas<br />
porosas e acelulares [14,15]. Estes representam<br />
uma boa alternativa para utilização na ROG.<br />
DAHLIN et al. [16] inseriram implantes na tíbia de<br />
coelhos, e testaram a técnica da ROG, para gerar<br />
osso em torno de implantes de titânio, em que isolando-se<br />
o defeito ósseo dos tecidos moles adjacentes,<br />
ocorria uma formação completa e seletiva de<br />
osso. As áreas dos implantes cobertas pela membrana<br />
mostraram um crescimento de osso novo significante,<br />
indicando que a técnica da membrana seria<br />
um método cirúrgico reconstrutivo que poderia ser<br />
aplicado para criar osso em volta das roscas expostas<br />
dos implantes de titânio, em situação clínica.<br />
Os materiais (barreiras físicas) utilizados para ROG<br />
apresentam características diferentes de absorção,<br />
ou seja, podem ser não-absorvíveis e absorvíveis.<br />
As primeiras membranas não-absorvíveis comerciais<br />
aprovadas para uso clínico foram feitas de politetrafluoroetileno<br />
<strong>expandido</strong> (e-PTFE) e teflon poroso<br />
[17,18,19]. Outras membranas não-absorvíveis também<br />
foram estudadas, como membranas de politetrafluoroetileno<br />
(PTFE) [20], silicone (Biobrane®)<br />
[21] e celulose [22]. Estudos indicam um melhor preenchimento<br />
dos defeitos obtidos com o uso de uma<br />
membrana não-absorvível [20]. Devido as suas boas<br />
características e aplicabilidade, membranas absorvíveis<br />
com características similares às não-absorvíveis<br />
foram então desenvolvidas: membranas de colágeno<br />
[23,24], ácido poliláctico (Guidor®) [25], poliglactina<br />
910 (Vicryl®) [26] e ácido poliláctico glicólico<br />
(PLGA®) [27]. Elas são conhecidas clinicamente,<br />
sobretudo devido ao fato de que uma segunda intervenção<br />
cirúrgica seja desnecessária, pois se espera<br />
que sejam completamente reabsorvidas em 12 meses<br />
[28].<br />
No caso específico de membranas não absorvíveis<br />
como o Politetrafluoretileno Expandido (e-PTFE), sua<br />
estrutura não permite a penetração de células sendo<br />
um fator importante para o seu sucesso como barreira<br />
física [13] Inúmeros estudos experimentais em<br />
animais demonstraram que o material da membrana<br />
é bioinerte e permite a integração tecidual sem complicação,<br />
uma vez que se pode obter a cicatrização<br />
submersa sem o contato direto à cavidade oral. Para<br />
indicações periodontais o uso de membranas absorvíveis<br />
pode ter a vantagem de se evitar um segundo<br />
procedimento cirúrgico para a sua remoção. Entretanto,<br />
o uso de membranas absorvíveis para indicações<br />
implantares não oferece esta vantagem, uma<br />
vez que os sítios cirúrgicos precisam ser reabertos<br />
de qualquer forma, tanto para a conexão do abutment<br />
(abordagem simultânea) quanto para colocação<br />
do implante [13].<br />
Além destes, outros materiais não tão convencionais<br />
foram testados para utilização na regeneração óssea<br />
guiada ou simplesmente com o objetivo de verificar<br />
biocompatilidade e emprego como implante ósseo.<br />
SASSIOTO e colaboradores [29] realizaram estudo<br />
do reparo ósseo com matriz óssea bovina desvitalizada<br />
e calcitonina em ratos verificando que uso de<br />
calcitonina em defeitos preenchidos com matriz óssea<br />
bovina desvitalizada estimula a neoformação<br />
óssea com 7 e 14 dias de pós-operatório.<br />
CIANI e colaboradores [30] desenvolveram estudo<br />
utilizando mistura de proteínas morfogenéticas ósseas,<br />
hidroxiapatita, osso inorgânico e colágeno, envolta<br />
por membrana de pericárdio, no preenchimento<br />
de defeito ósseo segmentar em coelhos e verificaram,<br />
ao contrário do esperado, que a regeneração<br />
óssea foi inibida nos defeitos segmentares tratados<br />
com este biomaterial.<br />
OLIVEIRA e colaboradores [31] estudando a biocompatibilidade<br />
e uso da membrana fibrosa da casca<br />
de ovo na regeneração óssea guiada, verificaram<br />
que este material é biocompatível devido a ausência<br />
de infiltrado linfoplasmocitário nos tecidos, funcionando<br />
também como barreira, permitindo a produção<br />
de osso, com utilidade na ROG.<br />
Polímeros e materiais odontológicos foram testados<br />
como implantes ósseos, sendo que o sistema polica-
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prolactona/NAFION®, proporção 70/30, demonstrou<br />
ser uma estrutura de suporte temporário e na proporção<br />
90/10 não favoreceu a migração e o crescimento<br />
celular [32] Implantes ósseos de Mineral Trioxide<br />
Aggregate [33] e subcutâneos de cones de Guta-percha<br />
e Resilon [34] se mostraram biocompatíveis<br />
nestes tecidos, sugerindo potencial utilização na<br />
ROG, porém há necessidade de realização de testes<br />
complementares.<br />
Em meados do século XIX, segundo SOLER &<br />
SHOCRON [35], Bowmann, em 1867, introduziu na<br />
Endodontia a guta-percha, uma substância vegetal<br />
extraída sob a forma de látex de árvores da família<br />
das sapotáceas (Mimusops balata e Mimusops hiberi),<br />
a qual tem sido aceita como o melhor material<br />
para a obturação do sistema de canais radiculares.<br />
Este material encontra-se disponível para o uso o-<br />
dontológico em associação a outros componentes<br />
numa proporção aproximada de 20% de gutapercha,<br />
60 a 75% de óxido de zinco e os demais e-<br />
lementos em proporções menores (1,5 a 15% aproximadamente).<br />
A guta-percha apresenta-se sob duas<br />
formas cristalinas distintas: α (alfa-cristalina) e β (beta-cristalina)<br />
[36]. A guta-percha na forma alfacristalina<br />
é quebradiça à temperatura ambiente, tornando-se,<br />
quando aquecida, pegajosa, aderente e<br />
com maior escoamento. Sua temperatura de fusão é<br />
de 65°C. Já a forma beta-cristalina, disponível comercialmente,<br />
na maioria dos casos, é estável e flexível<br />
à temperatura ambiente. Quando aquecida, não<br />
passa a apresentar adesividade e tem menor escoamento<br />
do que a forma alfa. Sua temperatura de<br />
fusão é de 56°C [37,38].<br />
O uso de plantas com finalidade medicinal para fins<br />
curativos e paliativos, data do período Paleolítico<br />
[39]. O consumo de plantas medicinais in natura ou<br />
devidamente preparadas vem apresentando um<br />
crescimento considerável em diversos países. Essa<br />
tendência pode ser explicada por diferentes fatores,<br />
destacando-se entre eles o custo elevado e os efeitos<br />
indesejáveis dos fármacos sintéticos, preferência<br />
dos consumidores por “produtos naturais”, a certificação<br />
científica das propriedades farmacológicas de<br />
espécies vegetais, o desenvolvimento de novos métodos<br />
analíticos realizados para um controle de qualidade,<br />
o desenvolvimento de novas formas de preparação<br />
e administração de produtos fitoterápicos,<br />
um melhor conhecimento químico, farmacológico e<br />
clínico das drogas vegetais e seus derivados [40].<br />
Nesse sentido, existem fitoterápicos, como a Arnica<br />
Montana, muito utilizados para fins curativos, e neste<br />
caso em específico, a arnica se mostra bastante efetiva<br />
no tratamento de traumatismos músculoesqueléticos<br />
devido a suas propriedades cicatrizante,<br />
antiinflamatória e regeneradora.<br />
A Arnica Montana, pertence à família das Asteraceas,<br />
sendo nativa das regiões montanhosas da Europa<br />
central, como Alpes e Pireneus, além do sul da<br />
Scandinávia se estende através dos estados da União<br />
Soviética até a região da Sibéria [41]. É uma planta<br />
vivaz pelos seus rizomas horizontais, de caules<br />
herbáceos anuais, erectos, simples, com folhas basilares,<br />
sésseis, em roseta e caulinares pouco numerosas,<br />
mais lanceoladas e menores, peludogrânulosas<br />
e flores em capítulos solitaries [42]. Na<br />
terapêutica utilizam-se os rizomas e principalmente<br />
os capítulos florais, constituindo a droga vegetal<br />
quando secos, e esta se encontra inscrita em Farmacopéias<br />
de vários países, inclusive nas três primeiras<br />
edições da Farmacopéia Brasileira (Farmacopéia,<br />
1926; 1959; 1977).<br />
A arnica apresenta extratos com propriedades na<br />
absorção de edemas, e cicatrização de feridas, propriedades<br />
analgésicas e antinflamatória [43]. É utilizada<br />
topicamente em contusões, inflamações [44],<br />
ferimentos e hemorragias subcutâneas [45].<br />
Os principais constituintes e substâncias ativas da<br />
arnica são a inulina, taninos, resinas, ceras, mistura<br />
de diversos ácidos como linoléicos, linolênico, mirístico<br />
e palmítico, hidrocarbonetos parafínicos, ácidos<br />
orgânicos (fórmico, angélico, málico, caféico e gálhico),<br />
arnicina, arnidiol e sitosterina. Além desses foram<br />
identificados por cromatografia isoquercitrina,<br />
quercetol-3 glucogalacturônido, astragalina e eugenina.<br />
O óleo essencial contém ésteres metílicos dos<br />
ácidos fórmico, butírico valeriânico, láurico, palmítico,<br />
acético e isobutírico e a dimetil-timo-hidroquinona.<br />
Na flor foram também encontrados arnicina, arnisterina,<br />
arnicaína (alcalóide), fitosterina, ácidos málico e<br />
tânico [42,41].<br />
TESKE E TRENTINE [46] afirmam que vários compostos<br />
de Arnica montana apresentam atividade biológica:<br />
os triterpenos são espasmolíticos e musculatura<br />
lisa, sobretudo dos vasos que atuam na limitação<br />
da resposta inflamatória tecidual. Os flavonóides<br />
potencializam a ação dos terpenos, estabilizando a<br />
membrana celular. As propriedades antiinflamatória<br />
e analgésica da arnica se explicam pela diminuição<br />
da atividade enzimática no processo inflamatório. O<br />
fitocomplexo bloqueia a inflamação causada por<br />
traumatismos, diminui a formação de exsudato e incrementa<br />
a reabsorção e a ação de células responsáveis<br />
pela destruição de fragmentos biológicos.<br />
Além do grande emprego na Arnica Montana na fitoterapia,<br />
que faz parte da concepção alopática, este<br />
vegetal apresenta importante utilização na homeopatia,<br />
sendo considerada um policresto (do grego,
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polys = muitos e khéstos = benéfico; e do latim polychrestus<br />
= que tem muitas aplicações). Apesar de<br />
sua ampla aplicação homeopática nos vários sistemas<br />
orgânicos, assim como na fitoterapia, a arnica é<br />
indicada especialmente para o tratamento para<br />
traumatismos, fraturas, dores e hemorragias [47].<br />
ALECU e colaboradores [48] realizaram estudo visando<br />
verificar o efeito do medicamento homeopático<br />
Arnica montana 7CH no traumatismo mecânico<br />
em camundongos e verificaram que a Arnica montana<br />
7CH, administrado por sonda imediatamente depois<br />
da produção de traumatismo, apresentou efeito<br />
estatisticamente significativo na redução do edema<br />
traumático, assim como do tempo necessário para a<br />
recuperação funcional do membro afetado em animais<br />
de experimentação.<br />
Estes mesmo autores [49] verificaram que o medicamento<br />
homeopático de Arnica montana 7 CH e 30<br />
CH apresentaram efeito estatisticamente significativo<br />
no tempo de cicatrização de incisão cirúrgica em ratos.<br />
Existem ainda relatos de avaliação clínica com arnica<br />
(em medicamento homeopático) em inflamações<br />
de origem odontológica. A arnica foi utilizada em pacientes<br />
submetidos à remoção cirúrgica de terceiros<br />
molares inferiores, iniciando o tratamento três dias<br />
antes da cirurgia. Não houve edema em 90% dos<br />
pacientes, devido à redução da permeabilidade capilar<br />
resultando em diminuição do sangramento durante<br />
a cirurgia [50]<br />
A efetividade da homeopatia no processo reparação<br />
ósseo já foi verificada anteriormente em experimento<br />
realizado por ALMEIDA e colaboradores [51] em estudo<br />
de reparação óssea em mandíbula de ratos<br />
sem barreira mecânica, utilizando-se o medicamento<br />
Plumbum metallicum 30 CH. Os resultados do trabalho<br />
mostraram que esse medicamento favoreceu a<br />
reparação dos defeitos ósseos.<br />
2. OBJETIVO<br />
Avaliar in vivo a atividade regeneradora do tecido<br />
ósseo após realização de implante, em falha óssea<br />
tibial, de um tipo de material biocompatível, o gutapercha,<br />
revestido com solução microdiluida e dinamizada<br />
de Arnica montana.<br />
3. METODOLOGIA<br />
3.1 Processo de revestimento da microdiluição<br />
dinamizada nos cones de guta-percha<br />
Em um vidro de relógio com 12 cm de diâmetro, adicionou-se<br />
10 mL da microdiluição dinamizada de<br />
Arnica montana, juntamente com 10 cones de gutapercha,<br />
deixando em repouso por 15 minutos, em<br />
temperatura ambiente.<br />
3.2 Implantes<br />
Foram utilizados 16 ratos albinos da linhagem Wistar<br />
divididos em 4 grupos de acordo com o tempo de<br />
permanência do material implantado: 24 horas, 1, 2 e<br />
4 semanas.<br />
Após pesagem dos animais, estes foram submetidos<br />
à anestesia geral por solução de Cloridrato de Xylasina<br />
(Virbaxyl ® 2%) + Ketamina (Francotar ® ), administrado<br />
por via intramuscular na dose de 1,5 mL/Kg<br />
de peso corporal. Posteriormente, os animais foram<br />
colocados em placa de contenção e tiveram as patas<br />
traseiras e a região dorsal tricotomizadas.<br />
Após tricotomização e assepsia, fez-se uma incisão<br />
na pele, de aproximadamente 1,0 cm com uma tesoura<br />
de ponta fina, paralelamente ao longo do eixo<br />
da tíbia. Com o auxílio de um bisturi, seccionou-se o<br />
tecido muscular até a exposição do periósteo, que<br />
em seguida foi rebatido cuidadosamente até a exposição<br />
do tecido ósseo. Com o uso de um minimotor<br />
de baixa rotação e uma broca com 2,0 mm de diâmetro,<br />
foi feito um orifício (falha óssea) no terço superior<br />
da tíbia de modo a permitir a introdução do<br />
corpo de prova. Realizou-se este procedimento nas<br />
duas tíbias das patas traseiras de cada animal. Na<br />
tíbia da pata traseira esquerda, implantou-se o corpo<br />
de prova, cone de Guta-percha revestido de microdiluição<br />
dinamizada de Arnica montana (tratado) e a<br />
tíbia da pata traseira direita recebeu somente o implante<br />
do cone de Guta-percha que foi utilizado como<br />
controle do processo de consolidação da falha óssea.<br />
Posteriormente, o tecido muscular e a pele foram<br />
suturados e sobre os cortes aplicou-se solução a-<br />
quosa PVPI (poli vinil pirrolidona iodada) anti-séptica.<br />
Durante as primeiras 48 horas pós-cirurgia, administrou-se<br />
a dose de 750 mg/Kg de peso corporal de<br />
Dipirona sódica em solução 500 mg/mL do laboratório<br />
Aventis por via intramuscular.<br />
3.3 Obtenção de espécimes do tecido ósseo<br />
Os animais foram eutanasiados, de acordo com os<br />
tempos de permanência, por aprofundamento da<br />
anestesia de solução de Cloridrato de Xylasina (Virbaxyl<br />
® 2%) + Ketamina (Francotar ® ),<br />
Foram removidos espécimes do tecido ósseo das<br />
duas tíbias. Em seguida, foram fixados por imersão<br />
em solução de formol tamponado a 10% por 48 horas<br />
e após esse período promoveu-se a redução do<br />
tamanho dos espécimes para processamento histológico.
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3.4 Preparação e triagem de lâminas histológicas<br />
Os espécimes do tecido ósseo foram descalcificados<br />
em solução saturada de EDTA com agitação contínua<br />
durante 30 dias. Após este período, os espécimes<br />
foram submetidos ao processamento histológico.<br />
Cortes de sete micrometros de espessura foram<br />
corados com hematoxilina-eosina para a obtenção<br />
de lâminas histológicas, posteriormente fotografadas<br />
para análise morfométrica e semiquantitativa.<br />
3.5 Análise Morfométrica do tecido ósseo<br />
Após captura das imagens, foi realizada determinação<br />
quantitativa por meio do software TPS Dig versão<br />
1.38a, da espessura da capsula de tecido ósseo<br />
encontrada ao redor dos implantes introduzidos na<br />
tíbia.<br />
Para análise dos resultados referentes aos implantes,<br />
foram realizadas três avaliações, em regiões<br />
eqüidistantes, ao longo cápsula do tecido ósseo formada<br />
ao redor do implante.<br />
3.6 Análise semiquantitativa do tecido ósseo<br />
As lâminas dos tecidos foram submetidas à análise<br />
microscópica, sendo verificada a presença de infiltrado<br />
inflamatório, fibrócitos, fibroblastos e osteogênese.<br />
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO<br />
Atualmente, existem quatro métodos clássicos para<br />
a avaliação de biocompatibilidade dos materiais: avaliação<br />
de citotoxicidade, implantes subcutâneos, implantes<br />
intraósseos, e avaliação in vivo da reação<br />
tecidual perirradicular em animais.<br />
Em cada tempo de permanência dos materiais implantados<br />
foram feitas avaliações histológicas. A resposta<br />
tecidual foi analisada levando-se em consideração<br />
a presença e intensidade de inflamação e de<br />
componentes do infiltrado celular e de células associadas<br />
ao processo cicatricial e de regeneração óssea.<br />
4.1 Implantes com microdiluição dinamizada de<br />
Arnica montana em falha óssea<br />
Os animais que constituíam o grupo 24 horas (24 h)<br />
apresentaram presença intensa de infiltrado inflamatório<br />
predominantemente polimorfonucleado; ausência<br />
de fibroblastos/ fibrócitos; e hemorragia intensa.<br />
No grupo 1 semana (1 s), foi observada presença<br />
moderada de infiltrado inflamatório, predominantemente<br />
polimorfonuclear, com presença de poucos<br />
plasmócitos; ausência de fibroblastos; e ausência de<br />
hemorragia. Nos animais do grupo 2 semanas (2 s),<br />
verificou-se discreta presença de infiltrado inflamatório;<br />
presença intensa de fibroblastos; e ausência de<br />
hemorragia. Por fim, no grupo 4 semanas (4 s), foi<br />
notada ausência de infiltrado inflamatório; presença<br />
intensa de fibroblastos; presença moderada de fibrócitos;<br />
e ausência de hemorragia (tabela 1).<br />
Nos tecidos que receberam o implante do cone de<br />
guta-percha revestido da microdiluição, foi observado<br />
na região da falha óssea proliferação osteoblástica e<br />
formação de osso primário nos mesmos padrões e<br />
proporções daqueles observados nas falhas ósseas<br />
controle, seja em 24 horas, uma, duas ou quatro<br />
semanas pós-implante. Na região do periósteo, não<br />
se evidenciou nenhum tipo de infiltrado celular que<br />
pudesse indicar processo inflamatório decorrente do<br />
revestimento do implante com o material homeopático.<br />
A osteogênese foi verificada a partir do grupo 1,<br />
sem progressão significativa (figuras 1 e 2).<br />
Tabela 1: Resultados da análise semiquantitativa comparativa<br />
da celularidade óssea após implante de cones<br />
de guta-percha com e sem revestimento de microdiluição<br />
dinamizada de Arnica montana.<br />
Grupo<br />
Infiltrado<br />
Osteogênese<br />
Inflamatório<br />
Tratado Controle Tratado Controle<br />
24 h ++++ ++++ - -<br />
1 s ++ ++ ++ ++<br />
2 s + + ++ ++<br />
4 s - - ++++ +++<br />
Não há diferença significativa entre os grupos.
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Figura 2: Resultados da análise morfométrica comparativa<br />
da espessura da cápsula do tecido ósseo após<br />
implante de cones de guta-percha com e sem revestimento<br />
de microdiluição dinamizada de Arnica montana.<br />
Não há diferença significativa (p
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