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Dental Press

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[ artigo original ] Efeito antimicrobiano de diferentes substâncias químicas associadas ao preparo mecânico e da medicação intracanal em dentes de cães portadores de lesões periapicais induzidas<br />

Processamento laboratorial<br />

Os tubos tipo Eppendorf contendo as amostras foram<br />

imediatamente transferidos ao Laboratório de<br />

Microbiologia Endodôntica para o processamento microbiológico.<br />

No interior da câmara de anaerobiose<br />

(Don Whitley Scientific, Bradford, UK), os tubos foram<br />

agitados utilizando o vortex (MA 162, Marconi, São<br />

Paulo, SP) por 60 segundos para facilitar a dispersão<br />

dos microrganismos. Em seguida, foram realizadas diluições<br />

seriadas a 1/10, 1/100, 1/1.000 e 1/10.000, utilizando<br />

Fastidious Anaerobe Broth (FAB, Lab M, Bury,<br />

UK). Foram inoculados 50µL da amostra armazenada<br />

em VMGA III, sem diluição e das diluições 1/100 e<br />

1/10.000 em placas pré-reduzidas contendo Fastidious<br />

Anaerobe Ágar (FAA, Lab M, Bury, UK) + 5% de sangue<br />

de carneiro desfibrinado + 600μL de Menadiona 1mg/l<br />

(Vitamin K3; 2-Methyl-1,4-naphthoquinone – SIGMA<br />

M5625) + 600μl de Hemina 1mg/l (Hemin Bovine Minimum<br />

80% – SIGMA H5533) as quais foram incubadas<br />

na câmara de anaerobiose a 37ºC, numa atmosfera de<br />

10% H 2<br />

, 10% CO 2<br />

e 80% N 2<br />

até 14 dias, para permitir<br />

a detecção de microrganismos anaeróbios estritos de<br />

crescimento lento.<br />

Foram também inoculados 50μl da amostra original<br />

em uma placa de Brain Heart Infusion (BHI, Oxoid, Basingstoke,<br />

UK) + 5% de sangue de carneiro desfibrinado,<br />

a qual foi incubada aerobicamente em estufa a 37°C por<br />

2 dias, para permitir o crescimento de microrganismos<br />

aeróbios ou facultativos.<br />

Após a incubação, o valor total de UFC foi contado<br />

utilizando-se uma lupa com ampliação de 16x (Zeiss,<br />

Oberkoren, Alemanha).<br />

Caracterização microbiológica<br />

A caracterização preliminar das espécies microbianas<br />

foi baseada nas características das colônias (ou seja,<br />

tamanho, cor, forma, altura, borda, superfície, textura,<br />

consistência, brilho e hemólise) visualizadas sob lupa<br />

estereoscópica (Lambda Let 2, instruments Co., Hong<br />

Kong). As bactérias isoladas foram purificadas através<br />

de subcultura. A coloração de Gram e os requerimentos<br />

gasosos foram estabelecidos após verificação do crescimento<br />

microbiano em aerobiose e anaerobiose.<br />

Baseados nas características de colônias microbianas,<br />

na coloração de Gram e nos requerimentos gasosos,<br />

foi possível determinar o perfil da microbiota dos<br />

canais radiculares em momentos diferentes (s1, s2, s3).<br />

Forma de análise dos resultados<br />

Foram realizadas comparações estatísticas de<br />

todos os grupos (I a V) nos mesmos momentos de<br />

amostragem (s1, s2, s3) e entre s1, s2 e s3 em cada<br />

% Redução bacteriana<br />

100%<br />

99,5%<br />

d<br />

d<br />

c c c c c<br />

d<br />

s2<br />

s3<br />

99%<br />

98,5%<br />

98%<br />

97,5%<br />

97%<br />

96,5%<br />

96%<br />

95,5%<br />

a*<br />

b<br />

95%<br />

Solução Salina Gel Natrosol 2,5% NaOCI CHX-gel 2% CHX-solução 2%<br />

Figura 1. Valores percentuais médios de redução bacteriana (UFC) das amostras do canal radicular obtida após instrumentação (s2) e após a medicação<br />

(s3). *Letras diferentes representam diferenças do ponto de vista estatístico (P

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