Dental Press

Martinho FC, Cintra LTA, Zaia AA, Ferraz CCR, Almeida JFA, Gomes BPFA
novamente anestesiados, os dentes em estudo foram
isolados com lençol de borracha e o campo de trabalho
foi desinfectado com peróxido de hidrogênio (H 2
O 2
) a 30
vol. por 30 segundos, seguido do uso do NaOCl 2,5% por
mais 30 segundos. As soluções desinfetantes foram neutralizadas
com tiossulfato de sódio a 5% a fim de se evitar
interferência dessas com a coleta microbiológica 9 . Em
seguida, foram coletas amostras microbiológicas com cones
de papel absorventes para confirmação da condição
estéril do campo de trabalho (amostras controle).
Após esses procedimentos iniciais, foi realizada a cavidade
de acesso com brocas diamantadas estéreis em
alta rotação e sob irrigação com solução salina estéril.
Antes de adentrar a câmara pulpar, a cavidade de acesso
foi desinfetada pelo mesmo protocolo descrito acima
e novas amostras controle foram coletadas a partir
da superfície da cavidade e semeadas em placas de
ágar sangue. Como critérios de inclusão, as amostras
controle deviam ser negativas. Todos os procedimentos
subsequentes foram realizados assepticamente. A
câmara pulpar foi acessada com brocas e irrigada com
solução salina estéril, que foi aspirada com cânula aspiradora.
Foram realizadas 3 coletas em momentos diferentes
do tratamento. A primeira delas (s1) foi obtida
da seguinte forma: cinco pontas de papel estéreis foram
colocadas no interior do conduto radicular, atingindo
o comprimento de trabalho previamente determinado
pela radiografia pré-operatória, permanecendo em posição
por 1 minuto cada e, em seguida, levadas para um
tubo tipo Eppendorf estéril contendo 1ml de Viability
Medium Göteborg Agar (VMGA III). Em seguida, esses
tubos contendo as amostras iniciais (s1) foram levados
ao laboratório para o seu processamento.
Após a coleta s1, os dentes foram divididos aleatoriamente
de acordo com as substâncias químicas empregadas
durante o preparo de canais, conforme segue:
I) solução salina (SSL) (n = 11); II) natrosol gel (n = 11);
III) NaOCl 2,5% (n = 11); IV) CHX gel 2% (Endogel, Itapetininga,
SP, Brasil) (n = 11) e V) solução de CHX 2% (n
= 11). Inicialmente, a câmara pulpar dos dentes de cada
grupo foi cuidadosamente irrigada com a substância química
auxiliar correspondente, os canais foram irrigados
e explorados com uma lima tipo K #10 (Dentsply Maillefer,
Ballaigues, Suíça). Em seguida, foram preparados
os 2/3 cervicais dos canais com instrumentos rotatórios
GT ® Rotary #20 de conicidade 0,06 a 350rpm (Dentsply
Maillefer, Ballaigues, Suíça). Na sequência, uma lima
tipo K #15 foi levada até o platô apical e, por meio de
um localizador apical (Novapex, Fórum Technologies,
Rishon Le-Zion, Israel), determinou-se o comprimento
real de trabalho (comprimento do dente menos 1mm). O
preparo apical foi realizado utilizando-se limas tipo K sequencialmente
até o instrumento de número 40, seguido
por uma instrumentação “step-back”, que terminou após
o uso de três instrumentos maiores (45, 50 e 55) do que
o último utilizado no preparo apical. O tempo de trabalho
gasto com o preparo químico-mecânico foi em torno
de 20 minutos para cada canal radicular.
Nos grupos em que se empregou uma substância na
forma gel, foi utilizada alternadamente a solução salina,
para remoção da mesma. Na sequência, os canais eram
novamente preenchidos pelo gel antes do emprego de
cada instrumento.
Os volumes foram padronizados em 5ml para cada
substância, previamente a todos os instrumentos empregados.
Nos grupos onde foram usadas substâncias
à base de gel, foi empregado 1ml da mesma para preenchimento
do canal e 4ml de solução salina para
remoção.
Após o término do preparo, tanto o hipoclorito de
sódio como a clorexidina foram inativados. Para o grupo
do hipoclorito de sódio, foi empregada a solução de
tiosulfato de sódio a 5% por um período de 1min para
inativação do mesmo. Para inativação da clorexidina, foram
empregadas as soluções Tween 80 e 0,07% (w/v)
de lecitina de soja. Em seguida, uma nova coleta foi
realizada (s2) da mesma forma que a anterior.
Após a segunda coleta (s2), os canais foram totalmente
secos com cones de papel estéreis e os dentes
receberam uma medicação intracanal composta de hidróxido
de cálcio (Merck, Darmstad, Alemanha) e solução
salina estéril inserida com auxílio de uma espiral
lentulo. Em seguida, tomadas radiográficas foram realizadas
para verificar o completo preenchimento dos canais.
Ao final, as cavidades de acesso foram restauradas
com cimento temporário Cavit (3M Dental Products,
St. Paul, MN, EUA) e resina Filtek Z250 (3M Dental
Products), a fim de evitar a microinfiltração coronária.
Após 14 dias, os dentes foram acessados novamente de
forma asséptica e a pasta de hidróxido de cálcio removida
empregando-se a lima de referência (#40) e irrigação
abundante com solução salina. Após a remoção da
medicação, confirmada pelo microscópio clínico, uma
nova coleta microbiológica foi realizada (s3).
© 2011 Dental Press Endodontics 39
Dental Press Endod. 2011 apr-june;1(1):37-45