peritonite por nocardia sp. em um gato doméstico - medicina ...

ALESSANDRA MARIA DIAS LACERDA
RELATÓRIO DE ESTÁGIO CURRICULAR SUPERVISIONADO NA ÁREA DE
PATOLOGIA ANIMAL: RELATO DE CASO E REVISÃO DE LITERATURA –
PERITONITE POR NOCARDIA SP. EM UM GATO DOMÉSTICO
CURITIBA
2011

UNIVERSIDADE FEDERAL DO PARANÁ
ALESSANDRA MARIA DIAS LACERDA
RELATÓRIO DE ESTÁGIO CURRICULAR SUPERVISIONADO NA ÁREA DE
PATOLOGIA ANIMAL: RELATO DE CASO E REVISÃO DE LITERATURA -
PERITONITE POR NOCARDIA SP. EM UM GATO DOMÉSTICO
Tese apresentada para conclusão do curso
de Medicina Veterinária da Universidade
Federal do Paraná.
Supervisor: Professor, MV. MSc., Dr. Luiz
Felipe Caron
Orientador: Professor, MV. MSc., Dr. Paulo
César Maiorka
CURITIBA
2011

Dedico esse trabalho à minha mãe, Dejanir Dias
Lacerda, cujo exemplo serviu de base para formação
do meu caráter e esforços nunca poupou para
sempre tentar possibilitar todos os meus sonhos.

AGRADECIMENTOS
Agradeço primeiramente à minha mãe por possibilitar todos os acontecimentos
em minha vida, sempre disposta a me dar conselhos e apoio sempre que precisei.
Sua dedicação, amor incondicional e exemplo ajudaram a definir a pessoa que eu
fui, sou e serei.
Agradeço meu namorado Rodrigo, por estar sempre ao meu lado durante toda
essa trajetória e muitas outras, nos altos e baixos, mesmo que por vezes distante
nunca me foi ausente. À sua família, que considero como parte da minha, pelo afeto,
apoio e hospitalidade cedidos.
Agradeço minhas amigas Juliana, Luciane, Heliana, Esther, Verena, Kamila,
Nathália, Vanessa, Raquel, Bruna e ao amigo Bernardo, pois tive o prazer de
conhecer durante a faculdade e compartilhar boas risadas, momentos, sufocos e
correrias. Vocês tornaram esses cinco anos de estudo árduo mais fáceis e
divertidos.
Agradeço meus amigos dos colégios Bom Jesus e Pedro Macedo, cuja
amizade provou perdurar o tempo e distância.
Agradeço todos os animais, especialmente os quais já tive o prazer de
compartilhar companhia, lambidas, carinhos, mordidas e travessuras: Xuxa (in
memorian), Nostradamus (in memorian), Kimberly (in memorian), Toquinho, Cocó,
Dolly, Pingo e Aria. Sem vocês não existiria razão ou porquê dessa jornada.
Agradeço aos funcionários e professores da Universidade Federal do Paraná
por possibilitarem a realização do sonho de concluir o curso de Medicina Veterinária.

Em especial: ao meu professor supervisor Luiz Felipe Caron, pelas lições, aulas e
exemplo dados durante todo o curso, que me ajudaram a definir minhas verdadeiras
aspirações; aos professores Masahiko Ohi e Márcia Oliveira Lopes pelas
oportunidades em participar de seus respectivos projetos de extensão, que me
ajudaram a crescer tanto profissionalmente como pessoalmente; ao professor José
Francisco G. Warth pela oportunidade de monitoria em sua disciplina e conselhos e
ensinamentos dados.
E finalmente, agradeço a todos os funcionários, residentes, alunos e
professores do Serviço de Patologia Animal do Departamento de Patologia da
Faculdade de Medicina Veterinária da Universidade de São Paulo, em especial ao
meu professor orientador Paulo César Maiorka por ter me cedido a oportunidade,
pela hospitalidade, risadas, saídas, paciência e pelo grande aprendizado durante o
meu tempo de estágio.

“Podemos julgar nosso progresso pela coragem de nossas
perguntas, profundidade de nossas respostas e nossa
disposição em aceitar o que é verdade ao invés daquilo que
nos convém.”
― Carl Sagan

SUMÀRIO
LISTAS .................................................................................................................. VIII
RESUMO ............................................................................................................... VIII
1. RELATÓRIO DE ESTÁGIO ............................................................................... 13
1.2. INTRODUÇÃO ............................................................................................ 13
1.3. OBJETIVO GERAL DO ESTÁGIO .............................................................. 14
1.4. OBJETIVO ESPECÍFICO DO ESTÁGIO ..................................................... 14
1.5. DESCRIÇÃO DO ESTÁGIO ........................................................................ 15
1.5.1. O DEPARTAMENTO DE PATOLOGIA (VPT) FMVZ-USP ................... 15
1.5.2. O SERVIÇO DE PATOLOGIA ANIMAL – VPT/FMVZ-USP ................. 17
1.5.3. EQUIPAMENTOS E INSTALAÇÕES ................................................... 17
1.5.4. A ROTINA DO SERVIÇO DE PATOLOGIA ANIMAL ........................... 21
1.5.5. CASUÍSTICA ........................................................................................ 24
1.6. DISCUSSÃO ............................................................................................... 29
1.7. CONSIDERAÇÕES FINAIS ........................................................................ 30
2. PERITONITE POR NOCARDIA SP. EM UM GATO DOMÉSTICO: RELATO DE
CASO E REVISÃO DE LITERATURA ..................................................................... 32
2.1. RESUMO ....................................................................................................... 32
2.2. ABSTRACT ................................................................................................ 33
2.3. INTRODUÇÃO ............................................................................................ 34
2.4. RELATO DE CASO ..................................................................................... 36
2.5. DISCUSSÃO ............................................................................................... 52
2.6. CONCLUSÃO ............................................................................................. 62
2.7. REFERÊNCIAS .......................................................................................... 63
vi

3. GLOSSÁRIO ..................................................................................................... 66
4. REFERÊNCIAS ADICIONAIS ........................................................................... 67
5. ANEXOS E APÊNDICES .................................................................................. 68
5.1. ANEXO 1 – TABELA DA CASUÍSTICA ACOMPANHADA DURANTE O PERÍODO DO
ESTÁGIO CURRICULAR OBRIGATÓRIO SUPERVISIONADO NO SERVIÇO DE PATOLOGIA
ANIMAL DA FMVZ-USP – 31 DE AGOSTO A 30 DE SETEMBRO DE 2011......................... 68
5.2. ANEXO 2 – MODELO DO RELATÓRIO DE NECROPSIA UTILIZADO PELO SERVIÇO DE
PATOLOGIA ANIMAL DA FMVZ-USP. ......................................................................... 70
5.3. ANEXO 3 – HEMOGRAMA REALIZADO EM CLÍNICA PARTICULAR DO PACIENTE
DESCRITO: FELIS SILVESTRIS CATUS, MACHO, 7 MESES. .............................................. 71
5.4. ANEXO 4 – CULTURA BACTERIANA E ANTIBIOGRAMA REALIZADOS EM LABORATÓRIO
EXTERNO (ANTE MORTEM). ....................................................................................... 72
5.5. ANEXO 5 – CULTURA REALIZADA PELO LABORATÓRIO DE DOENÇAS INFECCIOSAS
– FMVZ-USP (POST MORTEM). ................................................................................ 73
5.6. ANEXO 6 – INSTRUÇÕES AOS AUTORES DA REVISTA: “ARCHIVES OF VETERINARY
SCIENCE”. .............................................................................................................. 74
vii

LISTAS
Figura 1 - Entrada do edifício principal da FMVZ-USP. ............................................ 16
Figura 2 – Entrada do Departamento de Patologia – VPT. ....................................... 16
Figura 3– Sala do Serviço de Patologia Animal. ....................................................... 19
Figura 4 – Sala de necropsia .................................................................................... 19
Figura 5 – Fluxo laminar para corte de material histológico ecâmara fria para
armazenamento de cadáveres ................................................................................. 20
Figura 6 – Secretaria de laudos/atendimento do Serviço de Patologia Animal ......... 20
Figura 7 – Laboratório de Histopatologia .................................................................. 21
Figura 8– Gráfico em colunas demonstrando em número absoluto a casuística por
espécie em uma totalidade de 70 casos de necropsia atendidos. ............................ 25
Figura 9 – Gráfico em colunas demonstrando em número absoluto a casuística por
sexo em todos os casos atendidos. .......................................................................... 26
Figura 10 – Gráfico em colunas demonstrando em número absoluto a casuística por
idade em uma totalidade de 70 casos de necropsia atendidos ................................. 26
Figura 11 – Gráfico em colunas demonstrando em número absolto as Causas Mortis
avaliadas em uma totalidade de 70 necropsias. ....................................................... 27
Figura 12 – Gráfico em colunas demonstrando em número absoluto os diagnósticos
morfológicos principais mais prevalentes, em uma totalidade de 70 necropsias. ..... 28
viii

Figura 13 – Funcionários, residentes, estagiários e alunos do Serviço de Patologia
Animal (Outubro de 2011) ........................................................................................ 31
Figura 14 – Abaulamento abdominal marcante de consistência flutuante. ............... 39
Figura 15 – Felis silvestris catus, 7 meses, macho, peso: 2,3 kg ............................. 39
Figura 16 – Linfonodo mediastínico cranial com aumento de volume evidente ........ 39
Figura 17 – Cavidades abdominal e torácica expostas.. .......................................... 40
Figura 18 – Detalhe das vísceras abdominais. ......................................................... 40
Figura 19– Coração................................................................................................. 41
Figura 20 – Conjunto contendo língua, laringe, traquéia, esôfago cervical, pulmões e
coração.. .................................................................................................................. 41
Figura 21 – Deposição de grande quantidade de material fibrilar friável, de
consistência mole e coloração amarelo-esbranquiçada heterogênea aderida ao
fígado. ...................................................................................................................... 41
Figura 22 - Deposição de grande quantidade de material fibrilar friável, de
consistência mole e coloração amarelo-esbranquiçada heterogênea aderida ao
baço. ........................................................................................................................ 41
Figura 23 – Líquido livre sero-fibrinoso turvo de coloração amarelo-esbranquiçada
retirado da cavidade abdominal – aproximadamente 700 mL................................... 42
Figura 24 – Líquido livre seroso translúcido turvo retirado da cavidade torácica –
aproximadamente 15 mL. ......................................................................................... 42
Figura 25 – Detalhe de estômago e intestinos grosso e delgado.. .......................... 42
ix

Figura 26 – Detalhe de fragmento do omento (H&E).. .............................................. 44
Figura 27– Fragmento de fígado .............................................................................. 44
Figura 28 – Detalhe do fragmento de fígado ........................................................... 45
Figura 29– Fragmento de intestino delgado ............................................................. 45
Figura 30 – Detalhe de intestino delgado ................................................................. 46
Figura 31 – Detalhe de intestino delgado ................................................................. 46
Figura 32 – Fragmento de estômago ....................................................................... 46
Figura 33 – Detalhe de fragmento de estômago ....................................................... 47
Figura 34 – Fragmento de vesícula Urinária ............................................................. 47
Figura 35– Fragmento de pulmão ............................................................................ 48
Figura 36 – Fragmento de pulmão ........................................................................... 48
Figura 37– Fragmento de baço ............................................................................... 49
Figura 38 – Detalhe do fragmento de baço .............................................................. 49
Figura 39 – Fragmento de linfonodo ......................................................................... 50
Figura 40 – Detalhe do fragmento de linfonodo ........................................................ 50
Figura 41 – Fragmento de linfonodo ........................................................................ 51
Figura 42 – Detalhe da área de infiltrado misto no linfonodo .................................... 51
x

Tabela 1 – Atividades realizadas durante o estágio com suas respectivas
frequências. ............................................................................................................. 24
xi

RESUMO
O estudo das doenças – a patologia – compreende a base primordial para o
estudo de toda a medicina. Seu estudo reflete a busca do conhecimento em
compreender as ações, reações e alterações em um organismo, as quais refletem
de forma negativa em um organismo. A medicina surgiu devido à necessidade de
combater essas alterações, seja em pessoas ou em animais, de forma a
eventualmente conseguirmos revertê-las. A compreensão de tais mecanismos
elucida tanto as ações de agentes infecciosos como mecanismos próprios de
fisiologia e anatomia, sendo assim, é fundamental o estudo dessa área para
estabelecer uma base gnóstica multidisciplinar em como devemos agir em frente a
uma doença, seja de caráter clínico, epidemiológico ou para estabelecer
conhecimento clínico ou acadêmico. Com o intuito em aprimorar os conhecimentos
teóricos obtidos durante a graduação o estágio curricular supervisionado obrigatório
foi realizado no Serviço de Patologia Animal do Departamento de Patologia
pertencente à Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade de
São Paulo, no período de 01 de agosto a 30 de setembro de 2011, totalizando 357
horas de estágio. A casuística do serviço durante o período de estágio
compreendeu 70 casos de necropsia, com seu respectivo estudo de lâminas
histológicas provenientes de materiais advindos das necropsias realizadas, materiais
de biópsias provenientes da casuística do hospital veterinário da própria instituição e
lâminas citológicas. O caso escolhido para o relato de caso desse trabalho consiste
na descrição de uma peritonite difusa causada por Nocardia sp. Em um gato
doméstico.
xii

1. RELATÓRIO DE ESTÁGIO
1.2. INTRODUÇÃO
O presente relatório tem por objetivo apresentar as atividades realizadas
durante o estágio curricular supervisionado obrigatório realizado no Serviço de
Patologia Animal do departamento de Patologia pertencente à Faculdade de
Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade de São Paulo (FMVZ-USP), no
período de 01 de agosto a 30 de setembro de 2011, totalizando 357 horas de
estágio, sob orientação do Prof. M.V. MSc. Dr. Paulo César Maiorka e supervisão do
Prof. M.V. MSc. Dr. Luiz Felipe Caron.
O estágio consistiu no aperfeiçoamento de técnicas referentes à dissecção de
cadáveres animais – casuística constituída por animais domésticos e silvestres - em
necropsias, assim como sua respectiva avaliação das alterações visíveis, tanto
macro como microscópicas; treinamento em preparação de materiais para lâminas
histológicas e citológicas; estudo e discussão de casos em mesa redonda e
seminários; desenvolvimento de relatórios de necropsia (a serem corrigidos e
discutidos pelo residente e professor responsável) e acompanhamento da rotina de
biópsias advindas do hospital veterinário da FMVZ-USP.
A escolha do local de estágio foi devido ao grande renome da Universidade de
São Paulo e de sua Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia como um dos
grandes centros acadêmicos em veterinária do Brasil, assim como a casuística
diferenciada por estar localizada em São Paulo, cidade mais populosa das Américas
segundo o censo IBGE (2010). Como o Departamento de Patologia (VPT) tem sua
casuística vinculada ao próprio hospital veterinário da instituição (HOVET-USP) a
rotina de um hospital-escola facilita a interação com mestres e doutores da área,
13

alunos e residentes, dando enfoque e recursos à característica multidisciplinar da
patologia veterinária. Em novembro de 1997, o curso de graduação em Medicina
Veterinária da FMVZ-USP foi avaliado pelo Ministério de Educação e Cultura através
dos "Exames Nacionais de Cursos", recebendo nesta avaliação o nível "A" sendo,
portanto, uma das cinco possuidoras deste conceito no país (FMVZ-USP, 2011).
1.3. OBJETIVO GERAL DO ESTÁGIO
O objetivo geral do estágio curricular supervisionado obrigatório foi o
desenvolvimento e aprimoramento dos conhecimentos teóricos e práticos obtidos
durante o período da graduação e estabelecer troca de conhecimentos com outra
instituição acadêmica na área de patologia animal.
1.4. OBJETIVO ESPECÍFICO DO ESTÁGIO
Os objetivos específicos consistiram em aprender novas técnicas, desenvolver,
aprimorar e realizar a troca de conhecimentos pertinentes ao Serviço de Patologia
Animal, tais como: realização e acompanhamento de necropsias e relatórios; coleta
e preparo de materiais para exame histológico e citológico; mesa redonda e
seminário sobre casos incomuns e acompanhamento da rotina de biópsias advindas
do HOVET-USP.
A escolha da área de estágio se deu pela multidisciplinariedade inerente da
patologia, requerendo conhecimentos em amplas áreas da medicina veterinária
como fisiologia, anatomia, clínica médica, agentes infecciosos e parasitários para
então elucidar a causa de óbito de cada animal em questão.
14

1.5. DESCRIÇÃO DO ESTÁGIO
1.5.1. O DEPARTAMENTO DE PATOLOGIA (VPT) FMVZ-USP
O Departamento de Patologia (VPT) pertence à FMVZ-USP, localizado na cidade de
São Paulo, estado de São Paulo, à Av. Prof. Dr. Orlando Marques de Paiva número
87, dentro do campus Cidade Universitária (Figura 1). O departamento está
estruturado acadêmica, científica e fisicamente para o desenvolvimento de
atividades de ensino, pesquisa e extensão (Figura 2). Para tanto, ministra disciplinas
de graduação e pós-graduação e gera publicações científicas. Obtém recursos junto
a agências de fomento, particularmente a FAPESP e o CNPq. Desenvolve
atividades de extensão junto ao Hospital Veterinário, e de formação de recursos
humanos em diferentes níveis, com programas de estágio, iniciação científica,
residência, práticas profissionalizantes e formação de mestres e doutores e de
treinamento em pós-doutores. Possui 12 laboratórios de pesquisa que permitem
receber estagiários e oferecer serviços, como o serviço de patologia animal, o
laboratório de histologia e o laboratório de farmacologia e toxicologia (FMVZ-USP,
2011). Entre os serviços oferecidos pelo VPT, o serviço de patologia animal foi o
escolhido para realização do estágio curricular supervisionado obrigatório.
15

Figura 1 - Entrada do edifício principal da FMVZ-USP, onde está localizado o VPT. Fonte: FMVZ-
USP.
Figura 2 – Entrada do Departamento de Patologia – VPT. Fonte: Serviço de Patologia
Animal/VPT/FMVZ-USP.
16

1.5.2. O SERVIÇO DE PATOLOGIA ANIMAL – VPT/FMVZ-USP
O Serviço de Patologia Animal realiza necropsias de animais domésticos e
selvagens, de pequeno e de grande porte, provenientes do Hospital Veterinário da
FMVZ – USP, bem como de clínicas veterinárias particulares ou de outras
instituições públicas ou privadas. O serviço realiza também diagnóstico anatomo e
histopatológico de biópsias de tecidos de animais, bem como exames citológicos de
material oriundo de punções aspirativas. O Serviço conta com duas vagas para
Médico Veterinário Residente, junto à FUNDAP, e oferece estágios a estudantes de
graduação e prática profissionalizante a médicos veterinários (FMVZ-USP, 2011).
O estágio foi realizado no período de 01 de agosto a 30 de setembro de 2011,
totalizando 357 horas em 43 dias de estágio. O atendimento do Serviço é realizado
em dias úteis, das 09:00 às 18:00, sendo uma hora para almoço, podendo
ultrapassar esse horário caso haja necessidade. Não há período ou expediente de
plantão.
1.5.3. EQUIPAMENTOS E INSTALAÇÕES
O Serviço de Patologia Animal conta com o suporte de todo o VPT e seus
respectivos laboratórios quando o caso requer exames mais específicos, como
exames toxicológicos, além de possuir acesso a serviços do próprio HOVET caso
necessário, tal como o serviço de diagnóstico por imagem.
Conta com uma sala reservada aos residentes e estagiários, esta contendo 4
(quatro) microscópios (sendo um contendo múltiplas cabeças para avaliação e
estudo em conjunto de casos), livros para pesquisa, revistas científicas, 2 (dois)
computadores e câmera fotográfica para obtenção de fotos de cada necropsia
realizada para posterior estudo e/ou relatório (Figura 3). As necropsias e corte de
17

materiais histológicos são realizados na sala de necropsia, esta contendo 1 (um)
vestiário com jalecos, macacões e equipamentos de proteção individual disponíveis
para uso, 4 (quatro) mesas de alumínio para necropsia de pequenos animais
equipadas com instrumentais para realização da necropsia (tais como magarefes,
bisturis, costótomos, serras, faca de órgãos, mangueira e pinças), 1 (uma) bancada
de necropsia para grandes animais, 1 (uma) bancada com pia, 1 (uma) serra
mecânica para corte de tecidos ósseos, 2 (duas) balanças para pesagem de
cadáveres e peças, 1 (uma) câmara fria para armazenamento de cadáveres, 4
(quatro) “freezers” para congelamento de peças e materiais, 1 (um) fluxo laminar
para corte de materiais a serem processados para exames histopatológicos, além de
sala para armazenamento de peças coletadas (Figura 4 e 5). A sala de necropsia é
utilizada tanto pelo Serviço de Patologia Animal, quanto para aulas práticas da
disciplina de patologia dos alunos de graduação, pós-graduação e projetos de
pesquisa pertinentes ao VPT e à FMVZ-USP. Para a entrega de relatórios de
necropsia e biópsia produzidos pelo Serviço, conta com uma secretaria e funcionária
própria (Figura 6). As lâminas histológicas são processadas no Laboratório de
Histologia (Figura 7), também pertencente ao VPT, e conta com funcionários
próprios para realização da técnica histológica (emblocagem, secção em micrótomo
e coloração), para então as lâminas serem encaminhadas ao Serviço de Patologia
para avaliação e descrição de relatório pela M.V. patologista contratada e
residentes.
18

Figura 3– Sala do Serviço de Patologia Animal. Fonte¬: VPT/FMVZ-USP/Alessandra M. D. Lacerda
Figura 4 – Sala de necropsia. Fonte: VPT/FMVZ-USP/Alessandra M. D. Lacerda
19

Figura 5 – A: Fluxo laminar para corte de material histológico. B: câmara fria para armazenamento de
cadáveres. Fonte: Serviço de Patologia Animal/VPT/FMVZ-USP.
Figura 6 – Secretaria de laudos/atendimento do Serviço de Patologia Animal. Funcionária: Claudia
Ferreira de Faria. Fonte: VPT/FMVZ-USP/Alessandra M. D. Lacerda
20

Figura 7 – Laboratório de Histopatologia. Fonte: Serviço de Patologia/VPT/FMVZ-USP.
1.5.4. A ROTINA DO SERVIÇO DE PATOLOGIA ANIMAL
A rotina do Serviço de Patologia Animal varia de acordo com a chegada de
cadáveres para realização de necropsia e pela quantidade de materiais provenientes
de biópsias encaminhados pelo HOVET-USP para realização de exame histológico.
O horário de atendimento da secretaria de laudos/atendimento é realizado em dias
úteis das 09:00 às 17:00 horas, recebendo materiais nesse período. Esse horário é
geralmente ultrapassado por residentes e alunos de acordo com a necessidade e
demanda, usualmente estendendo-se até as 18:00 horas.
Durante o período letivo do curso de medicina veterinária da FMVZ-USP os
alunos da graduação utilizam a sala de necropsia para realização das aulas práticas
21

no período da tarde (das 14:00 às 18:00 horas), exceto nas quartas-feiras. Por esse
motivo, as necropsias encaminhadas ao Serviço são geralmente realizadas no
período da manhã.
Todas as necropsias realizadas são subdivididas em quatro categorias, medida
tomada para facilitar a separação entre pedidos advindos de clientes do HOVET-
USP ou pedidos para interesse didático ou científico. São elas:
Necropsia completa;
Necropsia documentada;
Necropsia para interesse didático;
Necropsia para interesse científico.
Para todos os casos são produzidos relatórios de necropsia, com a adição de
um relatório contendo fotos da necropsia para complementar as informações no
caso de necropsia documentada – geralmente utilizado em casos onde o
requisitante utiliza o relatório de necropsia como prova em alguma situação jurídica,
como por exemplo, crime de maus-tratos. O modelo de relatório é igual para todos
os casos, a diferença dentre as categorias é utilizada apenas para organização da
rotina e estabelecimento de prazos para entrega dos relatórios: 30 (trinta) dias úteis
para necropsias completas e documentadas e 90 dias corridos para necropsias de
interesse científico ou didático. Todas as necropsias são registradas através de um
número estabelecido por ordem de chegada (este é zerado a cada início de ano) e
pelo ano (ex. 200/11) e os relatórios recebem a assinatura da M.V. patologista
contratada do serviço e de um professor da disciplina de patologia designado para
os casos recebidos na semana, verificando assim a fidedignidade das informações
contidas no relatório.
22

O Serviço de Patologia Animal também conta com uma parceria com o Estado
de São Paulo e o Instituto de Criminalística, recebendo assim animais
encaminhados por delegacias para realização de exame de necropsia com o intuito
de verificar queixas de maus-tratos.
Também são realizadas necropsias em animais selvagens, estas recebendo
uma classificação diferenciada e não entram na listagem da rotina comum.
Para cada necropsia realizada são coletados diversos tecidos futuramente
encaminhados para exame histológico, estes também são registrados com um
número próprio estabelecido por ordem de chegada (nunca zerado), seguido da letra
a qual designa o professor responsável pelo caso (ex. 50786-C). O mesmo sistema
de número de registro também se aplica a tecidos provenientes de biópsia
encaminhados do HOVET-USP para exame histológico.
Os exames histológicos advindos de materiais encaminhados de biópsia
excisional ou incisional pelo HOVET-USP recebem prioridade no processamento, e
possuem prazo de entrega do relatório de 13 (treze) dias úteis.
Todos os dados, registros e informações pertinentes são mantidos em livros de
catálogo próprios presentes na secretaria de laudos/atendimento e sala própria do
Serviço, além de cópia digital de todos os relatórios já emitidos.
Durante o período de estágio houve maior prevalência no acompanhamento
direto de necropsias (230 horas), seguida do estudo de lâminas histológicas
advindas de biópsias ou das próprias necropsias realizadas (100 horas). A relação
de distribuição das atividades durante o período de estágio em relação à carga
horária é descrita na Tabela 1.
23

Tabela 1 – Atividades realizadas durante o estágio com suas respectivas frequências.
Atividade Realizada Frequência (horas) Frequência (%)
Necropsias 230 64,4
Acompanhamento de
exames histopatológicos
100 28,0
Registro de novos exames 10 2,8
Acompanhamento de
coleta de material para
biópsias
5 1,4
Seminários / Aulas 12 3,4
Total 357 100
1.5.5. CASUÍSTICA
O estágio curricular supervisionado obrigatório no Serviço de Patologia Animal
foi realizado de 01 de agosto a 30 de setembro de 2011, período no qual foram
realizadas 70 (setenta) necropsias. A maior parte da casuística foi constituída por 26
(vinte e seis) cães (Canis lupus familiaris), seguido de 13 (treze) gatos (Felis
silvestris catus), 8 (oito) ovelhas (Ovis aries), 8 (oito) aves de diferentes espécies, 6
(seis) cavalos (Equus ferus caballus), 4 (quatro) cabras (Capra aegragus hircus), 2
(dois) bois taurinos (Bos primigenius taurus) e 3 (três) animais não domesticados – 1
(um) jabuti-piranga (Chelonoidis carbonaria) , 1 (um) sagui-de-tufo-preto (Callithrix
penicillata) e 1 (uma) capivara (Hydrochoerus hydrochaeris). A figura 8 revela o
gráfico da casuística por espécie durante o período de estágio no Serviço de
Patologia Animal/VPT/FMVZ-USP.
24

Figura 8– Número absoluto da casuística por espécie animal dos 70 casos de necropsia
atendidos durante o período de estágio.
A quantidade atendida de machos foi ligeiramente maior que a quantidade de
fêmeas – 39 (trinta e nove) e 31 (trinta e um), respectivamente. Tal característica
demonstrou-se verdadeira para cães, gatos, aves e para os animais silvestres
atendidos. A prevalência de fêmeas foi maior em ovelhas e cabras, o que demonstra
o caráter de importância das fêmeas na criação de produção. Os números absolutos
em todas as espécies atendidas são mostrados conforme a Figura 9. A casuística
por idade revela maior prevalência de indivíduos adultos a idosos – considerados
por idade acima de 1 (um) ano (Figura 10). Embora existam animais cuja idade não
foi informada pelo requisitante, todos os animais de idade indeterminada foram
identificados como indivíduos de idade adulta.
25

Figura 9 – Número absoluto da casuística por sexo em todos os casos atendidos durante o período
de estágio.
Figura 10 – Número absoluto a casuística por idade em uma totalidade de 70 casos de necropsia
atendidos durante o período de estágio. Todos os indivíduos de idade não informada foram
identificados como adultos.
26

A casuística em relação a achados anatomopatológicos é separada em duas
categorias (causa mortis e Diagnóstico morfológico principal) pelo Serviço de
Patologia Animal a fim de facilitar a correlação entre a causa mortis e o diagnóstico
morfológico principal, ou seja, definir por qual razão ou motivo determinado animal
morreu ou pela qual o proprietário optou pela eutanásia. A determinação da causa
mortis é geralmente feita durante a realização da necropsia de cada animal
submetido, e revela informações a respeito do sistema mais comprometido durante a
avaliação e que provavelmente levou o animal a óbito, conforme mostra a Figura 11.
Figura 11 – Número absoluto das causas mortis avaliadas em uma totalidade de 70 necropsias.
A identificação do diagnóstico morfológico principal muitas vezes não é
percebida apenas com a necropsia, requer assim exames complementares tais
como o exame histológico, citológico, de imagem, toxicológico, bacteriológico e
PCR. Quando um exame complementar é visto como necessário para determinação
27

do diagnóstico morfológico principal, o material pertinente é enviado para o
departamento responsável dentro das competências da FMVZ-USP. Devido ao
prazo estabelecido para entrega dos relatórios (30 dias a 3 meses, dependendo da
categoria da necropsia), não foi possível avaliar nem referendar todos os
diagnósticos realizados durante o período de estágio, sendo definidos neste trabalho
como “a concluir”, pois tais diagnósticos dependiam de exames complementares
ainda não recebidos ou avaliados. Para fins de facilitar a consulta da figura 12,
diagnósticos de baixa prevalência são identificados como “outros”. Estes
diagnósticos poderão ser vistos em sua totalidade no Anexo 1. A Figura 12
demonstra o gráfico simplificado dos diagnósticos morfológicos principais.
Figura 12 – Número absoluto dos diagnósticos morfológicos principais mais prevalentes, em uma
totalidade de 70 necropsias.
28

1.6. DISCUSSÃO
A escolha do Serviço de Patologia Animal da FMVZ-USP para realização do
estágio curricular supervisionado obrigatório se deu pela importância da instituição
no cenário do ramo veterinário, assim como o desejo da busca de conhecimento na
área de patologia. O suporte dos vários departamentos e o contato estabelecido com
a instituição foi de extrema valia para demonstração de diferentes ambientes de
trabalho, além de uma casuística diferenciada pelo volume e pelo renome da
instituição.
O Serviço de Patologia Animal recebe animais advindos do HOVET-USP
(grandes e pequenos) e por ser uma instituição de renome recebe casos externos
através de Centros de Triagem de Animais Silvestres (CETAS), delegacias (animais
cuja morte foi provocada ou facilitada por maus tratos) e outras fontes como
criadouros, biotérios e zoológicos ampliando ainda mais a casuística e a variedade
de espécies admitidas. O conhecimento adquirido de tal experiência é
imprescindível, pois são raros os locais os quais recebem uma grande quantidade e
diversidade de animais.
A casuística do local admite um grande número de cães (26), gatos (13) e
animais de criação (20). O estudo dessa casuística é importante para definir qual a
importância de cada afecção em diferentes grupos animais, especialmente naqueles
que apresentam grande valor sentimental aos proprietários, como é o caso de
proprietários de pequenos animais, os quais geralmente estão interessados em
solicitar relatórios do exame de necropsia.
Ainda foi demonstrada a importância do exame de necropsia e exames
complementares em aferir causas de intoxicação exógena – geralmente causada por
29

de forma intencional por fármacos do grupo dos carbamatos, popularmente
conhecido como chumbinho. Casos de intoxicação não são incomuns de serem
recebidos pelo Serviço: 3 (três) recebidos e confirmados durante o período de 43
dias de estágio, sendo 2 (dois) gatos e 1(um) cão. Em estudo retrospectivo revela a
prevalência desses casos e demonstrou uma maior prevalência maior de
intoxicações intencionais em gatos do que em cães (MARLET e MAIORKA, 2010).
A casuística ainda revela a importância de casos onde há comprometimento
pulmonar e decorrente morte do paciente por consequência (10 casos avaliados) e a
importância de exames complementares para elucidação de casos onde a causa
mortis (27 casos avaliados) e diagnóstico morfológico principal não é aparente (38
casos indeterminados), além da importância da idade em constituir a casuística – a
maior parte dos animais admitidos (84,3%) foi identificada como indivíduos de idade
adulta.
1.7. CONSIDERAÇÕES FINAIS
Os objetivos do estágio foram alcançados, sendo eles: aprimorar os
conhecimentos práticos e teóricos na área da patologia veterinária; estabelecer troca
de conhecimento e contatos com outra instituição de renome; acompanhar uma
casuística diferenciada assim como conhecer novas técnicas e tecnologias
pertinentes à área.
Todos os funcionários, alunos e residentes do VPT/FMVZ-USP estavam
sempre muito solícitos e muito dispostos a ensinar e a trocar conhecimentos, o que
facilitou muito minha estadia como estagiária durante o período de estágio,
estendendo o convite inclusive para aperfeiçoamento após minha colação de grau.
30

Essa troca de experiências me foi muito útil, abrindo um leque de novas
perspectivas em relação à área de patologia na medicina veterinária.
Figura 13 – Funcionários, residentes, estagiários e alunos do Serviço de Patologia Animal (Outubro
de 2011). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
31

2. PERITONITE POR NOCARDIA SP. EM UM GATO DOMÉSTICO: RELATO DE
CASO E REVISÃO DE LITERATURA
(Nocardial peritonitis in a domestic cat: a case report and literature review)
2.1. RESUMO
Um gato doméstico (Felis silvestris catus), sem raça definida, macho de 7 meses de
idade foi encaminhado ao Hospital Veterinário da Faculdade de Medicina Veterinária
e Zootecnia da Universidade de São Paulo (HOVET/FMVZ-USP) com suspeita de
intussuscepção intestinal. Apresentava ao exame físico pirexia e abdômen agudo,
onde uma formação de consistência firme e heterogênea foi identificada na palpação
abdominal. O animal foi então encaminhado à ala cirúrgica para realização de uma
laparotomia exploratória, na qual foi observada uma formação abdominal não
esclarecida, epíplon reativo e friável com aderência de alça intestinal. Nesse
procedimento foi coletado líquido peritoneal e enviado para realização de cultura
bacteriana e antibiograma, sendo posteriormente identificada como bactérias
pertencentes à ordem Actinomycetales. O animal apresentou piora clínica, sendo
submetido à eutanásia e encaminhado ao Serviço de Patologia Animal da FMVZ-
USP para necropsia. Ao encaminhar amostra de líquido abdominal presente à
necropsia para exame bacteriológico, foi possível a identificação do agente
causador, sendo isoladas microcolônias do gênero Nocardia. O presente relato de
caso e revisão tem por objetivo elucidar a patogênese da nocardiose intestinal
apresentada, assim como estabelecer diferenciais entre as afecções intestinais mais
comuns em gatos.
Palavras-chave: gato; inflamação piogranulomatosa; nocardia; nocardiose;
peritonite
32

2.2. ABSTRACT
A 7-month-old , mixed breed, male domestic cat (Felis silvestris catus) was referred
to the Veterinary Hospital of the Faculty of Veterinary Medicine and Zootechny of
University of São Paulo (HOVET/FMVZ-USP) with suspected intestinal
intussusception. The physical exam showed pyrexia and acute abdomen, where a
formation showing firm and heterogeneous consistency had been identified in
abdominal palpation. The animal was then referred to the surgical ward to perform an
exploratory laparotomy, in which a reactive and friable abdominal mass was
observed along with omental adhesion involving a bowel loop. In this procedure
peritoneal fluid was collected and sent to perform bacterial culture and sensitivity
testing, and later identified as containing bacteria belonging to the Actinomycetales
order. The animal showed clinical worsening, being then euthanized and sent to the
Department of Animal Pathology of FMVZ-USP for necropsy. Additional tests allowed
the identification from bacterial culture of the causative agent: bacterial microcolonies
of the genus Nocardia. This case report and review aims to elucidate the
pathogenesis of intestinal nocardiosis such as the one presented, as well as
establish differentials between the most common intestinal disorders in cats.
Key-words: cat; pyogranulomatous inflammation; nocardia; nocardiosis; peritonitis
33

2.3. INTRODUÇÃO
A nocardiose é uma doença bacteriana supurativa a granulomatosa, de
apresentação localizada ou disseminada, de forma aguda ou crônica (HAZIROĞLU,
R. et al, 2006), ocasionada por organismos aeróbicos pertencentes à ordem
Actinomycetales e família Nocardiaceae. As espécies mais comumente encontradas
em afecções dos animais domésticos são: Nocardia asteroides, Nocardia
brasiliensis, Nocardia nova e Nocardia otitidiscaviarum (EDWARDS, D. F., 2006;
QUINN, P. J. et al, 2005). As infecções causadas por actinomicetos, incluindo
Nocardia sp., geralmente evoluem para forma crônica caso não sejam identificadas
rapidamente, tornando-se refratárias à terapia antimicrobiana tradicional (RIBEIRO,
M. G. et al, 2008).
Os actinomicetos compõem um grande e diverso grupo de bactérias Gram
positivas, as quais microscopicamente apresentam células formando filamentos
longos, finos e ramificados (MALIK et al, 2006). Os filamentos formados por
bactérias do gênero Nocardia, em especial Nocardia asteroides, tendem à
fragmentação em bacilos e cocos (QUINN et al, 2005). Quando cultivados produzem
filamentos aéreos e podem chegar a formar esporos (QUINN et al, 2005) e devido a
essas características anteriormente acreditava-se que esses microrganismos
pertencessem ao reino Fungi, mas hoje são devidamente classificados como
bactérias (SIVACOLUNDHU et al, 2001). As colônias crescem facilmente em
laboratório, cultivadas em condições aeróbicas a 37ºC em meios simples como ágar-
sangue e ágar glucose Sabouraud, e variam de aparência macia e úmida ou a
rugosa e de superfície polvilhada devido à proliferação de filamentos aéreos e
podem apresentar diferentes colorações, que variam de leitosa, amarela, alaranjada,
rósea a vermelha devido às diferentes concentrações de pigmentos carotenoides
34

produzidos pelas diferentes espécies de Nocardia. Organismos são geralmente
visualizados após 2 a 10 dias, entretanto 2 a 4 semanas de incubação podem ser
necessárias. (QUINN et al, 2005; EDWARDS, D. F., 2006). O gênero também é
caracterizado por ser parcialmente álcool-ácido resistente devido aos componentes
presentes na parede celular bacteriana – especialmente o ácido micólico (QUINN, P.
J. et al, 2005). A diferenciação dos vários gêneros e espécies da família
Actinomycetales é importante para direcionamento de meios de cultura específicos e
para estabelecer o melhor tratamento para o paciente acometido, já que os
diferentes gêneros geralmente apresentam susceptibilidades diferentes aos
antimicrobianos.
As bactérias do gênero Nocardia são ubíquas, saprofíticas e são encontradas
no solo, gramas, fenos, matéria vegetal em decomposição e água, onde contribuem
com a microflora na decomposição da matéria orgânica e reciclagem de nutrientes.
Não fazem parte da flora normal dos mamíferos, mas podem ser transmitidos
mecanicamente pela pele ou unhas. A infecção geralmente ocorre por inoculação
direta em tecidos moles através de feridas de caráter perfurante, inalação de
aerossóis ou ingestão de materiais contendo esses microrganismos (EDWARDS, D.
F., 2006; QUINN, P. J. et al, 2005; MALIK, R. et al, 2006)
O presente trabalho tem por objetivo relatar o caso incomum de uma peritonite
por Nocardia sp. em um gato doméstico, assim como estabelecer seus principais
diagnósticos diferenciais.
35

2.4. RELATO DE CASO
Um gato doméstico (Felis silvestris catus), macho não castrado, nunca
imunizado de 7 meses de idade foi, no dia 05 de julho de 2011, encaminhado a uma
clínica particular com sinais de enterite (fezes fétidas com presença de muco) e
medicado com droga anti-helmíntica e penicilina. Após 6 dias de evolução, o animal
retornou à clinica sem sinais de enterite mas com pirexia (40,9º C), abdome agudo,
hiporexia e prostração, medicado então com penicilina e dipirona. Sem a melhora do
quadro clínico, o animal foi então encaminhado ao HOVET-USP com suspeita de
intussuscepção intestinal, juntamente com exame ultrassonográfico e hemograma
realizados anteriormente em laboratório particular.
A anamnese e exame físico foram realizados no HOVET-USP dia 22 de julho
de 2011, e revelaram discreta pirexia (39,2º C), mucosas subictéricas, bulhas
cardíacas normorítmicas e normofonéticas (FC: 216 bpm), campos pulmonares
(apresentava-se eupnéico) e linfonodos sem alterações evidentes; negou êmese. À
palpação abdominal notou-se a presença de uma formação de consistência firme e
contorno heterogêneo em região umbilical – achado consistente com a
ultrassonografia apresentada. O animal recebeu o tratamento médico composto de:
ceftriaxona, metronidazol, dipirona e mudança na dieta para alimento
pastoso/palatável e foi então encaminhado à ala cirúrgica para o procedimento de
laparotomia exploratória.
O hemograma realizado apresentava alterações na série branca: leucocitose
(23 mil leucócitos), desvio nuclear de neutrófilos à esquerda de caráter regenerativo
(18 mil e 400 neutrófilos segmentados; 690 neutrófilos bastonetes) e discreta
presença de neutrófilos tóxicos. Ainda revelava discretas hipoproteinemia e icterícia.
36

A laparotomia exploratória foi realizada dia 26 de julho de 2011, a qual revelou
omento de aspecto reativo e friável com aderência de alça intestinal. Durante o
procedimento foi realizada a enterectomia do fragmento intestinal aderido,
juntamente com a coleta de líquido peritoneal enviado para cultura bacteriana em
laboratório externo (LAB&VET). Na sequência, o animal foi medicado com tramadol,
M-butilescopolamina, fluidoterapia (ringer lactato), metronidazol e ceftriaxona,
mantendo o quadro clínico estável.
O animal retornou ao HOVET-USP dia 29 de julho de 2011, pois a proprietária
relatou piora do quadro clínico: referiu anorexia, oligodipsia e abaulamento
abdominal. No mesmo dia o resultado parcial da cultura bacteriana foi
disponibilizado, indicando o crescimento prolífico de unidades formadoras de
colônias pertencentes à ordem Actinomycetales (gênero ainda em identificação).
Com isso, a suspeita clínica foi redirecionada para infecção bacteriana causada por
Corinebacterium, Actinomyces ou Nocardia. Houve mudança no tratamento
prescrito, mantendo o metronidazol e dipirona e alterando a droga antimicrobiana
para amoxacilina com clavulanato e o paciente foi então liberado.
A proprietária retornou com o animal dia 03 de agosto de 2011 referindo piora
do quadro clínico. O animal apresentava anorexia, adipsia, enterite, extrema
prostração. Ao exame físico o animal apresentou-se hipotérmico, TPC de 2
segundos, FC: 140 bpm e FR de 30 mpm, com aumento do abaulamento abdominal
e sensibilidade ao toque. Devido à piora clínica do animal, a proprietária optou pela
eutanásia (realizada pela indução de quadro anestésico e administração de cloreto
de potássio), encaminhando então para realização da necropsia no serviço de
patologia animal FMVZ-USP.
37

À necropsia constatou-se condição corporal magra do animal (peso de 2 quilos
e 300 gramas) com marcante distensão abdominal de consistência flutuante. Não
observou-se presença de ectoparasitas ou traumatismos.
O exame interno revelou presença de aproximadamente 15 mL de líquido livre
seroso translúcido turvo em cavidade torácica. Os pulmões exibiam coloração rósea
heterogênea com áreas avermelhadas, consistência macia e docimasia positiva. O
coração ocupava 3 espaços intercostais e ao corte exibia deposição de material
granular puntiforme de coloração esbranquiçada em endocárdio – achado
compatível eutanásia por cloreto de potássio. O linfonodo mediastínico cranial
apresentava aumento de volume, superfície lisa de coloração esbranquiçada a
acinzentada. Ao corte a relação corticomedular encontrou-se preservada e de
coloração pardacenta.
À abertura da cavidade abdominal constatou-se a presença de
aproximadamente 700 mL de líquido livre sero-fibrinoso turvo de coloração amarelo-
esbranquiçada. Notou-se ainda a presença de grande quantidade de material fibrilar
friável, de consistência mole e coloração amarelo-esbranquiçada heterogênea
aderida ao fígado, baço, estômago, alças intestinas, rins e vesícula urinária. Os
intestinos delgado e grosso e a vesícula urinária demonstraram sobre a serosa
presença de petéquias multifocais.
Foram encaminhados fragmentos de pulmão, fígado, rim e amostra de líquido
peritoneal para diagnóstico molecular (PCR) de peritonite infecciosa felina. Outra
amostra de líquido peritoneal e de material fibrilar depositado em omento para
realização de cultura bacteriana.
38

A causa mortis foi definida como eutanásia com o diagnóstico morfológico
principal a esclarecer – suspeita direcionada para peritonite infecciosa felina,
actinomicose ou nocardiose.
Figura 15 – Felis silvestris catus, 7 meses,
macho, peso: 2,3 kg. Curativo em região do
abdome presente devido à realização de
laparotomia exploratória.
Figura 14 – Abaulamento abdominal
marcante de consistência flutuante. Cicatriz
cirúrgica (laparotomia exploratória) com 6
pontos de sutura evidente.
Figura – Linfonodo mediastínico cranial com aumento de volume evidente
39

Figura 16 – Cavidades abdominal e torácica expostas. Nota-se a deposição de grande quantidade
de material fibrilar friável, de consistência mole e coloração amarelo-esbranquiçada heterogênea
aderida às vísceras abdominais.
Figura 17 – Detalhe das vísceras abdominais. Os intestinos delgado e grosso e a vesícula urinária
demonstraram sobre a serosa presença de petéquias multifocais.
40

Figura 19 – Conjunto contendo língua, laringe,
traquéia, esôfago cervical, pulmões e coração.
Os pulmões exibiam coloração rósea
heterogênea com áreas avermelhadas,
consistência macia e docimasia positiva.
Figura 21 - Deposição de grande quantidade
de material fibrilar friável, de consistência mole
e coloração amarelo-esbranquiçada
heterogênea aderida ao baço.
41
Figura 18– O coração ocupava na cavidade 3
espaços intercostais. A seta verde indica
deposição de material granular puntiforme de
coloração esbranquiçada em endocárdio
(achado compatível com alterações
provocadas pela eutanásia).
Figura 20 – Deposição de grande quantidade de
material fibrilar friável, de consistência mole e
coloração amarelo-esbranquiçada heterogênea
aderida ao fígado.

Figura 22 – Líquido livre sero-fibrinoso turvo
de coloração amarelo-esbranquiçada retirado
da cavidade abdominal – aproximadamente
700 mL.
Figura 23 – Líquido livre seroso translúcido
turvo retirado da cavidade torácica –
aproximadamente 15 mL.
Figura 24 – Detalhe de estômago e intestinos grosso e delgado. Apresentam-se moderadamente
dilatados por gás e serosa de coloração róseo-acinzentada com distribuição multifocal de petéquias e
deposição de grande quantidade de material fibrilar friável, de consisistência mole e coloração
amarelo-esbranquiçada heterogênea – grande quantidade localizada em região de omento maior
(seta vermelha).
42

Os exames complementares retornaram negativos para peritonite infecciosa
felina e o exame bacteriológico indicou o crescimento e isolamento de Nocardia sp.
e Streptococcus dysgalactiae.
O exame histopatológico foi realizado em diversos fragmentos de vários
órgãos, e o achado mais significante foi a presença de uma peritonite subaguda,
severa e difusa com predominância de macrófagos e neutrófilos evidente em
fragmentos de intestino delgado, fígado, baço, adrenal, linfonodos mesentéricos,
estômago e vesícula urinária, com discreto padrão infiltrativo. O baço apresentou
rarefação de folículos linfóides, associado a uma esplenite aguda discreta e difusa,
caracterizada por plasmocitose e histiocitose em polpa vermelha. Presença de raros
megacariócitos. Notou-se no fígado discreta congestão e degeneração
microgoticular de padrão centrolobular dos hepatócitos. Observa-se presença difusa
de macrófagos nos sinusóides hepáticos, caracterizando um quadro de discreta
hepatite difusa. Ainda observou-se uma marcante linfadenite subaguda e difusa em
fragmento coletado de linfonodo mesentérico, com presença de macrófagos
epitelióides e células gigantes. O cérebro e cerebelo revelam edema de distribuição
aguda, sendo que este último revela também moderada cromatólise neuronal. Os
pulmões apresentam discreta congestão de vasos, áreas de enfisema alveolar
localizadas principalmente em bordos e áreas multifocais difusas de atelectasia
conjuntamente a uma pneumonia intersticial aguda discreta e difusa. A medula
óssea também foi avaliada onde se constatou focos hemorrágicos multifocais e
rarefação da série eritróide. Não foi constatada a visualização de bactérias nem de
macroagregados.
43

Figura 25 – Detalhe de fragmento do omento (H&E). Composto por infiltrado misto, com prevalência
de neutrófilos e macrófagos, não encapsulado. Observa-se presença de material amorfo eosinofílico
e rede de fibrina. Fonte: Alessandra M. D. Lacerda.
Figura 26– O fragmento de fígado revela discreta congestão e degeneração microgoticular de padrão
centrolobular nos hepatócitos. Observa-se presença difusa de macrófagos nos sinusóides hepáticos,
caracterizando um quadro de discreta hepatite difusa. A cápsula de Glisson encontra-se espessada
por infiltrado misto, com predominância de neutrófilos e macrófagos com discreta infiltração do
parênquima próximo à cápsula, caracterizando a peritonite subaguda severa e difusa encontrada
(H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
44

Figura 27 – Detalhe do mesmo fragmento de fígado acima. A cápsula de Glisson encontra-se
espessada por infiltrado misto, com predominância de neutrófilos e macrófagos com discreta
infiltração do parênquima próximo à cápsula. Observa-se presença de material amorfo eosinofílico e
redes de fibrina - Peritonite subaguda severa e difusa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
Figura 28– Fragmento de intestino delgado (jejuno) onde nota-se a serosa espessada por presença
de infiltrado misto, com predominância de neutrófilos e macrófagos, com discreto padrão infiltrativo na
camada muscular externa. Observa-se presença de material amorfo eosinofílico e redes de fibrina -
Peritonite subaguda severa e difusa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
45

Figura 30 – Detalhe de intestino delgado onde
nota-se o padrão infiltrativo discreto na
camada muscular externa (H&E). Fonte:
Alessandra M. D. Lacerda
Figura 31 – Fragmento de estômago onde se observa a serosa espessada por presença de infiltrado
misto, com predominância de neutrófilos e macrófagos, com discreto padrão infiltrativo na camada
muscular externa – Peritonite subaguda severa e difusa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
46
Figura 29 – Detalhe de intestino delgado onde
nota-se o infiltrado misto com predominância de
neutrófilos e macrófagos (H&E). Fonte:
Alessandra M. D. Lacerda

Figura 32 – Detalhe de fragmento de estômago: entre a camada muscular externa e interna,
mutifocalmente, e entre a lâmina basal e mucosa encontram-se áreas de infiltrado linfoplasmocítico
(H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
Figura 33 – Fragmento de vesícula Urinária apresentando serosa espessada por presença de
infiltrado misto, com predominância de neutrófilos e macrófagos, com discreto padrão infiltrativo na
camada muscular externa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
47

Figura 34– Fragmento de pulmão com discreta congestão de vasos. Apresenta pneumonia intersticial
aguda discreta e difusa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
Figura 35 – Fragmento de pulmão. Apresenta pneumonia intersticial aguda discreta e difusa (H&E).
Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
48

Figura 36– Fragmento de baço onde há rarefação de folículos linfóides. A cápsula apresenta-se
espessada por infiltrado misto, com prevalência de neutrófilos e macrófagos, com discreto padrão
infiltrativo do parênquima esplênico (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
Figura 37 – Detalhe do fragmento de baço acima evidenciando uma esplenite aguda discreta e
difusa, caracterizada por plasmocitose e histiocitose em polpa vermelha. Presença de raros
megacariócitos (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
49

Figura 38 – Fragmento de linfonodo mesentérico mostrando-se reativo com severa histiocitose,
caracterizando uma linfadenite subaguda marcante e difusa (H&E). Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
Figura 39 – Detalhe do fragmento de linfonodo acima. O fragmento apresenta-se reativo, com severa
histiocitose e moderada hiperplasia medular, caracterizando uma linfadenite subaguda marcante e
difusa. Presença de macrófagos epitelióides (seta verde), células gigantes (seta azul) e plasmócitos
ativados (H&E).Fonte: Alessandra M. D. Lacerda
50

Figura 40 – Fragmento de linfonodo mesentérico indicando área com presença de infiltrado misto,
com predominância de neutrófilos e macrófagos, inclusive células gigantes (seta verde) (H&E). Fonte:
Alessandra M. D. Lacerda
Figura 41 – Detalhe da área de infiltrado misto no linfonodo acima – presença de células gigantes.
Observa-se ainda presença de material amorfo eosinofílico e rede de fibrina (H&E). Fonte:
Alessandra M. D. Lacerda
51

2.5. DISCUSSÃO
Bactérias do gênero Nocardia são actinomicetos Gram positivos, aeróbios,
saprofíticos e filamentosos que tendem à fragmentação cocobacilar (QUINN et al,
2005; LOVE, 1988; CHEDID et al., 2007; TILGNER e ANSTEY, 1996; EDWARDS,
2006). São bactérias ubíquas comumente encontradas no solo, água, plantas e
materiais orgânicos em geral (EDWARDS, 2006; RIBEIRO et al, 2008).
Membros da família Nocardiceae exibem crescimento em cultura relativamente
lento e devido à grande importância da ordem Actinomycetales nas infecções em
mamíferos assim que se tornarem aparentes devem ser diferenciadas de outras
bactérias Gram positivas que se assemelham, incluindo outros actinomicetos como
Streptomyces spp., Actinomyces spp., Actinomadura spp., Rhodococcus spp.,
Tsukamurella spp., Mycobacterium spp. e Corynebacterium spp. (BEAMAN e
BEAMAN, 1994; MALIK et al, 2006). Atualmente são descritas mais de 30 espécies
de Nocardia, dentre as quais N. asteroides a espécie mais comumente isolada como
agente infeccioso em humanos e animais domésticos (EDWARDS, 2006;
HAZIROGLU et al, 2006).
A nocardiose é uma doença de apresentação aguda, subaguda ou crônica de
natureza granulomatosa ou supurativa, localizada ou disseminada, com capacidade
de formar granulomas ou piogranulomas, fibrose tecidual e seios drenantes
(EDWARDS, 2006; CASTELLI et al, 2011; HAZIROGLU et al., 2006;
SIVACOLUNDHU et al., 2001). Os actinomicetos em geral, incluindo Nocardia sp.,
têm por característica geral ocasionar infecções crônicas e a se tornarem refratários
ou pouco responsivos à terapia antimicrobiana convencional (RIBEIRO et al, 2008).
Apesar de sua distribuição ampla e mundial, a nocardiose é uma doença
incomum, mas já descrita em cães, gatos, cavalos, bovinos e humanos (GOLYNSKY
52

et al, 2005; TILGNER e ANSTEY, 1996). Ainda é raramente descrita em aves (PARK
e JAENSCH, 2009). Atualmente, entre os animais de companhia, é mais prevalente
em gatos do que em cães (MALIK et al, 2006).
As infecções são consideradas oportunistas, ou seja, requerem um hospedeiro
comprometido para o início da doença. Rotas propostas de infecção incluem a
inalação dos organismos, inoculação por feridas perfurantes ou ingestão (QUINN et
al, 2005; EDWARDS, 2006; TILGNER e ANSTEY, 1996). De acordo com Armstrong
(1980) a nocardiose não é considerada uma doença contagiosa ao homem ou outros
animais.
Aparentemente quando há fatores predisponentes, tanto em animais
domésticos quanto em humanos, ocorre aumento à susceptibilidade a nocardiose.
Em um estudo realizado, aproximadamente 40% das pessoas com nocardiose
possuíam alguma alteração imunossupressora primária, tais como neoplasias,
doenças autoimunes, alterações pulmonares, pacientes de transplante ou doenças
infecciosas – destacando-se a síndrome da imunodeficiência adquirida (BEAMAN e
BEAMAN, 1994; MCNEIL e BROWN, 1994; CHEDID et al, 2007). Já em cães e
gatos a nocardiose é geralmente descrita em animais coinfectados por doenças
imunossupressoras: cinomose em cães e síndrome da imunodeficiência felina e
leucemia felina em gatos (RIBEIRO et al, 2007), embora em muitos casos não seja
relatado o diagnóstico definitivo da doença imunossupressora primária.
A patogenicidade das espécies de Nocardia é influenciada pela cepa, pela fase
de crescimento do organismo e pela susceptibilidade do hospedeiro. A resposta
normal do hospedeiro à infecção é caracterizada por uma mobilização inicial de
neutrófilos que pode vir a inibir o crescimento, mas não mata o organismo.
Subsequentemente ocorre a ativação da imunidade mediada por células
53

(macrófagos e células T), normalmente bactericida. A resistência diminuída do
hospedeiro é o fator primário para nocardiose, mas nem todos os animais infectados
possuem condições predisponentes identificáveis (EDWARDS, 2006). As cepas
virulentas são patógenos intracelulares facultativos capazes de inibir a fusão
fagossomo-lisossomo e resistir a outros mecanismos enzimáticos de neutrófilos e
macrófagos (como choque ácido ou oxidativo) devido à presença de ácidos
micólicos em sua parede celular bacteriana, resultando em um processo de
inflamação severo no tecido afetado. Assim, a patogenicidade das espécies de
Nocardia é influenciada pela localização intracelular bacteriana, indução da resposta
inflamatória piogranulomatosa, susceptibilidade do hospedeiro, via de transmissão e
coinfecção com doenças imunossupressoras, principalmente aquelas que
comprometem a imunidade celular (BEAMAN e BEAMAN, 1994; CORTI e
VILLAFANE-FIOTI, 2003; EDWARDS, 2006; RIBEIRO et al, 2008).
A progressão do início da doença até a fase crônica se desenvolve a partir da
falha da resposta inflamatória aguda, resultando em um processo crônico. No caso
da nocardiose tal processo ocorre pela persistência do estímulo durante um longo
período de tempo e substituição de elementos celulares da resposta inflamatória de
neutrófilos para linfócitos, macrófagos e por vezes células gigantes multinucleadas.
Como os membros do gênero Nocardia não produzem toxinas causadoras de dano
tecidual severo, é sua presença contínua que incita a resposta imune inflamatória
crônica devido às características de sua parede lipídica (ACKERMANN, 2006). As
características histológicas nos tecidos avaliados no caso desse gato remetem às
características encontradas pela literatura, definindo assim uma reação do tipo
piogranulomatosa.
54

Segundo Beaman e Beaman (1994) a nocardiose pode apresentar-se em 6
formas: (i) nocardiose pulmonar (torácica); (ii) nocardiose sistêmica; (iii) nocardiose
em sistema nervoso central; (iv) nocardiose extrapulmonar; (v) nocardiose cutânea,
subcutânea ou linfocutânea e (vi) actinomicetoma. Em bovinos há relatos de casos
de nocardiose ocasionando mastites ambientais que geram importantes perdas
econômicas na atividade leiteira (COSTA et al, 1987). As características clínicas da
nocardiose são inespecíficas e podem variar de acordo com o maior órgão afetado
(TILGNER e ANSTEY, 1996). Dentre os animais domésticos a forma cutânea e
subcutânea é a mais comum, e de extrema significância em gatos machos devido ao
comportamento territorialista e brigas com outros gatos (TILGNER e ANSTEY, 1996;
EDWARDS, 2006).
No caso da forma cutânea de nocardiose pioderma, dermatite granulomatosa
ou piogranulomatosa, abcesso cutâneo-subcutâneo, paniculite supurativa ou
micetoma actinomicótico são os sinais mais comuns. Lesões cutâneas recentes
podem se apresentar como abcessos circunscritos. As lesões cutâneas-subcutâneas
são caracterizadas por aumentos de volume que variam de firme a flutuante que
podem vir a formar úlceras ou desenvolver fístulas drenando exsudato vermelho-
amarronzado. Infecções cutâneas, subcutâneas e em linfonodos regionais
localizadas resultam de uma inoculação por ferida perfurante - mordidas, arranhões
ou corpo estranho –, e lesões podem ser geralmente encontradas em regiões
susceptíveis a mordidas e arranhões como membros e plano nasal (EDWARDS,
2006; GINN et al, 2007; HARADA et al, 2009; MALIK et al, 2006; SCOTT et al,
2001).
Similar às micoses sistêmicas, a nocardiose pulmonar provavelmente resulta
de uma aspiração de microrganismos. Lesões nocardiais se desenvolvem nos
55

espaços alveolares e frequentemente alcançam vasos sanguíneos, resultando na
disseminação sistêmica da doença. Lesões secundárias causadas pela
disseminação podem surgir em qualquer tecido. O envolvimento de estruturas
adjacentes no tórax (como pleura, mediastino, pericárdio) não é incomum. Outros
locais solitários extrapulmonares de infecção são possivelmente causados por uma
bacteremia transiente e disseminação por via linfática ou hematógena. A fonte
primária pode ainda ser uma infecção pulmonar não aparente (EDWARDS, 2006;
TILGNER e ANSTEY, 1996; THOMOVSKY e KERL, 2008). A nocardiose pulmonar
ou torácica apresenta sinais subagudos caracterizados por dispneia inspiratória,
hemoptise, hipotermia, colapso e morte, no entanto sinais clínicos crônicos são mais
característicos. Os sinais são geralmente confundidos com cinomose em cães,
incluindo secreção oculonasal mucopurulenta, anorexia, perda de peso (emaciação
comum), tosse, dispneia, diarreia e hipertermia. Sons pulmonares poderão estar
aumentados (pela broncopneumonia) ou diminuídos (por lesão extensa ou empiema)
e comumente há linfadenopatia hilar (EDWARDS, 2006; QUINN et al, 2005). Em
humanos as manifestações clinicas da nocardiose pulmonar também podem incluir
traqueobronquite, sinusite, mediastinite e raramente endocardite (CASTELLI et al,
2011).
Nocardiose extrapulmonar solitária é infrequente e geralmente ocorre como
aumentos de volume firmes que podem ou não se romper, abcesso cutâneo-
subcutâneo ou micetoma. Micetoma é um tumor granulomatoso subcutâneo
contendo agregados (grânulos) de actinomicetos (micetoma actinomicótico) ou
fungos (micetoma eumicótico) (EDWARDS, 2006; THOMOVSKY e KERL, 2008).
A forma sistêmica (ou disseminada) é definida por lesões em 2 ou mais locais
(impossibilitados de contágio) dentro do corpo, e é tipicamente associada à doença
56

pulmonar e raramente se desenvolve sem a doença pulmonar óbvia. Os locais mais
frequentes envolvendo órgãos extratorácicos são pele e tecido subcutâneo, rins,
fígado, linfonodos, o sistema nervoso central, ossos e articulações (EDWARDS,
2006). Em gatos, a nocardiose sistêmica tem sido geralmente descrita como uma
infecção torácica que se dissemina com comum envolvimento do sistema nervoso
central, podendo ocasionar meningoencefalite granulomatosa ou piogranulomatosa.
A nocardiose sistêmica geralmente não é identificada rapidamente, devido a sua
apresentação clínica inespecífica, um baixo índice de suspeita e conhecimento da
doença e a falta de um teste imunológico diagnóstico. (MAXIE e YOUSSEF, 2007;
TILGNER e ANSTEY, 1996).
O gato deste relato de caso apresentou apenas sinais inespecíficos como
apatia, anorexia, oligodipsia e pirexia – sinais compatíveis com os encontrados na
literatura (KAWAMURA et al, 2005). O animal não apresentava qualquer lesão
cutânea compatível e a proprietária em momento algum revelou histórico de brigas
ou lesões, portanto a conclusão é de que a via cutânea provavelmente não foi a
causa disseminadora da peritonite. O hemograma revelou apenas a ocorrência de
uma severa resposta inflamatória pela mobilização de leucócitos (leucocitose) e pelo
desvio nuclear de neutrófilos à esquerda. Neste caso é possível inferir levando em
conta dados dessa revisão que o animal tenha se infectado e desenvolvido o quadro
entérico por ingestão como um caso raro de nocardiose extrapulmonar ou por
disseminação através de uma infecção pulmonar não aparente - hipótese
corroborada pela pneumonia intersticial aguda discreta e difusa evidente no exame
histológico. A efusão peritoneal encontrada – 700 mL de líq uido serofibrinoso turvo
castanho amarelado – é compatível com efusões exsudativas encontradas em
outros casos de nocardiose descritos por Armstrong (1980), Tilgner e Anstey (1996)
57

e Sivacolundhu et al (2001). A ausência de macroagregados (grânulos de enxofre)
no líquido peritoneal e outras lesões não exclui uma infecção por Actinomyces ou
Nocardia (KIRPENSTEIJN e FINGLAND, 1992).
Achados clínicos esperados da nocardiose são uma anemia não regenerativa,
leucocitose, desvio nuclear de neutrófilos à esquerda, monocitose e
hiperproteinemia. As efusões pleurais, bronquiais, aspirados de abcessos são
supurativos a piogranulomatosos. Macroagregados (grânulos de enxofre) são
infrequentes, mas quando presentes devem ser encaminhados para a cultura
bacteriana. Ao contrário da actinomicose, populações bacterianas mistas em tecidos
profundos são raras e provavelmente encontradas por contaminação da amostra
(EDWARDS, 2006; TILGNER e ANSTEY, 1996).
As lesões macroscópicas em órgãos internos são tipicamente numerosas e
nodulares, variando de pequenas (1 mm) a grandes (1cm), discretas a coalescentes,
elevadas de coloração branca a acinzentada, onde em casos de peritonite encontra-
se um material supurativo e granular sobre o omento (EDWARDS, 2006; TILGNER e
ANSTEY, 1996). Tecido pulmonar afetado pode parecer congesto. Linfonodos estão
geralmente muito aumentados, firmes a flutuantes com o interior purulento a
caseoso (EDWARDS, 2006). A reação histológica clássica de uma infecção cutânea
por Nocardia é caracterizada por uma região de necrose central e supuração
rodeada por macrófagos, linfócitos e plasmócitos. Grupamentos de macrófagos
epitelióides e células gigantes multinucleadas podem estar presentes (EDWARDS,
2006). Em casos de peritonite ou pleurite por nocardiose já descritas, as alterações
histológicas compreendem a presença de neutrófilos, macrófagos e linfócitos
caracterizando uma reação piogranulomatosa sobre membranas serosas com
envolvimento de parênquima das estruturas afetadas (HAZIROGLU et al, 2006),
58

achado compatível com a apresentação da peritonite subaguda severa e difusa
encontrada nesse caso. Filamentos de Nocardia não foram observados no exame
histológico pois não são corados pela coloração utilizada (hematoxilina e eosina)
(EDWARDS, 2006). Também não foram observadas proteínas de Splendore-Hoeppli
(agregados proteináceos eosinfílicos compostos por imunoglobulinas posicionadas
ao redor do agregado bacteriano) nas lâminas histológicas (ACKERMANN, 2006).
As drogas de eleição para nocardiose são as sulfonamidas, mas o isolamento e
a realização do antibiograma são importantes, pois diferentes espécies e cepas
podem demonstrar susceptibilidades diferentes (EDWARDS, 2006; HARTMANN e
LEVY, 2011). Combinações de Trimetropim-sulfonamidas, cefalosporinas,
amicacinas, ampicilina, imipenen, minociclina e linezolide são as drogas
recomendadas para o tratamento da nocardiose e envolvem terapia prolongada, de
suporte e procedimentos cirúrgicos (RIBEIRO et al, 2008; THOMOVSKY e KERL,
2008). As sulfonamidas atingem a maior parte das espécies (exceção N.
otitidiscaviarum) e o tratamento deve ser prolongado: em humanos o prazo é de 1 a
3 meses para infecções cutâneas, 6 meses para infecções pulmonares não
complicadas e 12 meses para infecções sistêmicas (EDWARDS, 2006; HARTMANN
e LEVY, 2011). Duração insuficiente da terapia leva ao reaparecimento da doença
(MALIK et al, 2006). No caso de uma peritonite por Nocardia em um gato descrito
por Tilgner e Anstey (1996) a antibioticoterapia foi realizada por 3 meses de forma
eficaz (uso de sulfadiazina e trimetroprim proporção 5:1), e deve-se manter o animal
em observação para monitorar possíveis efeitos colaterais. No caso descrito por este
artigo, a antibioticoterapia se mostrou ineficaz, pois a cepa de Nocardia presente
apresentou resultados de resistência tanto para cefalosporinas utilizadas quanto
para amoxacilina e clavulanato (demonstradas em antibiograma disponível após a
59

morte do animal). Tal resultado reforça a importância dos testes de sensibilidades,
pois Golynsky et al (2005) demonstrou que o tratamento com cefalosporinas
(utilizado cefalexina) pode ser possível – um cão não apresentou recidivas após 8
semanas de tratamento de uma nocardiose cutânea -, enquanto HARADA et al
(2008) demonstrou que o tratamento com cefalexina durante 30 dias em um gato
também com nocardiose cutânea foi ineficaz. Em caso de nocardiose sistêmica,
muitos autores recomendam tratamento cirúrgico (drenagem de efusões)
concomitantemente ao tratamento antibiótico (KIRPENSTEIJN e FINGLAND, 1992;
MARINO e JAGGY, 1993; SCOTT et al, 2001; GOLYNSKY et al, 2005).
Os diagnósticos diferenciais para peritonite por Nocardia com efusão peritoneal
exsudativa incluem: peritonite infecciosa felina (forma efusiva); contaminação
bacteriana por ruptura entérica, infecções fúngicas, infecções por outros
actinomicetos, feridas perfurantes ou órgãos abdominais infectados. As efusões não
sépticas podem também vir a ser contaminadas. Causas não infecciosas incluem
bile, urina, colangite linfocítica e neoplasia abdominal (TILGNER e ANSTEY, 1996;
THOMOVSKY e KERL, 2008). Como a nocardiose e especialmente a actinomicose
geralmente apresentam sinais clínicos e microscópicos semelhantes, o diagnóstico
deve ser confirmado por isolamento de Nocardia. Isso é de extrema importância,
pois as duas condições requerem diferentes tratamentos já que a droga de eleição
para actinomicose é a penicilina G (PEABODY e SEABURY, 1960; SMEGO e
FOGLIA, 1998). O diagnóstico estabelecido é a cultura apropriada de Nocardia no
sítio de infecção. Ainda não há técnicas molecular ou sorológica disponíveis para
uso de rotina. Como a Nocardia cresce mais lentamente que outras bactérias, o
laboratório deve ser alertado quando há suspeita clinica de nocardiose (CASTELLI
et al, 2011).
60

Pela importância epidemiológica da peritonite infecciosa felina e sua frequente
ocorrência, deve-se prestar especial atenção para seu diagnóstico diferencial, já que
gatos avaliados geralmente possuem uma efusão abdominal densa, fibrinosa e de
coloração amarelada, similar ao caso apresentado, assim como uma severa reação
piogranulomatosa. Ainda é considerada a prova de ouro para o diferencial da
peritonite infecciosa o exame histopatológico, que apresenta lesões de perivasculite
plasmocitária, acúmulo de células plasmocitárias com um centro necropurulento, ou
ambas (HARTMANN et al, 2003; PALTRINIERI et al, 1999). No caso relatado, o gato
não revelou a presença em suas lâminas histológicas de lesões compatíveis com a
peritonite infecciosa felina, além de apresentar resultado negativo na identificação do
coronavirus felino em ensaio de PCR.
Não há na literatura método de controle recomendado para evitar a nocardiose
em animais de companhia. Entretanto, condições de higiene ambiental, diagnostico
precoce, terapia inicial apropriada e controle dos fatores predisponentes (doenças
imunossupressoras) podem vir a diminuir a taxa de mortalidade da doença
(RIBEIRO et al, 2008). O gato neste caso não foi avaliado quanto ao seu estado
sanitário para doenças imunossupressoras de importância como leucemia felina e
imunodeficiência felina, embora tenha sido diagnosticado como livre de peritonite
infecciosa felina como diferencial. Como via de infecção presume-se que a o animal
relatado tenha se infectado via ingestão ou por disseminação de uma infecção
pulmonar não aparente.
O prognóstico para infecções por Nocardia deve ser considerado reservado,
entretanto com o diagnóstico precoce e o uso de combinações de drogas sinérgicas
ou aditivas o prognóstico tende a melhorar. Casos que são identificados
precocemente e com a antibioticoterapia correta geralmente tem um desfecho
61

favorável. Devido a alta taxa de recidivas, todos os casos deverão ser monitorados
(MALIK et al, 2006).
2.6. CONCLUSÃO
A rápida progressão do estado clínico do animal juntamente com o diagnóstico
tardio e antibioticoterapia ineficaz levou a proprietária a optar pela eutanásia,
entretanto o estudo desse caso é de grande significância didática para elucidar a
nocardiose e estabelecer parâmetros para reconhecer algumas de suas
apresentações clínicas típicas e atípicas, como é o caso da peritonite. É importante
conhecer os diagnósticos diferenciais para então melhorar a chance de recuperação
do paciente, já que um dos grandes fatores que definem a nocardiose sistêmica
como uma doença de prognóstico reservado a ruim é a demora no diagnóstico e
terapia antimicrobiana inadequada.
Esta revisão de literatura seguiu as normas para submissão de revisão
constantes nas instruções aos autores da revista Archives of Veterinary Science.
62

2.7. REFERÊNCIAS
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M. D.; ZACHARY, J. F. Pathologic Basis of Veterinary Disease. 4 ed. St Louis:
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65

3. GLOSSÁRIO
M.V. – Médico Veterinário
FMVZ-USP – Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade de
São Paulo
HOVET-USP – Hospital Veterinário da Universidade de São Paulo
MSc. – “Master of Science”, título de mestre.
Dr. – Doutor, título de doutor.
VPT – Departamento de Patologia, pertence à FMVZ-USP.
FAPESP - Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo
FUNDAP - Fundação do Desenvolvimento Administrativo
CNPq - Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico
PCR – Reação em cadeia da polimerase
CETAS - Centros de Triagem de Animais Silvestres
C - Celsius
FC - Frequência cardíaca
BPM – Batimentos por minuto
FR – Frequência respiratória
MPM – movimentos por minuto
TPC – Tempo de preenchimento capilar
mL - mililitro
H&E – Coloração hematoxilina e eosina
66

4. REFERÊNCIAS ADICIONAIS
Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da Universidade de São Paulo –
FMVZ/USP, 2011. < http://www.fmvz.usp.br>. Acessado em: 26/10/2011.
Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística - IBGE, Censo Demográfico, 2010.
Disponível em:
. Acessado em: 07/12/2011.
MARLET, E. F.; MAIORKA, P. C. Análise retrospectiva de casos de maus tratos
contra cães e gatos na cidade de São Paulo. Brazilian Journal of Veterinary
Research and Animal Science, São Paulo, v. 47, n. 5, 2010 . Disponível em
. Acessado em: 31/10/2011.
67

5. ANEXOS E APÊNDICES
5.1. ANEXO 1 – Tabela da casuística acompanhada durante o período do
estágio curricular obrigatório supervisionado no Serviço de Patologia
Animal da FMVZ-USP – 31 de agosto a 30 de setembro de 2011.
DATA ESP SEXO IDADE Causa Mortis Diagnóstico Morf. Principal
03/ago FEL M 7M EUTANÁSIA PERITONITE POR NOCARDIA
04/ago FEL M 4M EUTANÁSIA INDETERMINADO
05/ago CAN F 6M INDETERMINADO INDETERMINADO
05/ago AVE M 16A COLAPSO CARDIOVASCULAR INDETERMINADO
08/ago OV F 5A COLAPSO RESPIRATÓRIO PNEUMONIA ABSCEDANTE
08/ago FEL M 3A EUTANÁSIA PIF
09/ago CAN M 16A COLAPSO RESPIRATÓRIO NEOPLASIA ADRENOCORTICAL
09/ago CAN M 16A INDETERMINADO INDETERMINADO
10/ago CAN M 15A CHOQUE HIPOVOLÊMICO PANCREATITE NECRÓTICA
10/ago CAN M 3A INDETERMINADO INDETERMINADO
11/ago CAN F 5A COLAPSO RESPIRATÓRIO INDETERMINADO
12/ago FEL M - COLAPSO CARDIOVASCULAR INDETERMINADO
12/ago CAN F 3A INDETERMINADO INDETERMINADO
16/ago CAN F 3M CHOQUE HIPOVOLÊMICO ENTERITE CATARRAL
16/ago OV F 4A CAQUEXIA INDETERMINADO
16/ago OV F 4A INDETERMINADO INDETERMINADO
18/ago AVE F 5A INSUFICIÊNCIA RENAL CRÔNICA GOTA ÚRICA
22/ago CAN M - CHOQUE ENDOTOXÊMICO TORÇÃO DE RAIZ MESENTÉRICA
22/ago SAGUI M - INDETERMINADO INDETERMINADO
22/ago BOV M - INDETERMINADO INDETERMINADO
23/ago OV F - INDETERMINADO INDETERMINADO
24/ago CAN F 10A COLAPSO RESPIRATÓRIO INDETERMINADO
24/ago EQ F 16A INDETERMINADO INDETERMINADO
24/ago CAN F 10A EUTANÁSIA NEOPLASIA
26/ago FEL M 12A CHOQUE HIPOVOLÊMICO MASTITE/HEMOPERITÔNEO
26/ago FEL M 3M EUTANÁSIA PIF
29/ago CAN F 2M COLAPSO RESPIRATÓRIO INTOXICAÇÃO CARBAMATO
HIPOPROTEINEMIA
30/ago OV M 2M CHOQUE HIPOVOLÊMICO PARASITOSE
30/ago CAP F 5A INDETERMINADO INDETERMINADO
30/ago FEL M - INDETERMINADO INTOXICAÇÃO CARBAMATO
68

30/ago FEL M - INDETERMINADO INTOXICAÇÃO CARBAMATO
30/ago AVE M - INDETERMINADO INDETERMINADO
31/ago CAN M 2A INDETERMINADO INDETERMINADO
31/ago CAN M 4A COLAPSO RESPIRATÓRIO CARDIOMIOPATIA DILATADA
01/set EQ F 0A HIPÓXIA TECIDUAL SOFRIMENTO FETAL
01/set FEL M 2A EUTANÁSIA INDETERMINADO
02/set AVE M - EUTANÁSIA ENTERITE CATARRAL
02/set CAN M 2A EUTANÁSIA NEOPLASIA
02/set CAN M 8A INDETERMINADO INDETERMINADO
05/set OV F 3A COLAPSO RESPIRATÓRIO PLEUROPNEMONIA FIBRINOSA
05/set CAP F 3A EUTANÁSIA DERMATOPATIA
05/set CAN F 5M COLAPSO RESPIRATÓRIO INDETERMINADO
08/set AVE M 4A CHOQUE ENDOTOXÊMICO DILATAÇÃO CLOACAL
08/set CAN M 9A CHOQUE ENDOTOXÊMICO TORÇÃO DE RAIZ MESENTÉRICA
08/set CAN M 5A CHOQUE SÉPTICO INDETERMINADO
09/set FEL M 8M INDETERMINADO INDETERMINADO
09/set FEL F 2A INDETERMINADO INDETERMINADO
09/set FEL F 1A INDETERMINADO INDETERMINADO
14/set AVE F 7A MIOPATIA INDETERMINADO
15/set BOV F 2A INDETERMINADO INDETERMINADO
16/set CAN M 9A COLAPSO RESPIRATÓRIO ESTRESSE
19/set EQ F 8A EUTANÁSIA MIOSITE FLEGMONOSA
20/set AVE M 5A INDETERMINADO INDETERMINADO
20/set CAN F 5A EUTANÁSIA NEOPLASIA
20/set CAN M - COAGULOPATIA INDETERMINADO
22/set OV F 4A INDETERMINADO INDETERMINADO
22/set CAN F 4A INDETERMINADO INDETERMINADO
22/set OV M - INDETERMINADO INDETERMINADO
23/set FEL F 11A EUTANÁSIA NEOPLASIA
26/set EQ M 5A INDETERMINADO INDETERMINADO
26/set EQ M - CHOQUE SÉPTICO PERITONITE FIBRINOSA
27/set CAN M - INDETERMINADO INDETERMINADO
ENTERITE
28/set AVE M - CHOQUE HIPOVOLÊMICO NECROHEMORRÁGICA
29/set CAN M 3M COLAPSO RESPIRATÓRIO INSUFICIÊNCIA RENAL
29/set CAN F 6A EUTANÁSIA ANGIOSSARCOMA
30/set EQ
CAP
M 8A EUTANÁSIA TRAUMA CRÂNIO ENCEFÁLICO
30/set (2)
CAP
M - EUTANÁSIA INDETERMINADO
30/set (2) M - EUTANÁSIA INDETERMINADO
capivara m INDETERMINADO
jabuti m INDETERMINADO
69

5.2. ANEXO 2 – Modelo do relatório de necropsia utilizado pelo Serviço de
Patologia Animal da FMVZ-USP.
70

5.3. ANEXO 3 – Hemograma realizado em clínica particular do paciente
descrito: Felis silvestris catus, macho, 7 meses.
Série Vermelha
Eritrócitos 7,96 milhões/mm³ (5-11 milhões)*
Hemoglobina 11,90 (10,9-15,7)*
Hematócrito 37% (30-45%)*
VGM 46,4 (40-52)*
HGM 14,9 (13-17)*
CHGM 32,1 (26-35)*
Proteína total 5,6 (6,3-8,3)*
Série Branca
Leucócitos 23000 (5100-16200)*
Bastonetes 690 (300)*
Segmentados 18400 (2500-12500)*
Eosinófilos 230 (100-800)*
Linfócitos 3450 (1000-7000)*
Plaquetas 168 x 10³ / µL (100-250)*
Neutrófilos tóxicos +
* Valores de referência
71

5.4. ANEXO 4 – Cultura bacteriana e antibiograma realizados em laboratório
externo (ante mortem).
72

5.5. ANEXO 5 – Cultura realizada pelo Laboratório de Doenças Infecciosas –
FMVZ-USP (post mortem).
73

5.6. ANEXO 6 – Instruções aos autores da revista: “Archives of Veterinary
Science”.
O periódico ARCHIVES OF VETERINARY SCIENCE (AVS) é publicado
trimestralmente, sob orientação do seu Corpo Editorial, com a finalidade de divulgar
artigos completos e de revisão relacionados à ciência animal sobre os temas: clínica,
cirurgia e patologia veterinária; sanidade animal e medicina veterinária preventiva;
nutrição e alimentação animal; sistemas de produção animal e meio ambiente;
reprodução e melhoramento genético animal; tecnologia de alimentos; economia e
sociologia rural e métodos de investigação científica. A publicação dos artigos
científicos dependerá da observância das normas editoriais e dos pareceres dos
consultores “ad hoc”. Todos os pareceres têm caráter sigiloso e imparcial, e os
conceitos e/ou patentes emitidos nos artigos, são de inteira responsabilidade dos
autores, eximindo-se o periódico de quaisquer danos autorais. A submissão de
artigos deve ser feita diretamente na página da revista (www.ser.ufpr.br/veterinary.).
Mais informações são fornecidas na seção “Informações sobre a revista”.
APRESENTAÇÃO DOS ARTIGOS
*Para agilizar a tramitação e publicação de seu artigo, recomendamos
fortemente que as normas sejam obedecidas, inclusive para as referências*
1. Digitação: O artigo com no máximo vinte e cinco páginas deverá ser digitado em
folha com tamanho A4 210 x 297 mm, com margens laterais direita, esquerda,
superior e inferior de 2,5 cm. As páginas deverão ser numeradas de forma
progressiva no canto superior direito. Deverá ser utilizado fonte arial 12 em espaço
duplo; em uma coluna. Tabelas e Figuras com legendas serão inseridas diretamente
no texto e não em folhas separadas.
2. Identificação dos autores e instituições (máximo 6 autores por artigo):Todos
os dados referentes a autores devem ser inseridos exclusivamente nos metadados
no momento da submissão online. Não deve haver nenhuma identificação dos
autores no corpo do artigo enviado para a revista. Os autores devem inclusive
remover a identificação de autoria do arquivo e da opção Propriedades no Word,
garantindo desta forma o critério de sigilo da revista.
3. Tabelas: Devem ser numeradas em algarismo arábico seguido de hífen. O título
será inserido na parte superior da tabela em caixa baixa (espaço simples) com ponto
final. O recuo da segunda linha deverá ocorrer sob a primeira letra do título. (Ex.:
Tabela 1 – Título.). As abreviações devem ser descritas em notas no rodapé da
tabela. Estas serão referenciadas por números sobrescritos (1,2,3). Quando couber,
os cabeçalhos das colunas deverão possuir as unidades de medida. Tanto o título
quanto as notas de rodapé devem fazer parte da tabela, inseridos em "linhas de
tabela".
74

4. Figuras: Devem ser numeradas em algarismo arábico seguido de hífen. O título
será inserido na parte inferior da figura em caixa baixa (espaço simples) com ponto
final. O recuo da segunda linha deverá ocorrer sob a primeira letra do título (Ex.:
Figura 1 – Título). As designações das variáveis X e Y devem ter iniciais maiúsculas
e unidades entre parênteses. São admitidas apenas figuras em preto-ebranco.
Figuras coloridas terão as despesas de clicheria e impressão a cores
pagas pelo autor. Nesse caso deverá ser solicitada ao Editor (via ofício) a
impressão a cores.
NORMAS EDITORIAIS
Artigo completo - Deverá ser inédito, escrito em idioma português (nomenclatura
oficial) ou em inglês. O artigo científico deverá conter os seguintes tópicos: Título
(Português e Inglês); Resumo; Palavras-chave; Abstract; Key words; Introdução;
Material e Métodos; Resultados; Discussão; Conclusão; Agradecimento(s) (quando
houver); Nota informando aprovação por Comitê de Ética (quando houver);
Referências.
Artigo de Revisão - Os artigos de revisão deverão ser digitados seguindo a mesma
norma do artigo científico e conter os seguintes tópicos: Título (Português e Inglês);
Resumo; Palavras-chave; Abstract; Key words; Introdução; Desenvolvimento;
Conclusão; Agradecimento(s) (quando houver); Referencias. A publicação de
artigos de revisão fica condicionada à relevância do tema, mérito científico dos
autores e disponibilidade da Revista para publicação de artigos de Revisão.
ESTRUTURA DO ARTIGO
TÍTULO - em português, centralizado na página, e com letras maiúsculas. Logo
abaixo, título em inglês, entre parêntesis e centralizado na página, com letras
minúsculas e itálicas. Não deve ser precedido do termo título.
RESUMO - no máximo 1800 caracteres incluindo os espaços, em língua portuguesa.
As informações devem ser precisas e sumarizar objetivos, material e métodos,
resultados e conclusões. O texto deve ser justificado e digitado em parágrafo único e
espaço duplo. Deve ser precedido do termo “Resumo” em caixa alta e negrito.
PALAVRAS-CHAVE – inseridas abaixo do resumo. Máximo de cinco palavras em
letras minúsculas, separadas por ponto-e-vírgula, em ordem alfabética, retiradas
exclusivamente do artigo, não devem fazer parte do título, e alinhado a esquerda.
Não deve conter ponto final. Deve ser precedido do termo “Palavras-chave” em
caixa baixa e negrito.
75

ABSTRACT - deve ser redigido em inglês, refletindo fielmente o resumo e com no
máximo 1800 caracteres. O texto deve ser justificado e digitado em espaço duplo,
em parágrafo único. Deve ser precedido do termo “Abstract” em caixa alta e negrito.
KEY WORDS - inseridas abaixo do abstract. Máximo de cinco palavras em letras
minúsculas, separadas por ponto-e-vírgula, em ordem alfabética, retiradas
exclusivamente do artigo, não devem fazer parte do título em inglês, e alinhado a
esquerda. Não precisam ser traduções exatas das palavras-chave e não deve conter
ponto final. Deve ser precedido do termo “Key words” em caixa baixa e negrito.
INTRODUÇÃO – abrange também uma breve revisão de literatura e, ao final, os
objetivos. O texto deverá iniciar sob a primeira letra da palavra “Introdução” (escrita
em caixa alta e negrito), com recuo da primeira linha do parágrafo a 1,0 cm da
margem esquerda.
MATERIAL E MÉTODOS - o autor deverá ser preciso na descrição de novas
metodologias e adaptações realizadas nas metodologias já consagradas na
experimentação animal. Fornecer referência específica original para todos os
procedimentos utilizados. Não usar nomes comerciais de produtos. O texto deverá
iniciar sob a primeira letra do termo “Material e Métodos” (escrito em caixa alta e
negrito), com recuo daprimeira linha do parágrafo a 1,0 cm da margem esquerda.
RESULTADOS (O item Resultados e o item Discussão podem ser presentados
juntos, na forma RESULTADOS e DISCUSSÃO, ou em itens separados)
o texto deverá iniciar sob a primeira letra da palavra “Resultados” (escrita em caixa
alta e negrito), com recuo da primeira linha do parágrafo a 1,0 cm da margem
esquerda. Símbolos e unidades devem ser listados conforme os
exemplos: Usar 36%, e não 36 % (não usar espaço entre o no e %); Usar 88 kg, e
não 88Kg (com espaço entre o no e kg, que deve vir em minúsculo); Usar 42 mL, e
não 42 ml (litro deve vir em Lmaiúsculo, conforme padronização
internacional); Usar 25oC, e não 25 oC (sem espaço entre o no e oC ); Usar
(P

deles, mas apresente apenas trabalhos originais, evitando citações de terceiros.
Discuta os aspectos teóricos e/ou práticos do seu trabalho. Pequenas especulações
podem ser interessantes, porém devem manter relação factual com os seus
resultados. Afirmações tais como: "Atualmente nós estamos tentando resolver este
problema..." não são aceitas. Referências a "dados não publicados" não são aceitas.
Conclua sua discussão com uma curta afirmação sobre a significância dos seus
resultados.
CONCLUSÕES - preferencialmente redigir a conclusão em parágrafo único,
baseada nos objetivos. Devem se apresentar de forma clara e sem abreviações. O
texto deverá iniciar sob a primeira letra da palavra “Conclusão” (escrita em caixa alta
e negrito), com recuo da primeira linha do parágrafo a 1,0 cm da margem
esquerda.
AGRADECIMENTOS - os agradecimentos pelo apoio à pesquisa serão incluídos
nesta seção. Seja breve nos seus agradecimentos. Não deve haver agradecimento a
autores do trabalho. O texto deverá iniciar sob a primeira letra da palavra
“Agradecimento” (escrita em caixa baixa).
NOTAS INFORMATIVAS - quando for o caso, antes das referências, deverá ser
incluído parágrafo com informações e número de protocolo de aprovação da
pesquisa pela Comissão de Ética e ou Biossegurança. (quando a Comissão de Ética
pertencer à própria instituição onde a pesquisa foi realizada, deverá constar apenas
o número do protocolo).
REFERÊNCIAS - o texto deverá iniciar sob a primeira letra da palavra “Referências”
(escrita em caixa alta e negrito). Omitir a palavra bibliográficas. Alinhada somente à
esquerda. Usar como base as normas da Associação Brasileira de Normas Técnicas
– ABNT (NBR 10520 (NB 896) - 08/2002). Devem ser redigidas em página separada
e ordenadas alfabeticamente pelo(s) sobrenome(s) do(s) autor(es). Os destaques
deverão ser em NEGRITO e os nomes científicos, em ITÁLICO. NÃO ABREVIAR O
TÍTULO DOS PERIÓDICOS. Indica-se o(s) autor(es) com entrada pelo último
sobrenome seguido do(s) prenome(s) abreviado (s), exceto para nomes de origem
espanhola, em que entram os dois últimos sobrenomes. Mencionam-se os autores
separados por ponto e vírgula. Digitá-las em espaço simples e formatá-las segundo
as seguintes instruções: no menu FORMATAR, escolha a
opção PARÁGRAFO... ESPAÇAMENTO...ANTES...6 pts.Exemplo de como
referenciar:
ARTIGOS DE PERIÓDICOS:
(citar os 3 primeiros autores seguido de "et al.")
JOCHLE, W.; LAMOND, D.R.; ANDERSEN, A.C. et al. Mestranol as an abortifacient
in the bitch. Theriogenology, v.4, n.1, p.1-9, 1975.
77

Livros e capítulos de livro. Os elementos essenciais são: autor(es), título e
subtítulo (se houver), seguidos da expressão "In:", e da referência completa como
um todo. No final da referência, deve-se informar a paginação. Quando a editora não
é identificada, deve-se indicar a expressãosine nomine, abreviada, entre colchetes
[s.n.]. Quando o editor e local não puderem ser indicados na publicação, utilizam-se
ambas as expressões, abreviadas, e entre colchetes [S.I.: s.n.].
REFERÊNCIA DE LIVROS (in totum):
BICHARD, S.J.; SHERDING, R.G. Small animal practice. Philadelphia : W.B.
Saunders, 1997. 1467 p.
REFERÊNCIA DE PARTES DE LIVROS: (Capítulo com autoria)
SMITH, M. Anestrus, pseudopregnancy and cystic follicles. In: MORROW,
D.A. Current Therapy in Theriogenology. 2.ed. Philadelphia : W.B. Saunders,
1986, Cap.x, p.585-586.
REFERÊNCIA DE PARTES DE LIVROS: (Capítulo sem autoria)
COCHRAN, W.C. The estimation of sample size. In____. Sampling
techniques. 3.ed. New York : John Willey, 1977. Cap.4., p.72-90.
OBRAS DE RESPONSABILIDADE DE UMA ENTIDADE COLETIVA: A entidade é
tida como autora e deve ser escrita por extenso, acompanhada por sua respectiva
abreviatura. No texto, é citada somente a abreviatura correspondente. Quando a
editora é a mesma instituição responsável pela autoria e já tiver sido mencionada,
não é indicada.
ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTRY - AOAC. Official
methods of analysis. 16.ed. Arlington: AOAC International, 1995. 1025p.
UNIVERSIDADE FEDERAL DE VIÇOSA - UFV. Sistema de análises estatísticas e
genéticas - SAEG. Versão 8.0. Viçosa, MG, 2000. 142p.
REFERÊNCIA DE TESE/DISSERTAÇÃO/MONOGRAFIA:
BACILA, M. Contribuição ao estudo do metabolismo glicídico em eritrócitos de
animais domésticos. 1989. Curitiba, 77f. Dissertação (Mestrado em Ciências
Veterinárias) - Curso de Pós-graduação em Ciências Veterinárias, Universidade
Federal do Paraná.
REFERÊNCIA DE PUBLICAÇÕES EM CONGRESSOS:
KOZICKI, L.E.; SHIBATA, F.K. Perfil de progesterona em vacas leiteiras no período
do puerpério, determinado pelo radioimunoensaio (RIA). In: CONGRESSO
BRASILEIRO DE MEDICINA VETERINÁRIA, XXIV., 1996, Goiânia. Anais... Goiânia:
Sociedade Goiana de Veterinária, 1996, p. 106-107.
78

RESTLE, J.; SOUZA, E.V.T.; NUCCI, E.P.D. et al. Performance of cattle and buffalo
fed with different sources of roughage. In: WORLD BUFFALO CONGRESS, 4., 1994,
São Paulo. Proceedings... São Paulo: Associação Brasileira dos Criadores de
Búfalos, 1994. p.301-303.
REFERÊNCIA DE ARTIGOS DE PERIÓDICOS ELETRÔNICOS:Quando se tratar
de obras consultadas on-line, são essenciais as informações sobre o endereço
eletrônico, apresentado entre os sinais < >, precedido da expressão “Disponível em:
xx/xx/xxxx”e a data de acesso do documento, precedida da expressão “Acesso em:
xx/xx/xxxx.”
PRADA, F.; MENDONÇA Jr., C. X.; CARCIOFI, A. C. [1998]. Concentração de cobre
e molibdênio em algumas plantas forrageiras do Estado do Mato Grosso do
Sul. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science, v.35, n.6,
1998. Disponível em: http://www.scielo.br/ Acesso em: 05/09/2000.
MÜELLER, Suzana Pinheiro Machado. A comunicação científica e o movimento de
acesso livre ao conhecimento. Ciência da Informação, Brasília, v. 35, n. 2, 2006.
Disponível em: . Acesso em: 13/05/2007.
REBOLLAR, P.G.; BLAS, C. [2002]. Digestión de la soja integral em
ruminantes. Disponível em: http://www.ussoymeal.org/ruminant_s.pdf. Acesso em:
12/10/2002.
SILVA, R.N.; OLIVEIRA, R. [1996]. Os limites pedagógicos do paradigma da
qualidade total na educação. In: CONGRESSO DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA
URPe, 4., 1996, Recife. Anais eletrônico...Recife: Universidade Federal do
Pernambuco, 1996. Disponível em: http://www.propesq.ufpe.br/anais/anais.htm>
Acesso em: 21/01/1997.
CITAÇÃO DE TRABALHOS PUBLICADOS EM CD ROM:Na citação de material
bibliográfico publicado em CD ROM, o autor deve proceder como o exemplo
abaixo:
EUCLIDES, V.P.B.; MACEDO, M.C.M.; OLIVEIRA, M.P. Avaliação de cultivares de
Panicum maximum em pastejo. In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA
DE ZOOTECNIA, 36., 1999, Porto Alegre. Anais... São Paulo: Gmosis, 1999, 17par.
CD-ROM. Forragicultura. Avaliação com animais. FOR-020.
INSTITUTO BRASILEIRO DE INFORMAÇÃO EM CIÊNCIA E TECNOLOGIA. Bases
de dados em Ciência e Tecnologia. Brasília, n. 1, 1996. CD-ROM.
E.mail Autor, < e-mail do autor. “Assunto”, Data de postagem, e-mail pessoal, (data
da leitura)
79

Web Site Autor [se conhecido], “Título”(título principal, se aplicável), última data da
revisão [se conhecida], < URL (data que foi acessado)
FTPAutor [se conhecido] “Título do documento”(Data da publicação) [se disponível],
Endereço FTP (data que foi acessado)
CITAÇÕES NO TEXTO: As citações no texto deverão ser feitas em caixa baixa.
Quando se tratar de dois autores, ambos devem ser citados, seguido apenas do ano
da publicação; três ou mais autores, citar o sobrenome do primeiro autor seguido de
et al. obedecendo aos exemplos abaixo:
Silva e Oliveira (1999)
Schmidt et al. (1999)
(Silva et al., 2000)
80