Universidade Estadual do Maringá – UEM Parasitos de peixes ...

Universidade Estadual do Maringá – UEM
Núcleo de Pesquisas em Limnologia, Ictiologia e Aqüicultura – NUPELIA
Programa de Pós-Graduação em Ecologia de Ambientes Aquáticos Continentais – PEA
Laboratório de Ictioparasitologia
Parasitos de peixes como indicadores da integridade dos ecossistemas
aquáticos: uma comparação entre riachos na Estação Ecológica do Caiuá
Fabrício Hiroiuki Oda

1. INTRODUÇÃO E JUSTIFICATIVA
A biologia e a ecologia de peixes de ambientes como pequenos riachos, lagoas e brejos são pouco
estudadas no Brasil. Tais corpos de água constituem-se em ambientes particulares, com importância
ecológica nos ecossistemas em que se encontram, visto que muitos animais os utilizam como fonte de água.
As alterações antrópicas, tais como drenagens e aterramentos, podem acarretar a extinção de populações de
peixes e outros organismos que desenvolvem todo o ciclo de vida nesses hábitats (SHIBATTA &
BENNEMANN 2003).
A ictiofauna de riachos é composta por espécies de pequeno porte que apresentam elevado grau de
endemismo, distribuição geográfica restrita, não possuem valor comercial e dependem da vegetação ripária
para alimentação, reprodução e abrigo (CASTRO & MENEZES 1998), sendo considerados bons indicadores
da qualidade do ambiente (KAAR 1981, VIEIRA & SHIBATTA 2007).
Ecossistemas considerados saudáveis contêm populações equilibradas de organismos nativos com
organização funcional e estrutural diversa, com muitas espécies formando a rede trófica, da qual fazem parte
também os parasitos. Segundo TAKEMOTO et al. (2008), a fauna parasitária de peixes de água doce pode
apresentar diferentes composições, dependendo da espécie de hospedeiro, do nível trófico deste hospedeiro
na teia alimentar, da sua idade, do seu tamanho, do sexo, além de outros fatores bióticos e abióticos. Além
disso, no ciclo de vida dos parasitos, os peixes de pequeno porte podem atuar como hospedeiros
intermediários, já que servem de alimento para outras espécies de peixes e diversos grupos de animais, que
são considerados hospedeiros definitivos, completando o ciclo dos parasitos. Uma vez que a poluição e
outros estressores podem exercer impactos sobre as populações e as comunidades de organismos e, então,
sobre a estrutura da rede alimentar, os parasitos podem também ser usados como indicadores biológicos
naturais de alterações na “saúde” do ecossistema (MARCOGLIESE 2005).
Informações concernentes aos parasitos dos peixes e degradação ambiental são usualmente aplicadas
no nível individual e relacionadas aos efeitos patológicos associados ao parasitismo. Apenas recentemente
estudos das comunidades têm sido realizados para investigar respostas a poluentes e outros estressores
(SILVA-SOUZA et al. 2006). Uma variedade de poluentes tais como metais pesados, pesticidas, efluentes
domésticos e industriais (veja VIDAL-MARTÍNEZ et al. 2009) influenciam aguda ou cronicamente os
parasitos dos peixes (LANDSBERG et al. 1998).
YEOMANS et al. (1997) estudando tricodinas em Gasterosteus aculeatus observou que a população
destes protozoários variava com os diferentes níveis de poluição em que o rio se encontrava. SURES (1994)
encontrou metais pesados em taxas significativamente mais elevadas nos tecidos de acantocéfalos do que
nos encontrados em seus hospedeiros. GALLI et al. (2001) demonstraram que cada parasito pode reagir de
forma diferente aos diferentes níveis de poluição da água conforme a sensibilidade de cada organismo
parasito, sendo que normalmente baixo número de espécies parasitas era encontrado em locais altamente
poluídos. Segundo estes autores a riqueza de espécies e os índices de diversidade mostram que a

comunidade de parasitos é afetada pelos diferentes estados das condições ambientais. Outra importante
vantagem da comunidade de parasitos apontada pelos autores como indicadores do estresse ambiental está
relacionado com os níveis tróficos: os parasitos se movem através da cadeia alimentar e são situados no
topo, incorporando os efeitos adversos dos vários poluentes. Desta forma, a ictioparasitofauna pode ser um
reflexo da exposição temporal e espacial a estes poluentes, bem como da ação de estressores como
acidificação, estresse térmico, mudanças hidrológicas e eutrofização (MARCOGLIESE 2005).
O estudo da fauna parasitária de peixes de riachos em diferentes estados de conservação deve trazer
informações que ajudarão a conhecer a integridade desses ecossistemas aquáticos. A partir dessas
informações, é possível inferir quais agentes estressores influenciam a fauna parasitária. Além disso, em
espécies de peixes ainda não estudadas quanto a fauna parasitária (ex. Rivulus apiamici), é possível que
novas espécies de parasitos sejam encontradas.
2. OBJETIVOS
2.1 Objetivo geral
Analisar a fauna parasitária da ictiofauna de riachos na Estação Ecológica do Caiuá, no município de
Diamante do Norte, estado do Paraná e verificar a utilização dos parasitos como indicadores da integridade
dos ecossistemas aquáticos.
2.2 Objetivos específicos
Inventariar e determinar a riqueza da fauna parasitária da ictiofauna;
Determinar o grau de importância de cada espécie ou grupo de parasito;
Determinar o padrão de dispersão da fauna parasitária;
Verificar a influência do tamanho do peixe sobre o nível de parasitismo;
Analisar se o sexo do hospedeiro determina o nível de parasitismo;
Verificar se a sazonalidade influência a ocorrência dos parasitos;
Confrontar a intensidade e a prevalência do parasitismo com o bem estar do hospedeiro, medido pelo
fator de condição relativo;
3. METODOLOGIA
3.1 Área de estudo

(Figura 1).
O estudo será realizado na Estação Ecológica do Caiuá (EEC), no município de Diamante do Norte
Figura 1. Localização da Estação Ecológica do Caiuá, município de Diamante do Norte, estado do Paraná.
O Noroeste do Paraná apresenta praticamente toda sua extensão recoberta por rochas sedimentares
arenosas da Formação Caiuá (TORRES 2003), os solos são originários do Arenito Caiuá, que representa um
substrato geológico-geomorfológico constituído essencialmente por quartzo e altamente susceptível à
erosão. Sua dinâmica reflete-se em depósitos sedimentares inconsolidados ao longo da rede de drenagem,
com modificação constante das feições fluviais ao longo de sua área de abrangência. Os solos predominantes
são o Latossolo Vermelho e o Argissolo Vermelho-Amarelo (NAKASHIMA & NÓBREGA 2003).
Apresentam composição arenosa ou argilosa, com altos teores de matéria orgânica, típicos de relevos suave-
ondulados e mal drenados (JACOMINE 2001).
A unidade fitogeográfica da região Noroeste do Estado, que compreende a área do Arenito Caiuá, e
nos vales formadores dos rios, é definida como Floresta Estacional Semidecidual (ELETROSUL 1986,
CAMPOS & SOUZA 1997, SOUZA et al. 1997, CAMPOS et al. 2000). É caracterizada pela dupla
estacionalidade climática; condicionada por épocas de chuvas no verão, seguidas por estiagem acentuada e
épocas subtropicais sem período seco. Há ainda, seca fisiológica provocada pelo frio do inverno, quando a
temperatura média alcança valores inferiores a 15°C (CAMPOS & SOUZA 1997, IBGE, 2004).
3.2 Coleta de dados

Serão realizadas coletas bimestrais regulares na área de estudo entre outubro de 2010 e fevereiro de
2012, totalizando nove campanhas (Tabela 1).
Tabela 1. Cronograma de execução do Exame de Qualificação Geral (EGQ) e do Projeto de Tese (PT). A) coleta de dados, B)
triagem, preparação e análise do material biológico, C) revisão bibliográfica, D) redação do EGQ, E) apresentação (defesa) do
EGQ, F) redação da tese e G) apresentação (defesa) da tese.
Cronograma
2010 2011 2012
O N D J F M A M J J A S O N D J F M A M J J A S O N D
A X X X X X X X X X
B X X X X X X X X X X X X X X X X X X
C X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X
D X X X X X X X X
E X
F X X X X X X X X X X X X
G X
Os peixes serão capturados em três riachos de primeira ordem (STRAHLER 1957), e formadores da
Bacia do Alto Rio Paraná com o uso de peneira e pesca elétrica. No laboratório os peixes serão identificados
quanto à espécie e o sexo, peso total (g) e o comprimento total e padrão (cm) de todos os espécimes serão
registrados. Em cada ponto de amostragem serão obtidas amostras de água para a análise das variáveis
físico-químicas (pH, condutividade, oxigênio dissolvido, temperatura, fósforo e nitrogênio). Os riachos a
serem amostrados são brevemente descritos a seguir.
O riacho Scherer (22°36’06.7”S; 052°53’02.0”W) possui cerca de 1.600 m de comprimento, nasce
dentro da EEC e deságua em uma lagoa de despejo de esgoto proveniente do Colégio Agrícola da
Universidade Estadual de Maringá (Diamante do Norte, PR) antes de alcançar o rio Paranapanema. Ainda,
possui uma barragem para coleta de água do Colégio em seu trecho médio.
O riacho Conceição (22°35’15.0”S; 052°53’29.0”W) nasce dentro da EEC, mede cerca de 450 m de
extensão, dos quais, aproximadamente, os 100 m finais apresentam uma formação de banhado antes de
desaguar no rio Paranapanema, a cerca de 200 m depois do riacho Scherer.
O ribeirão Diamante nasce próximo ao município de Diamante do Norte, corta transversalmente a
ECC sentido sul-norte, numa extensão de 1300 m, desembocando no lago artificial da UHE de Rosana
(INSTITUTO AMBIENTAL DO PARANÁ 1997). Caracteriza-se por ser um tributário estreito e raso, que
em comunicação com o reservatório torna-se mais largo e profundo.
3.3 Coleta, fixação e identificação dos parasitos
Cada grupo de parasitos receberá tratamento específico (Segundo EIRAS et al. 2006):

Monogenea: serão fixados em formalina 5% e conservados em álcool 70° GL, e depois corados com
Carmalúmem de Mayer, Hematoxilina de Delafield, ou Tricrômico de Gomori, clarificados em
creosoto de faia, antes da montagem em bálsamo do Canadá. Para o estudo das estruturas
esclerotizadas alguns espécimes serão montados em meio de Hoyer.
Digenea: serão coletados ainda vivos, comprimidos entre lâminas e imersos em AFA (85 partes de
álcool a 85%, 10 partes de formol e 5 partes de ácido acético glacial) para a fixação e conservados
em álcool a 70%. Serão corados com Carmalúmem de Mayer através de processo regressivo,
clarificados com creosoto de Faia e montados em lâminas permanentes com bálsamo do Canadá.
Cestoda: serão coletados ainda vivos, fixados em formol a 5% a temperatura aproximada de 65°C e
conservados em álcool a 70%. Serão corados com Carmalúmem de Mayer através de processo
regressivo, clarificados com creosoto de Faia e montados em lâminas permanentes com bálsamo do
Canadá.
Acanthocephala: ainda vivos serão colocados em placa de Petri contendo água destilada e
refrigerados por algumas horas. Em seguida serão fixados em formol a 5% e conservados em álcool
a 70%. Serão corados com Carmalúmem de Mayer através de processo regressivo, clarificados com
creosoto de Faia e montados em lâminas permanentes com bálsamo do Canadá.
Nematoda: ainda vivos serão fixados em formol a 5% a temperatura aproximada de 65°C e
conservados em álcool a 70%.
Branchiura, Copepoda e Acarina: serão fixados e conservados em álcool 70° GL. Preparações
temporárias serão feitas em ácido láctico e preparações permanentes serão feitas em Hoyer.
Isopoda: serão fixados em formalina a 5% (por 24 horas) e conservados em álcool 70° GL. As peças
bucais, patas, urópodos, pleópodos e pleotelson serão removidos com agulhas de dissecção e
montados em lâminas permanentes pelo método do fenol-bálsamo.
Os espécimes a serem fotografados pelo microscópio eletrônico de varredura serão fixados em
glutaraldeído a 2,5% diluído em solução tampão cacodilato a 0,1% (1:10). Posteriormente os espécimes
passarão pelo processo de metalização e então serão fotografados pelo microscópio eletrônico de varredura
Shimadzu SS 550 para melhor visualização das estruturas. A terminologia ecológica utilizada será baseada
em BUSH et al. (1997) e RÓZSA et al. (2000). A identificação dos parasitos utilizará bibliografia
especializada.
3.4 Análises estatísticas
Para a análise dos dados serão utilizados índices e testes estatísticos que serão definidos
posteriormente de acordo com os dados obtidos.

4. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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