Atividade antimicrobiana de Bixa orellana L. (Urucum)

Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003 47
Atividade antimicrobiana de Bixa orellana L. (Urucum)
Ana Marina Silveira Pinto Coelho 1
Geraldo Alves da Silva 2
Olivina Maria Carneiro Vieira 2
Jorge Kleber Chavasco 3
Resumo: Realizou-se o estudo da atividade antimicrobiana de tinturas de Bixa orellana L., conhecida
popularmente como “urucum”. As tinturas foram testadas pelo método de difusão em ágar e apresentaram
atividade antibacteriana, mas foram inativas sobre as cepas de Cryptococcus neoformans e Candida albicans. Verificou-se,
por triagem fitoquímica, a presença de saponinas, flavonóides, taninos, alcalóides e esteróides.
Palavras-chave: Bixa orellana; Urucum; Annatto; Atividade antimicrobiana.
Antimicrobial activity from Bixa orellana L. (Urucum)
Abstract: The antimicrobial activity of the tinctures of Bixa orellana L., commonly known as “urucum”, was
studied. These tinctures were tested by diffusion method in agar and showed antimicrobial activity, but were
inactive on the stumps of Cryptococcus neoformans e Candida albicans. The phytochemical screening indicated the
presence of saponins, flavonoids, tannins, alkaloids and steroids.
Keywords: Bixa orellana; Urucum; Annatto; Antimicrobial activity.
Introdução
A espécie medicinal Bixa orellana L. pertence à
família das Bixaceae, sendo popularmente conhecida como
urucu, urucum, açafroa, açafroeira-da-terra, roucou, bija,
achiote, annatto, conforme a região (Rodrigues et al.,
1988). Trata-se de um arbusto grande ou árvore pequena,
com 3 a 5 m de altura e de copa bem desenvolvida. As
folhas são simples, glabras, medindo 8 a 11 cm de
comprimento. As flores são levemente rosas, dispostas
em panículas. O fruto é uma cápsula deiscente ovóide,
com dois ou três carpelos, cobertos por espinhos. É
uma espécie originária da América tropical, incluindo a
Amazônia brasileira (Lorenzi & Matos, 2002).
Além da utilização na culinária do colorau, um
pigmento extraído das sementes, o urucum é empregado
na medicina popular como medicamento para doenças
coronarianas, afecções do estômago e intestino, afecções
respiratórias, queimaduras, e como afrodisíaco. As
folhas combatem as afecções renais e febre (Lorenzi &
Matos, 2002; Teske & Trentini, 1994).
Segundo estudos de Cáceres et al. (1990, 1995)
sobre a atividade antimicrobiana de B. orellana, os extratos
obtidos do fruto, da raiz e da folha apresentaram
resultados positivos, enquanto o extrato das sementes
não apresentou esta atividade. Huhtanen (1980) estudou
a tintura do fruto frente ao Clostridium botulinum,
determinando o valor da MIC em 31 ppm.
Segundo Lorenzi e Matos (2002), o estudo
fitoquímico revelou a existência, na folha, de um óleo
volátil contendo mono e sesquiterpenos, entre os quais
destaca-se ishwarano e vários flavonóides. Na semente
ocorre um óleo essencial rico em all-E-geranilgeraniol,
monoterpenos e sesquiterpenos oxigenados, além de
carotenóides bixina e norbixina, responsáveis pela cor, e
alfa e beta-caroteno em teores mais baixos. Mercadante
et al. (1996, 1997a e b e 1999) isolaram e elucidaram
vários carotenóides menores presentes nas sementes.
Os estudos realizados para verificar a atividade
antimicrobiana de plantas têm sua importância cada vez
maior, tendo em vista a resistência crescente dos microrganismos
aos antibióticos hoje comercializados (Cunha
et al., 1995). Na tentativa de aumentar o conhecimento
sobre plantas medicinais com potencial antimicrobiano,
despertou-se o interesse em avaliar as possíveis
propriedades do urucum (Bixa orellana L.), pesquisando
as tinturas de órgãos frescos e secos do vegetal.
Material e métodos
Coleta e preparo do material botânico
Foram coletadas amostras de caule, flor, folha,
fruto e raiz de dez exemplares adultos de B. orellana, no
período de abril a junho de 1998, no Sítio da Lagoa, em
1 Departamento de Ciências Biológicas da Escola de Farmácia e Odontologia de Alfenas, Centro Universitário Federal
(Efoa/Ceufe) – Alfenas-MG – 37130-000
2 Departamento de Farmácia da Efoa/Ceufe.
3 Universidade de Alfenas (Unifenas), Universidade do Vale do Rio Verde (Unincor) e Efoa/Ceufe.

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Ana Marina Silveira Pinto Coelho, Geraldo Alves da Silva, Olivina Maria Carneiro Vieira, Jorge Kleber Chavasco
Alfenas, MG. O material foi identificado e a exsicata
depositada no Herbário da Universidade Federal de
Lavras sob o número 15.817.
Preparo das tinturas
As tinturas de órgãos frescos e secos foram
obtidas conforme técnica descrita por Cáceres et al.
(1990, 1995), sendo pesados 200 g de cada órgão e
triturados em liquidificador com 800 mL de etanol 70°
GL. Posteriormente, foram concentradas em evaporador
rotatório e filtradas através de filtro Millipore ®. As
tinturas foram neutralizadas com hidróxido de amônia e
a seguir divididas em dois grupos, refrigerados e
liofilizados (somente de órgãos frescos), conforme os
processos de conservação utilizados.
Determinação da atividade antimicrobiana
Os microrganismos empregados (bactérias e
leveduras) foram isolados de amostras clínicas e mantidos
no Laboratório de Microbiologia e Imunologia da Escola
de Farmácia e Odontologia de Alfenas (Efoa/Ceufe).
Foram utilizados 2 fungos (Cryptococcus neoformans e
Candida albicans) e 12 bactérias (Bacillus sp, Bacillus subtilis,
Chromobacterium violaceum, Enterococcus faecalis, Enterobacter
aerogenes, Escherichia coli, Proteus sp, Pseudomonas aeruginosa,
Salmonella sp, Salmonella enteritidis, Serratia marcescens, e
Staphylococcus aureus).
As tinturas foram submetidas à avaliação da
atividade antimicrobiana pela adaptação da técnica de
difusão em ágar de Bauer et al. (1966). As suspensões
microbianas utilizadas nos testes foram ajustadas para
turvação, equivalente ao tubo 1 da Escala de Mac Farland
(Bier, 1980). As culturas foram transferidas para o meio
de cultura com “swabs”, sendo aplicados 30 µL de tintura
por cavidade feita com tubo de 4 mm de diâmetro.
As tinturas liofilizadas foram ressuspendidas em água
destilada estéril com a metade do volume original.
Para a maioria das bactérias foi empregado
meio de ágar Nutriente, para Enterococcus faecalis, ágar
Sangue e para os fungos ágar Sabouraud. As amostras
das tinturas foram depositadas nas cavidades, do meio
de cultura (6 por placa), correspondentes às 6 tinturas
de órgãos da planta. Após incubação a 37ºC, por 24
horas, anotou-se o diâmetro do halo de inibição de
crescimento, com auxílio de paquímetro. Foram
consideradas com atividade antimicrobiana as tinturas
que produziram halos de inibição. Cada experimento foi
realizado em réplicas de cinco.
Triagem fitoquímica
Na triagem fitoquímica foram pesquisados os
seguintes grupos de princípios ativos: flavonóides, pela
técnica de reação de Shinoda e reação com hidróxidos
alcalinos; taninos, pelo método de precipitação com sais
de ferro, acetato de chumbo, alcalóides, gelatina e acetato
de cobre; alcalóides, pelo método de precipitação com
os reativos de Mayer, Bertrand, Dragendorff e
Bouchardat; esteróides, pela reação de Liebermann-
Burchard; saponinas, pela agitação do extrato aquoso
com formação de espuma persistente; cumarinas,
utilizando a técnica com metanol (Costa, 1982).
Análise estatística
A análise estatística dos resultados foi feita pelo
método de análise de variância – Anova (Vieira, 1991).
Resultados
Atividade antimicrobiana
As tabelas e figuras 1, 2 e 3 mostram os
resultados obtidos com a utilização de tinturas de
órgãos da planta B. orellana diante de doze amostras
bacterianas e duas fúngicas. Pode-se observar que as
amostras fúngicas apresentaram resistência.
Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003

Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003
Atividade antimicrobiana de Bixa orellana L. (Urucum)
TABELA 1 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas de órgãos frescos de B. orellana L., ante 14
espécies microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de
inibição* (mm)
TABLE 1 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of tinctures of fresh organ from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
TINTURAS DE ÓRGÃOS FRESCOS / HALO DE INIBIÇÃO*(mm)
Microorganismos Caule Flor Folha Fruto Fruto Verde Raiz
Cryptococcus neoformans - - - - - -
Candida albicans - - - - - -
Bacillus sp 7,8± 1,3 5,1±0,4 9,7±1,4 - 8,6±2,3 7,9±0,4
Bacillus subtilis 10,6± 2,0 9,0± 1,1 11,4±0,8 - 10,3±1,2 10,5±1,1
Chromobacterium violaceum 7,1±2,5 - 8,3±1,5 - 6,5±1,0 6,0±1,2
Enterococcus faecalis - - 8,8±1,8 - 8,0±2,0 7,1±2,7
Enterobacter aerogenes 10,1±1,3 7,6± 1,3 12,5±1,2 - 11,3±2,4 9,7±0,3
Escherichia coli - - 8,6±1,2 - - -
Proteus sp 7,7±2,0 6,9±1,2 10,0±2,0 - 9,1±1,4 8,1± 1,7
Pseudomonas aeruginosa 7,6±2,7 4,6±1,7 11,1±1,7 - 8,5± 0,9 6,8±0,7
Salmonella sp 6,2±1,2 5,3± 0,7 10,1±1,1 - 9,0±2,5 9,1±4,5
Salmonella enteritidis 6,5±1,6 5,6±2,2 10,0±1,5 - 7,3±0,7 6,3±1,1
Serratia marcescens 6,8±1,8 5,6±1,8 8,5±1,2 - 6,5±0,5 7,5±1,5
Staphylococcus aureus
* Valor médio de 5 réplicas.
10,9±4,1 7,5±1,2 15,0± 4,5 - 10,5±2,5 12,4±4,9
Halo de Inibição (mm)
16
14
12
10
8
6
4
2
0
( -) Ausência de halo de inibição.
CAULE FLOR FOLHA FRUTO FRUTO VERDE RAIZ
Tinturas de Órgãos Frescos
Bacillus sp
Cryptococcus neoformans Candida albicans
Bacillus subtilis Chromobacterium violaceum Enterococcus faecalis
Enterobacter aerogenes
Escherichia
coli
Pseudomonas aeruginosa
Salmonella sp
Serratia marcescens Staphylococcus aureus
Proteus sp
Salmonella enteritidis
FIGURA 1 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas de órgãos frescos de B. orellana L., ante 14
espécies microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de
inibição* (mm)
FIGURE 1 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of tinctures of fresh organ from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
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Ana Marina Silveira Pinto Coelho, Geraldo Alves da Silva, Olivina Maria Carneiro Vieira, Jorge Kleber Chavasco
TABELA 2 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas liofilizadas de B. orellana L., ante 14 espécies
microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de inibição* (mm)
TABLE 2 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of lyophilized tinctures from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
TINTURAS LIOFILIZADAS / HALOS DE INIBIÇÃO*(mm)
Microorganismos Caule Flor Folha Fruto Fruto Verde Raiz
Cryptococcus neoformans - - - - - -
Candida albicans - - - - - -
Bacillus sp 8,5±1,2 8,4± 2,4 12,6±1,0 - 9,9±1,8 10,2±1,5
Bacillus subtilis 8,8±1,17 8,8±1,4 12,6±1,0 - 10,1±0,6 10,4±0,3
Chromobacterium violaceum 10,0±2,2 12,6±1,9 14,0±2,0 - 12,8± ±1,4 10,8±1,9
Enterococcus faecalis 7,7±1,3 7,2±1,7 11,2±2,2 - 7,4± ±1,0 8,0±1,1
Enterobacter aerogenes 8,4±1,6 9,0±0,6 14,9±0,8 - 11,6±1,0 11,3±0,8
Escherichia coli 10,0±1,9 10,0±2,7 12,2±2,9 - 8,4±0,5 9,4±1,1
Proteus sp 10,1±1,7 10,6±1,7 14,0±1,1 - 10,6±1,7 10,4±1,9
Pseudomonas aeruginosa 10,6±3,6 12,2±2,1 15,8±1,9 - 12,8±1,8 11,4±1,2
Salmonella sp 10,2±2,2 11,4±1,6 15,7±1,9 - 12,6±1,6 12,2±1,1
Salmonella enteritidis 8,6±2,1 10,0±2,5 13,6±2,2 - 10,8±1,1 9,8±1,1
Serratia marcescens 10,2±2,1 11,2±2,2 15,4±2,2 - 12,6±1,7 11,4±1,0
Staphylococcus aureus
* Valor médio de 5 réplicas.
( -) Ausência de halo de inibição.
8,2±1,1 12,3±1,6 11,4±1,3 - 8,8±1,6 8,8±0,9
Halo de Inibição (mm)
18
16
14
12
10
8
6
4
2
0
CAULE FLOR FOLHA FRUTO FRUTO VERDE RAIZ
Cryptococcus neoformans Candida albicans
Chromobacterium violaceum
Enterococcus faecalis
Proteus sp Pseudomonas
aeruginosa
Serratia marcescens Staphylococcus aureus
Tinturas Liofilizadas
Bacillus
sp Bacillus subtilis
Enterobacter aerogenes Escherichia coli
Salmonella sp Salmonella enteritidis
FIGURA 2 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas liofilizadas de B. orellana L., ante 14 espécies
microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de inibição* (mm)
FIGURE 2 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of lyophilized tinctures from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003

Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003
Atividade antimicrobiana de Bixa orellana L. (Urucum)
TABELA 3 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas de órgãos secos obtidas de B. orellana L., ante
14 espécies microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de
inibição* (mm)
TABLE 3 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of tinctures of dry organ from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
TINTURAS DE ÓRGÃOS SECOS/HALOS DE INIBIÇÃO * (mm)
Microorganismos Caule Flor Folha Fruto Fruto Verde Raiz
Cryptococcus neoformans – – – – – –
Candida albicans – – – – – –
Bacillus sp 6,0±1,6 10,2±2,1 10,6±0,8 – 9,6±3,3 5,2±0,5
Bacillus subtilis 10,7±3,0 10,6±3,8 10,4±2,0 – 9,4±2,5 5,8±1,7
Chromobacterium violaceum 8,9±2,0 8,4±1,6 11,6±1,3 – 10,0±1,1 7,2±1,1
Enterococcus faecalis – 7,2±2,3 10,0±1,4 – 9,4±1,3 –
Enterobacter aerogenes 8,2±0,8 10,0±1,6 11,3±0,8 – 7,8±0,4 7,1±0,2
Escherichia coli 9,8±0,7 8,6±0,8 12,2±2,3 – 10,8±0,4 7,8±0,7
Proteus sp 9,4±0,8 10,8±1,4 12,2±1,1 – 11,4±1,6 8,0±1,4
Pseudomonas aeruginosa 9,2±2,3 10,6±1,2 12,8±3,0 – 11,6±2,3 9,0±2,8
Salmonella sp 9,9±2,0 10,6±1,0 13,2±0,9 – 10,6±1,2 6,2±1,0
Salmonella enteritidis 8,7±1,5 10,8±0,7 13,0±1,4 – 10,2±2,6 7,2±0,9
Serratia marcescens 7,8±1,1 9,0±0,8 10,8±1,6 – 9,00 ±2,3 5,4±0,8
Staphylococcus aureus 8,8±1,1 11,6±1,7 11,4±1,2 – 11,0±1,7 7,6±1,9
* Valor médio de 5 réplicas.
(–) Ausência de halo de inibição.
Halo de Inibição (mm)
14
12
10
8
6
4
2
0
CAULE FLOR FOLHA FRUTO FRUTO VERDE RAIZ
Cryptococcus neoformans Candida albicans
Tinturas de Órgãos Secos
Bacillus sp Bacillus subtilis
Chromobacterium violaceum Enterococcus faecalis Enterobacter aerogenes Escherichia coli
Proteus sp Pseudomonas aeruginosa
Salmonella sp Salmonella enteritidis
Serratia marcescens
Staphylococcus aureus
FIGURA 3 – Avaliação da atividade antimicrobiana in vitro de tinturas de órgãos secos obtidas de B. orellana L., ante
14 espécies microbianas, utilizando-se o método da difusão em ágar. Determinação dos halos de
inibição* (mm)
FIGURE 3 – Evaluation of the antimicrobial activity in vitro of tinctures of dry organ from B. orellana L., employing
14 microbial stumps by diffusion method in agar. Determination of inhibition halos* (mm)
51

52
Ana Marina Silveira Pinto Coelho, Geraldo Alves da Silva, Olivina Maria Carneiro Vieira, Jorge Kleber Chavasco
Triagem Fitoquímica
Conforme a Tabela 4, verificou-se a presença de saponinas, flavonóides, taninos, alcalóides e esteróides.
TABELA 4 – Triagem fitoquímica de tinturas de B. orellana L.
TABLE 4 – Phytochemical screening of the tinctures from B. orellana L.
Extratos Saponinas Flavonóides Taninos Alcalóides Esteróides Cumarina
T1 + + + + + -
Caule
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 + + + + + -
Flor
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 + + + + + -
Folha
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 + + + + + -
Fruto
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 + + + + + -
Fruto Verde
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 + + + + + -
Raiz
T2
T3
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
-
T1 – Tintura de órgão fresco; T2 – Tintura liofilizada; T3 – Tintura de órgão seco.
+ - Presença; − - Ausência.
Discussão
De acordo com os resultados, podemos
verificar que todas as tinturas foram inativas ante as
espécies fúngicas testadas (C. albicans e C. neoformans),
independentemente do órgão e da droga vegetal. Testes
realizados com o extrato hidroalcoólico a 95% de folha
de B. orellana L. (Irobi et al., 1996) mostraram resultados
semelhantes em relação às cepas de Candida utilis e
Aspergillus niger. Na literatura consultada não constatamos
nenhum trabalho demonstrando ação antifúngica
do urucum.
Comparando as tinturas obtidas de folhas
(frescas, droga e liofilizada) de B. orellana, Tabelas e Figuras
1, 2 e 3, a tintura liofilizada apresentou maior atividade
antimicrobiana diante das bactérias testadas, exceto a S.
aureus. Maiores halos de inibição foram constatados ante
as culturas de P. aeruginosa (15,8 mm), Salmonella sp (15,7
mm), S. marcescens (15,4 mm), E. aerogenes (14,94 mm), C.
violaceum (14mm) e Proteus sp (14 mm) (Tabela 2).
Caceres et al. (1995) investigaram 46 plantas,
entre elas Bixa orellana, quanto à atividade, contra cinco
cepas de Neisseria gonorrhoeae através de extrato
hidroalcóolico a 50% utilizando a folha e a raiz, e
constataram que somente a folha possui efeito inibidor.
No presente trabalho, as tinturas obtidas de folhas e
raiz mostraram atividade antimicrobiana, provavelmente
por se tratar de testes envolvendo outras bactérias.
Resultados de testes realizados com o extrato
hidroalcoólico a 95% (Irobi et al., 1996) obtido de folha
fresca do urucum demonstraram atividade antibacteriana
somente contra bactérias gram positivas, como B. subtilis e
S. aureus, o que está concordante com os resultados do
presente trabalho, apesar de termos detectado também
inibição para bactérias gram negativas. Nos testes realizados
por Irobi et al. (1996), diante de bactérias gram negativas
como Escherichia coli e Serratia marcescens, o extrato hidroalcoólico
de folha foi inativo. Variações nos resultados
podem ser explicadas por vários fatores como local, época
e período de coleta da planta, promovendo diferenças
de concentração entre as tinturas (Oliveira, 1991).
Com relação aos demais órgãos, a forma de
tintura liofilizada obteve maior atividade, em
comparação com as demais tinturas.
As tinturas possuem saponinas, flavonóides,
taninos, alcalóides e esteróides, encontradas na triagem
fitoquímica, o que possivelmente comprova sua atividade
antimicrobiana. O poder anti-séptico revelado pelos
Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003

taninos explica o fato destes impedirem o desenvolvimento
de microrganismos, associado à própria ação
desinfetante que lhes confere o seu caráter fenólico
(Costa, 1977), provavelmente responsável pela ação
antimicrobiana das tinturas.
Cowan (1999) relatou, baseado em trabalhos
encontrados na literatura, que a atividade antimicrobiana
dos flavonóides, possivelmente, é devida à habilidade
deste grupo de se complexar com proteínas solúveis e
extracelulares e também com a parede de células
bacterianas. Muitos flavonóides lipofílicos podem
romper as membranas microbianas. Alguns grupos de
isoflavonóides possuem propriedades antifúngicas,
porém nenhuma das tinturas testadas apresentou esta
atividade (Costa, 1977), provavelmente por se encontrar
em concentração baixa ou por pertencer a outros
grupos de flavonóides. Com relação aos alcalóides, Iwu
et al. (1999) constataram sua presença, conferindo
atividade antibacteriana em plantas como Cryptolepis
sanguinolenta sobre isolados de E. coli, Staphylococcus,
Pseudomonas e Salmonella e Nauclea latifolia sobre isolados
de Pseudomonas aeruginosa e Salmonella sp. Neste trabalho
a presença de alcalóides foi detectada em todas as tinturas.
Sobre as saponinas, sua atividade depende das suas
estruturas. As saponinas esteroidais monodesmosídicas
e várias triterpênicas também com uma única cadeia
glicídica ligada ao C3 possuem propriedades típicas do
grupo, incluindo as propriedades hemolíticas, bacterios-
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Revista Lecta, Bragança Paulista, v. 21, n. 1/2, p. 47-54, jan./dez. 2003
Atividade antimicrobiana de Bixa orellana L. (Urucum)
táticas e fungicidas, podendo explicar a atividade
antimicrobiana destas tinturas (Costa, 1977). Iwu et al.
(1999) citam em seu trabalho que as saponinas foram
uma das substâncias responsáveis pela atividade
antibacteriana contra bactérias gram positivas e gram
negativas encontrada na raiz de Nauclea latifolia. Srivastava
et al. (1999), em seu trabalho, citam que vários constituintes
da B. orellana foram isolados e identificados,
entre os quais incluem os carotenóides, terpenóides,
flavonóides, taninos e traços de alcalóides, resultados
estes semelhantes aos nossos. Apesar de detectarmos a
presença de saponinas, flavonóides, taninos, alcalóides e
esteróides nas tinturas obtidas de fruto, as mesmas não
apresentaram atividade antimicrobiana, provavelmente
por estar em baixas concentrações, que não foram
avaliadas porque os testes foram apenas qualitativos.
Conclusões
As tinturas de B. orellana preparadas a partir de
órgãos e suas drogas foram inativas em face das
leveduras C. albicans e C. neoformans.
As tinturas preparadas de folhas e suas drogas
produziram halos de inibição em relação a todas as
bactérias.
As tinturas liofilizadas e as tinturas obtidas de
drogas originadas dos órgãos fruto imaturo e flor
inibiram todas as bactérias.
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