Artigo Científico - UPIS

DEPARTAMENTO DE MEDICINA VETERINÁRIA
TRABALHO DE CONCLUSÃO DO CURSO
DE MEDICINA VETERINÁRIA
Área de Clínica Médica e Cirurgia de Pequenos Animais
Área de Cirurgia Experimental
Acadêmico: Paulo Ivo Gonçalves Barreira
Orientadora: Prof.ª Dr.ª Rita de Cássia Campebell
Supervisores: Méd. Vet. Paulo Henrique Cândido de Carvalho
Méd. Vet. MsC José Belarmino da Gama Filho
Brasília – DF
Novembro, 2006

DEPARTAMENTO DE MEDICINA VETERINÁRIA
TRABALHO DE CONCLUSÃO DO CURSO
DE MEDICINA VETERINÁRIA
Elaborado por
Paulo Ivo Gonçalves Barreira
APROVADO PELA COMISSÃO EXAMINADORA ABAIXO
______________________________________
Orientadora
Prof.ª Dr.ª Rita de Cássia Campebell
______________________________________
Prof. MsC Sandro Alex Stefanes
______________________________________
Méd. Vet. MsC José Belarmino da Gama Filho

AGRADECIMENTOS
Ao Senhor agradeço imensamente por essa graça divina, colocando no meu
caminho pessoas maravilhosas que ajudaram a conquistar um sonho e tornar
realidade meu plano de vida.
Minha gratidão também aos meus pais, Ester e Vladimir, que durante toda
minha vida me ensinaram o caminho dos corretos, fazendo assim com que eu
chegasse até aqui.
À minha querida noiva, Paula, dedico o alcance desse novo patamar da minha
vida, pois durante todos esses anos caminhamos juntos.
Às minhas amadas irmãs, Lácia e Adriana, ao Brucce e aos amigos só tenho a
agradecer, por compreenderem minha ausência em tantos momentos importantes
em função da minha dedicação aos estudos.
Dedico também às minhas avós, Catarina e Iolanda, que sempre me incluíram
em suas orações, e ao meu avô Luciano, que me serviu de exemplo para busca
de novos conhecimentos.
Aos meus mestres, que dentro e fora das salas de aula me forneceram as
ferramentas necessárias para me tornar um bom profissional.
Meu reconhecimento aos animais, que me mostraram a magia que trazem
consigo, com grande destaque para o meu cão Hércules.
“Esperei com paciência pelo Senhor; ele se inclinou para mim, e ouviu o meu
clamor”. (Salmo 40, 1)

SUMÁRIO
LISTA DE TABELAS............................................................................iii
LISTA DE FIGURAS..............................................................................v
1. INTRODUÇÃO.................................................................................01
2. ATIVIDADES DESENVOLVIDAS....................................................03
3. CASOS DE INTERESSE.................................................................09
3.1 Colelitíase.................................................................................09
3.1.1 Histologia e anatomia das vias biliares........................09
3.1.2 Fisiologia da vesícula biliar..........................................11
3.1.3 Colelitíase....................................................................12
3.1.4 Etiologia.......................................................................14
3.1.5 Sinais clínicos..............................................................15
3.1.6 Diagnóstico..................................................................15
3.1.6.1 Anamnese e exame físico..............................15
3.1.6.2 Radiografia.....................................................16
3.1.6.3 Ultra-sonografia..............................................16
3.1.6.4 Achados laboratoriais.....................................17
3.1.6.5 Laparotomia....................................................17
3.1.7 Tratamento...................................................................18
3.1.7.1 Tratamento clínico................................18
3.1.7.2 Tratamento cirúrgico............................19
3.1.7.2.1 Pré-operatório.........................19
3.1.7.2.2 Colecistotomia.........................19
3.1.7.2.3 Colecistectomia.......................20
3.1.7.2.3 Coledocotomia.........................22
3.1.7.2.4 Anastomose biliar-intestinal.....22
3.1.8 Pós-operatório................................................................24
3.1.9 Relato de caso e discussão............................................24

3.2 Ovariossalpingohisterectomia por videolaparoscopia.................31
3.2.1 Anatomia e fisiologia do aparelho reprodutor feminino.31
3.2.2 Ovariossalpingohisterectomia (OSH).............................33
3.2.3 Técnicas Cirúrgicas....................................................... 34
3.2.4 OSH videolaparoscópica................................................34
3.2.4.1 Equipamentos e instrumentais..........................35
3.2.4.2 Considerações anestésicas...............................40
3.2.4.3 Procedimento cirúrgico......................................41
3.2.4.4 Possíveis complicações.....................................46
3.2.5 Relato de caso e discussão.............................................48
4. CONCLUSÃO............................................................................................55
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS..............................................................56
ANEXOS
• ANEXO A – Fontes de aquisições....................................................60
• ANEXO B – Certificados dos estágios curriculares.......................61

LISTA DE TABELAS
Tabela 1 - Número de animais acompanhados no Centro Veterinário Asa Sul –
DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos animais e animais
silvestres, durante o estágio curricular supervisionado, no período –
26 de junho de 2006 – 1º de setembro de 2006...............................03
Tabela 2 - Relação do número de animais por espécie acompanhados no
CentroVeterinário Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de
pequenos animais e animais silvestres, durante o estágio curricular
supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º de setembro
de 2006.............................................................................................03
Tabela 3 - Exames complementares realizados e interpretados no Centro
Veterinário Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos
animais e animais silvestres, durante o estágio curricular
supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º de setembro
de 2006.............................................................................................04
Tabela 4 - Casos clínicos acompanhados no Centro Veterinário Asa Sul – DF,
na área de clínica e cirurgia de pequenos animais, durante o estágio
curricular supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º de
setembro de 2006.............................................................................05
Tabela 5 - Procedimentos não cirúrgicos acompanhados no Centro Veterinário
Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos animais,
durante o estágio curricular supervisionado, no período – 26 de junho
de 2006 – 1º de setembro de 2006...................................................06

Tabela 6 - Procedimentos cirúrgicos acompanhados no Centro Veterinário Asa
Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos animais, durante
o estágio curricular supervisionado, no período – 26 de junho de
2006 – 1º de setembro de
2006..................................................................................................07
Tabela 7 - Relação do número de animais por espécie acompanhados no Centro
de Treinamento de Cirurgia Experimental - CETREX, na área de
cirurgia experimental, durante o estágio curricular supervisionado, no
período – 1º de julho de 2006 – 31 de julho de
2006..................................................................................................08
Tabela 8 - Procedimentos cirúrgicos acompanhados no Centro de Treinamento
de Cirurgia Experimental - CETREX, na área de cirurgia
experimental, durante o estágio curricular supervisionado, no período
– 1º de julho de 2006 – 31 de julho de 2006.....................................08

LISTA DE FIGURAS
Figura 1 Representação esquemática da microestrutura de lóbulo hepático..10
Figura 2 Fígado de cão, face visceral; endurecido in situ................................11
Figura 3A Cálculos biliares de colesterol..........................................................13
Figura 3B Cálculos biliares de pigmento..........................................................13
Figura 4 Colecistectomia. A. Exposição da vesícula biliar com incisão no
peritôneo visceral ao longo da junção da vesícula e do fígado. B.
Identificação do ducto biliar comum, que pode ser canulado através
da papila duodenal, para melhor proteção. C. Pinçamento e
ligamento duplo do ducto cístico e artéria
cística................................................................................................21
Figura 5 Anastomose biliar-intestinal. A. Aproximação da vesícula biliar e da
alça intestinal com uso de suturas de sustentação. B. Sutura da
mucosa da vesícula biliar com a mucosa duodenal. C. Aproximação
das superfícies serosas ao redor da
anastomose.......................................................................................23
Figura 6 Setas indicando a vesícula biliar ao centro, totalmente separada do
fígado, sendo tracionada para melhor exposição, demonstrando
também a dupla ligadura no ducto cístico.........................................27
Figura 7 Colélitos indicados pelas setas, e vesícula biliar indicada pela ponta
da tesoura.........................................................................................29
Figura 8 Aparelho reprodutor da cadela...........................................................31
Figura 9 Foto do conjunto: A. monitor; B. eletrocautério; C. fonte de luz; D.
câmera; E: insuflador...........................................................................38
Figura 10 A. clipador; B. tesoura; C. pinça de apreensão grasping; D. conjunto
trocarte-cânula; E. agulha de Veress.................................................40
Figura 11 Posicionamento das cânulas. CD = caudal, CR = cranial, E =
esquerda, D = direita.........................................................................44
Figura 12 Introdução do trocarte durante OSH videolaparoscópica.................51
Figura 13A Retirada do útero durante OSH videolaparoscópica em cadela......53

Figura 13B Retirada do útero durante OSH videolaparoscópica em cadela.....53

1. INTRODUÇÃO
O estágio supervisionado obrigatório foi realizado sob orientação da Profª Drª
Rita de Cássia Campebell, em duas áreas distintas e ao mesmo tempo
complementares. A primeira delas foi a área de clínica médica e cirúrgica de
pequenos animais e animais silvestres, sob supervisão do Médico Veterinário
Paulo Henrique Cândido de Carvalho (CRMV-DF nº 1084), no período de 24 de
junho a 01 de setembro de 2006, no Centro Veterinário Asa Sul, situado em
Brasília – DF, totalizando 448 horas de estágio. Trata-se de um hospital particular
com estrutura dividida em recepção, dois consultórios, sala de emergência,
internação dividida em gatil e canil (onde o segundo ainda se divide em área de
portadores de doenças infecciosas e em área para cães que apresentem
distúrbios não infecciosos), laboratório para exames séricos, urinários e
coprológicos, sala de raio-x, sala de revelação do raio-x, centro cirúrgico, sala de
paramentação, sala de limpeza e esterilização dos equipamentos, área para
coleta, armazenamento e controle do banco de sangue e sala de armazenamento
e depósito de medicações e materiais. Seu funcionamento ocorre durante todos os
dias da semana, por um período de vinte e quatro horas. A rotina de atividades do
hospital é bem ampla, sendo acompanhados durante o estágio curricular
atendimentos clínicos, realização de exames laboratoriais, práticas de
emergência, coletas de sangue para transfusões, exames radiográficos, condutas
durante a internação de animais e procedimentos cirúrgicos, que como um todo
permitiram aliar a teoria acadêmica com a prática.
A outra parte do estágio supervisionado foi realizada na área de cirurgia
experimental, sob supervisão do Médico Veterinário MsC José Belarmino da
Gama Filho (CRMV-DF nº 0624), no período de 1º a 31 de julho de 2006, no
1

Centro de Treinamento de Cirurgia Experimental – CETREX, situado em Brasília-
DF, totalizando 50 horas. O CETREX é uma instituição particular, que além de
oferecer cursos teórico-práticos em diferentes áreas da saúde, abre espaço e
proporciona uma estrutura favorável para a realização de experimentos na área de
cirurgia, além de práticas de treinamento de inovações na mesma área. Sua
estrutura é composta de auditório de palestras, duas salas de paramentação, sala
de treinamento em cirurgia, sala de preparo dos animais, três canis com
capacidade para cerca de 40 cães e uma granja de suínos. Ocorrem
regularmente, a cada semestre, cursos de videocirurgia e instrumentação
videocirúrgica, além disso, outros cursos são ministrados oportunamente, assim
como experimentos na área de medicina humana e medicina veterinária. Durante
o referido estágio, foram acompanhados diferentes procedimentos cirúrgicos,
protocolos de anestesia e pós-operatórios dos animais.
2

2. ATIVIDADES DESENVOLVIDAS
Tabela 1: Número de animais acompanhados no Centro Veterinário Asa Sul – DF,
na área de clínica e cirurgia de pequenos animais e animais silvestres,
durante o estágio curricular supervisionado, no período – 26 de junho de
2006 – 1º de setembro de 2006.
ÁREA NÚMERO DE ANIMAIS PERCENTUAL
Clínica Cirúrgica 51 15,45%
Clínica Médica 279 84,55%
Total 330 100%
Tabela 2: Relação do número de animais por espécie acompanhados no Centro
Veterinário Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos
animais e animais silvestres, durante o estágio curricular
supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º de setembro de
2006.
ESPÉCIE NÚMERO DE ANIMAIS PERCENTUAL
Canina 293 88,79%
Felina 28 8,48%
Silvestres 3 0,91%
Total 330 100%
3

Tabela 3: Exames complementares realizados e interpretados no Centro
Veterinário Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos
animais e animais silvestres, durante o estágio curricular
supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º de setembro de
2006.
EXAME NÚMERO PERCENTUAL
Hemograma completo
Bioquímica sérica:
53 15,1%
Transaminase
pirúvica (TGP)
glutâmica-
47
13,4%
Fosfatase alcalina
47
13,4%
Uréia
50
14,3%
Creatinina
50 14,3%
Lípase
4
1,1%
Amilase
4
1,1%
T3, T4 e hormônio estimulador
da Tireóide (TSH)
5 1,4%
Glicemia 17 4,9%
Exame parasitológico de pele 6 1,7%
Ultra-sonografia 6 1,7%
Biópsia incisional 5 1,4%
Colonoscopia 1 0,3%
Endoscopia 3 0,9%
Eletrocardiograma 1 0,3%
Radiografia 46 13,1%
Necropsia 1 0,3%
Coprológico 4 1,1%
Total 350 100%
4

Tabela 4: Casos clínicos e alterações clínicas acompanhadas no Centro
Veterinário Asa Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos
animais, durante o estágio curricular supervisionado, no período – 26 de
junho de 2006 – 1º de setembro de 2006.
CASO CLÍNICO NÚMERO PERCENTUAL
Abscesso (tecido subcutâneo – região
lombar)
1 0,6%
Acompanhamento pré-natal 3 1,7%
Acompanhamento quimioterápico 5 2,8%
Alteração comportamental
(agressividade)
2 1,1%
Artrite interfalangeana no MAE 1 0,6%
Artrodese (entre L1 e S3) 5 2,8%
Avaliação neurológica 1 0,6%
Babesiose 1 0,6%
Calicivirose 1 0,6%
Cistite
Claudicação
2 1,1%
MA (subluxação escápulo-umeral)
3
1,7%
MP (luxação patelar)
2
1,1%
MP (subluxação coxo-femoral)
2
1,1%
Condrossarcoma 1 0,6%
Conjuntivite 5 2,8%
Constipação
Dermatite
2 1,1%
fúngica
11
6,2%
bacteriana
6 3,4%
alérgica 6 3,4%
Diabetes mellitus tipo 1 3 1,7%
Diarréia 7 4%
Dispnéia 1 0,6%
Edema pulmonar 1 0,6%
Êmese 12 6,8%
Êmese e diarréia 3 1,7%
Erliquiose 3 1,7%
Hiperplasia de próstata 1 0,6%
Imunodeficiência felina 1 0,6%
Gastrite 2 1,1%
Gastrenterite hemorrágica 4 2,2%
Hematêmese 1 0,6%
Hematúria 1 0,6%
Hematoquezia 1 0,6%
Hepatite 1 0,6%
5

Hipersensibilidade à picada de inseto 1 0,6%
Hipocalcemia pós-parto 1 0,6%
Hipotireiodismo 4 2,2%
Inapetência 8 4,5%
Infestação parasitária por carrapatos 2 1,1%
Intoxicação
alimentar
medicamentosa (por diclofenaco)
8
2
4,5%
1,1%
Lesão por Dermatobia hominis 1 0,6%
Melanoma 1 0,6%
Miíase (Cochliomyia hominivorax) 3 1,7%
Otite
externa
5
2,8%
média
1
0,6%
Pancreatite 3 1,7%
Papiloma 3 1,7%
Paresia dos posteriores 2 1,1%
Poliúria 1 0,6%
Prostração 9 5,1%
Prurido 1 0,6%
Pseudociese 3 1,7%
Reabsorção óssea (osso maxilar)
Sarna
1 0,6%
demodécica
5
2,8%
sarcóptica
2 1,1%
otodécica 2 1,1%
Sopro cardíaco 4 2,2%
Urolitíase 2 1,1%
Total 177 100%
Tabela 5: Procedimentos não cirúrgicos acompanhados no Centro Veterinário Asa
Sul – DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos animais, durante o
estágio curricular supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º
de setembro de 2006.
PROCEDIMENTO NÚMERO PERCENTUAL
Atestado de saúde 4 3,4%
Coleta de sangue para transfusão 14 11,9%
Curativo 36 30,5%
Introdução de microchip 4 3,4%
Imobilização da articulação úmeroradio-ulnar
(luxação)
1
0,9%
Retirada de pontos
4
3,4%
6

Vacinação 55 46,6%
Total 118 100%
Tabela 6: Procedimentos cirúrgicos acompanhados no Centro Veterinário Asa Sul
– DF, na área de clínica e cirurgia de pequenos animais, durante o
estágio curricular supervisionado, no período – 26 de junho de 2006 – 1º
de setembro de 2006.
PROCEDIMENTO
Caudectomia
NÚMERO PERCENTUAL
cão adulto
2
3,8%
cão filhote 3 5,8%
Cistotomia 1 1,9%
Colecistectomia 1 1,9%
Esplenectomia 2 3,8%
Estabilização da patela 1 1,9%
Exérese
cabeça do fêmur
condrossarcoma tóracolombar
papiloma
1
1,9%
2 3,8%
2
3,8%
cisto sebáceo 3 5,8%
Flap de 3ª pálpebra 2 3,8%
Mastectomia
total
1
1,9%
parcial
5
9,6%
Orquiectomia
Osteossíntese
4 7,7%
fêmur
2
3,8%
mandíbula
Ovariossalpingohisterectomia
1 1,9%
laparotomia
6
11,5%
videolaparoscopia 3 5,8%
Reparação do ligamento
cruzado cranial
1
1,9%
Reparação de solução de
continuidade
3
5,8%
Retirada de corpo estranho
esofágico por endoscopia
1
1,9%
Tratamento periodontal
4
7,7%
Ureterostomia 2 3,8%
Total 52 100%
7

Tabela 7: Relação do número de animais por espécie acompanhados no Centro
de Treinamento de Cirurgia Experimental - CETREX, na área de cirurgia
experimental, durante o estágio curricular supervisionado, no período –
1º de julho de 2006 – 31 de julho de 2006.
ESPÉCIE NÚMERO PERCENTUAL
Suína 10 77%
Canina 3 23%
Total 13 100%
Tabela 8: Procedimentos cirúrgicos acompanhados no Centro de Treinamento de
Cirurgia Experimental - CETREX, na área de cirurgia experimental,
durante o estágio curricular supervisionado, no período – 1º de julho de
2006 – 31 de julho de 2006.
PROCEDIMENTO NÚMERO PERCENTUAL
Adrenalectomia 1 7,7%
Ovariossalpingohisterectomia
por videolaparoscopia
2 15,4%
Raminotomia do nervo
simpático
4 30,8%
Ureteroplastia 3 23,1%
Uretrostomia e
ureteroneocistotomia
3 23,1%
Total 13 100%
8

3.1 Colelitíase
3. CASOS DE INTERESSE
3.1.1 Histologia e anatomia das vias biliares
As membranas dos hepatócitos formam os canalículos biliares, que por sua
vez se comunicam com os ductos intra e inter lobulares (Figura 1), transportando a
bile formada no fígado através do ducto hepático comum, onde a bile pode vir a
seguir dois caminhos diferentes, desembocar no duodeno através do ducto
colédoco ou ser armazenada na vesícula após passar pelo ducto cístico. A
vesícula biliar, encontrada na maioria das espécies domésticas, exceto nos
eqüinos, encontra-se fortemente aderida ao fígado por um lado do colo e parte do
corpo, se apresentado em formato de pêra. A porção que não se apresenta
fundida ao fígado possui um revestimento peritoneal (SISSON, 1986).
9

Figura 1: Representação esquemática da microestrutura de lóbulo hepático
Fonte: REECE (1996)
As vias biliares são divididas em intra e extra-hepáticas. A trama biliar
bilateral responsável pela drenagem da bile produzida pelos lobos hepáticos, de
forma independente, corresponde à via biliar intra-hepática. Já a via biliar extrahepática,
é formada a partir dos ductos hepáticos, originados pela união das
tramas biliares de ambos os lados; uma nova união dos ductos hepáticos originam
o ducto hepático comum. A comunicação da vesícula biliar com o restante da via
biliar extra-hepática ocorre através do ducto cístico, que ao se unir com o ducto
hepático comum, forma o ducto colédoco (ORTIGARA et al., 2005).
O ducto hepático comum drena a bile para o ducto biliar, também conhecido
como ducto biliar comum ou ducto colédoco, que por sua vez, segue por dentro do
omento menor por aproximadamente 5cm, entrando na parede mesentérica
duodenal. Em cães, o colédoco termina no duodeno, próximo ao ducto pancreático
menor. A abertura relacionada aos ductos pancreáticos menor e biliar, é chamada
de papila duodenal maior. Sendo importante destacar que em gatos, o ducto biliar
geralmente se junta ao ducto pancreático maior antes de entrar no duodeno
(FOSSUM et al., 2002).
Com um detalhamento mais específico da anatomia dos cães, é possível
observar a presença da vesícula biliar medialmente ao lobo quadrado hepático e
10

lateralmente ao lobo medial direito, onde se apresenta com formato piriforme
(Figura 2), que em cães de porte médio, suporta cerca de 15 ml de bile. A vesícula
é dividida em três porções, onde temos o fundo, que corresponde à porção mais
arredondada, o colo, que se trata da região mais afilada e que leva ao interior do
ducto cístico, e o corpo, ou porção média da vesícula biliar, encontrada entre o
colo e o fundo da mesma (FOSSUM et al., 2002).
3.1.2 Fisiologia da vesícula biliar
Figura 2: Fígado de cão, face visceral; endurecido in situ.
Fonte: ELLENPORT (1986)
Reece (1996) cita que a vesícula biliar tem como função o armazenamento
da bile secretada pelo fígado, para posterior utilização. Segundo Ellenport (1986c),
esse armazenamento ocorre durante o período de repouso digestivo, onde a
vesícula recebe o fluxo de bile através do ducto cístico que está ligado ao ducto
hepático; tendo assim, o fluxo biliar em ambas as direções.
A bile nada mais é que uma secreção aquosa, composta principalmente de
colesterol, ácidos biliares, bilirrubina e fosfolipídeos, elaborada pelo fígado,
apresentando funções distintas de digestão e absorção intestinal, principalmente
11

através dos sais biliares, realizando também excreção de produtos endógenos e
exógenos pouco eliminados pelos rins, como metabólitos de hormônios
esteróides e algumas enzimas (CARVALHO, 1995). Após ter sido formada,
transportada e armazenada na vesícula biliar, a bile só é liberada quando há
contração da vesícula e relaxamento do esfíncter de Oddi, que por sua vez
controla a abertura do duto biliar comum no duodeno. Este estímulo de liberação é
mediado pelo hormônio gastrointestinal colecistocinina, também conhecido como
CCK, que é secretado na presença de lipídeos e aminoácidos no intestino delgado
(REECE, 1996).
3.1.3 Colelitíase
A colelitíase, também chamada de cálculos biliares ou litíase biliar
(CRAWFORD, 2000), apresenta ocorrência rara em cães e gatos, onde os cães se
destacam por apresentarem menor casuística que os gatos (ROTHUIZEN, 2001).
Os cálculos podem ser encontrados em diferentes locais do trato biliar, como na
vesícula biliar (colecistolitíase), no ducto colédoco (coledocolitíase) ou ainda, de
forma mais rara podem estar presentes nos ductos hepáticos e lobares
(BIRCHARD et al., 1998).
Segundo Crawford (2000), os cálculos biliares podem se apresentar de
duas formas diferentes, como cálculos de colesterol ou cálculos pigmentares. Os
cálculos de colesterol (Figura 3-A) surgem quando a bile perde a capacidade de
solubilizar o colesterol, através da agregação de sais biliares hidrossolúveis e
lecitinas hidroinsolúveis, que funcionam normalmente como detergentes, em
função de uma supersaturação. Sendo assim, há impedimento da dispersão do
colesterol, fazendo com que haja nucleação em cristais sólidos de monohidratado
de colesterol. A formação de cálculos biliares de colesterol depende de alguns
fatores como altas concentrações de colesterol, hipomotilidade da vesícula biliar,
nucleação de colesterol na bile acelerada e maior quantidade de muco na vesícula
biliar aprisionando cristais, que se aglomeram em cálculos. Quando puros, os
cálculos se apresentam amarelo-pálidos e redondos a ovóides, com superfície
12

externa dura e finamente granular que, ao corte, apresenta uma paliçada
cristalina, brilhante e radiante. De acordo com a proporção de fosfatos, bilirrubina
e carbonatos presentes, os cálculos podem se apresentar com colorações
diferentes, lamelados e branco-acinzentados a negros ao corte. Quando
composição é principalmente de colesterol, são radiotransparentes, sendo que em
10 a 20% dos cálculos biliares de colesterol, há cálcio suficiente para torná-los
radiopacos.
Já os cálculos pigmentares (Figura 3-B) são misturas de sais cálcicos
insolúveis de bilirrubina não conjugada com sais de cálcio inorgânicos. Processos
infecciosos causados por agentes como a Escherichia coli, por exemplo,
aumentam a chance de se formar cálculos biliares pigmentares. São classificados
trivialmente em negros e castanhos, onde geralmente os negros são encontrados
na bile estéril da vesícula biliar e, os castanhos são encontrados em ductos intra
ou extra-hepáticos infectados. Em função dos carbonatos e fosfatos de cálcio
presentes nos cálculos pigmentares negros, 50 a 75% se apresentam radiopacos.
Já a presença de sabões de cálcio, formados por sais cálcicos de palmitato e
estearato, fazem com que os cálculos castanhos sejam radiotransparentes
(CRAWFOD, 2000).
Figura 3-A: Cálculos biliares de colesterol Figura 3-B: Cálculos biliares de pigmento
Fonte: CRAWFORD (2000) Fonte: CRAWFORD (2000)
13

3.1.4 Etiologia
Em humanos é comum a ocorrência de cálculos de colesterol em função da
dieta estabelecida. Em cães e gatos, há descrição de ocorrência de cálculos
pigmentares, de colesterol e cálculos mistos. O pequeno número de casos
relatados de colelitíase canina se deve ao fato dos cães terem baixa concentração
de colesterol na bile, existir a absorção de cálcio ionizado na vesícula biliar, o que
limita a quantidade livre na bile, além de haver falha no reconhecimento dessa
afecção. Experimentalmente, consegue-se produzir cálculos biliares pigmentares
em cães, após 6 semanas, através de uma dieta deficiente em metionina ou uma
dieta rica em colesterol e deficiente em taurina (FOSSUM et al., 2002).
Acredita-se que a formação de cálculos biliares depende da formação de um
ninho inicial, por retenção de partículas na vesícula biliar seguida de um
crescimento sustentado do colélito (cálculo biliar). Em cães e gatos a formação de
cálculos pigmentares pode estar associada à estase biliar, promovendo o acúmulo
de bile, que por sua vez é composta de mucina, que se conjuga com pigmentos
cálcicos da bilirrubina e com cristais de colesterol; ou está associada à maior
quantidade de mucina na vesícula, que age como um ninho para formar o cálculo
(BIRCHARD et al., 1998).
Outros fatores que levam à formação de cálculos pigmentares são a colecistite
e colangite, principalmente em gatos. Porém é difícil determinar se os cálculos se
formaram em função da estase biliar, inflamação ou infecção bacteriana, ou se
ocorreu o contrário, com formação inicial dos colélitos que induziram a inflamação
e infecção secundária. Algumas bactérias como a E. coli, causadoras de infecções
nos animais, têm enzimas capazes de desconjugar a bilirrubina para uma forma
menos solúvel, havendo então precipitação desse produto com o cálcio. Os
fatores dietéticos são causas improváveis para animais com dieta balanceada,
porém alguns animais podem apresentar a formação de cálculos pigmentares
quando submetidos a dietas pobres em proteínas e gorduras e ricas em
carboidratos e colesterol. A deficiência da taurina nessa dieta leva à precipitação
de ácidos biliares e formação de cálculos (BIRCHARD et al., 1998).
14

A obstrução biliar extra-hepática muitas vezes ocorre em função de
processos patológicos, que impedem o fluxo normal da bile desde sua formação,
até liberação no intestino. Muitas vezes as causas são neoplásicas, inflamatórias,
parasitárias ou congênitas (SLATTER, 1998). Neoplasias hepáticas e biliares
primárias são raras em cães, dentre elas as mais comuns são o adenoma e o
carcinoma biliar, que podem levar a complicações como ascite e colestase
(TOSTES et al., 2004). A pancreatite é uma das possíveis causas da estenose do
ducto biliar, sendo uma das mais comuns causas de obstrução extra-hepática em
cães (SLATTER, 1998). Uma obstrução biliar secundária a pancreatite ou
neoplasia é comum e animais de meia-idade a idosos (FOSSUM et al., 2002).
3.1.5 Sinais clínicos
A maior parte das colelitíases em animais é assintomática (FOSSUM et al.,
2002). Em casos de complicações em função da formação dos colélitos, como
infecção bacteriana, obstrução do ducto biliar extra-hepático, perfuração da
vesícula biliar ou dos ductos biliares ou ainda um envolvimento secundário do
fígado, podendo causar hepatite ou cirrose, há maior probabilidade do animal
apresentar sinais clínicos. Os sinais apresentados podem ser agudos, como no
caso de obstrução súbita do ducto cístico ou do ducto biliar comum, ou ainda
quando há ruptura da vesícula biliar, crônicos, persistentes ou intermitentes.
Comumente os animais apresentam como sinais clínicos icterícia, vômito,
anorexia, perda de peso e desidratação (BIRCHARD et al., 1998). Febre e dor
abdominal também são sinais presentes em animais com colelitíase (FOSSUM et
al., 2002).
3.1.6 Diagnóstico
3.1.6.1 Anamnese e exame físico
Animais que possuem cálculos biliares podem vir a apresentar histórico de
icterícia e vômitos intermitentes, podendo ter longa duração, variando de alguns
meses a anos. O exame físico muitas vezes não leva a nenhuma conclusão,
15

entretanto em alguns casos, a icterícia é visível, assim como desconforto
abdominal, hepatomegalia, febre em casos de infecção biliar bacteriana ou
peritonite septicêmica ou biliar e a distensão abdominal, que ocorre quando há
acúmulo de fluido em função de uma ruptura secundária do trato biliar. Fezes
acólicas indicam uma obstrução completa do ducto biliar (BIRCHARD et al., 1998).
3.1.6.2 Radiografia
Dificilmente se detecta um cálculo através de um exame radiográfico. O uso
da radiografia contrastada não se mostra efetiva em casos de colestase, já que
esta impede a excreção normal dos meios de contraste. Todavia, na ausência de
colestase extra-hepática, a colecistografia pode ser utilizada, sendo possível
visualizar os cálculos através dos defeitos de preenchimento na vesícula biliar
(ROTHUIZEN, 2001).
Mesmo não sendo possível diagnosticar de forma direta a presença de
colélitos, outros achados radiográficos podem indicar que há alterações em função
de uma obstrução, como por exemplo, a distensão da vesícula biliar, uma
colecistite enfisematosa por aumento da densidade de gás na vesícula biliar e
peritonite, onde no exame há perda dos detalhes abdominais (BIRCHARD et al.,
1998).
3.1.6.3 Ultra-sonografia
Apesar de serem raramente radiodensos, os cálculos biliares podem ser
detectados por meio de ultra-som (FOSSUM et al., 2002). Independente da
radiopacidade, colélitos podem ser identificados na ultra-sonografia por se
apresentarem com sombreamento acústico, o que os diferenciam das massas
murais e com movimento da densidade de acordo com mudança na posição do
animal; além disso, algumas alterações secundárias indicam a presença de
cálculos, tais como distensão da vesícula biliar e ductos biliares, espessamento do
trato biliar associado à inflamação, acúmulo de fluido abdominal por ruptura da
vesícula e ausência da vesícula. O espessamento da bile ou acúmulo da mesma
16

pode vir a indicar uma estase biliar, porém pode ocorrer em animais doentes e
anoréxicos (BIRCHARD et al., 1998).
3.1.6.4 Achados laboratoriais
Nem sempre presentes, anormalidades podem aparecer em animais com
sintomatologia de colelitíase com obstrução pós-hepática. Um aumento da
fosfatase alcalina sérica e hiperbilirrubinemia caracterizam uma obstrução póshepática
parcial ou completa, ocorrendo também em casos de colangite
ascendente. É possível observar hipercolesterolemia secundária à obstrução,
principalmente em gatos. A urinálise pode ser de grande valia por apresentar
bilirrubinúria antes da hiperbilirrubinemia, o que leva a um diagnóstico mais
precoce (FOSSUM et al., 2002). Geralmente, em casos de colestase severa, há
danos secundários nos hepatócitos, o que pode ser observado com um aumento
da atividade sérica da transaminase glutâmico-pirúvica - TGP (BIRCHARD et al.,
1998).
Em casos de colangite, colecistite bacteriana ou ruptura da vesícula biliar,
percebe-se neutrofilia com desvio à esquerda no hemograma do animal afetado
(BIRCHARD et al., 1998).
3.1.6.5 Laparotomia
Na maioria dos casos, o diagnóstico definitivo só é dado com a laparotomia
exploratória, onde geralmente confirma-se a presença dos colélitos, e a bile se
mostra viscosa, com coloração negra-esverdeada, contendo um material saibroso
semelhante à areia. A partir da laparotomia exploratória podem ser realizados
procedimentos terapêuticos como avaliação da desobstrução da vesícula e ductos
biliares, remoção dos colélitos para análise química e cultura bacteriana,
identificação e reparo de ruptura de vesícula biliar além de coleta de material
como fígado, vesícula e bile para exames histopatológicos (BIRCHARD et al.,
1998).
17

3.1.7 Tratamento
3.1.7.1 Tratamento clínico
A reversão de colélitos pigmentares já foi demonstrada em um experimento
onde a formação de cálculos pigmentares foi induzida através de uma dieta pobre
em metionina, durante um período de seis semanas, em dez cães. Ao retornarem
à alimentação normal, 50% dos cães apresentaram recuperação da colelitíase,
sendo então demonstrado que o tratamento clínico de cálculos pigmentares não
deve ser descartado (DAWES et al., 1989).
Cohen (1988) demonstrou experimentalmente o uso de ácidos biliares para
a dissolução de colélitos de colesterol em cães, onde comparou a eficiência da
administração de ácidos biliares hidrofóbicos e hidrofílicos, sendo que o ácido
biliar hidrofóbico, ácido quenodesoxicólico, se mostrou mais eficiente que o ácido
ursodesoxicólico, hidrofílico, na dissolução de cálculos biliares de colesterol.
O tratamento clínico com ácido quenodesoxicólico, com o intuito de reduzir
a saturação de colesterol e aumentar a reserva de ácidos biliares, não é
recomendado para cães, o contrário do que é feito em humanos. Isso se deve ao
fato de que há conversão desse fármaco em ácido litocólico por ação da flora
intestinal dos cães, chegando então a um produto hepatotóxico. Já o uso do ácido
ursodesoxicólico é seguro por não possuir esse efeito colateral, tendo efeito
benéfico na administração oral por potencializar o fluxo biliar que, na ausência de
uma obstrução completa do ducto biliar, ajuda a prevenir infecção e a remover
cálculos (ROTHUIZEN, 2001).
A administração de antibióticos apropriados em casos de colecistite, que
muitas vezes está associada à colelitíase, é recomendada (FOSSUM et al., 2002).
Martin (1998) cita que a penicilina pode não apresentar resultado favorável
na prevenção de infecções do fígado e trato biliar, já os aminoglicosídeos podem
ser utilizados, apresentando bons resultados, em casos de peritonite
principalmente, porém são excretados na bile em baixa quantidade.
18

3.1.7.2 Tratamento cirúrgico
3.1.7.2.1 Pré-operatório
A obstrução biliar pode ocorrer em função da formação de colélitos, que
acarreta a longo prazo má absorção de vitamina K, com conseqüente deficiência
dos fatores de coagulação VII, IX e X (FOSSUM et al., 2002). Se detectada uma
coagulopatia, o que é pouco provável de ocorrer, institui-se o tratamento
administrando vitamina K na dose de 1 a 2 mg/kg de peso corporal, cada 8 horas,
por via subcutânea, até a normalização, cerca de 12 horas após a administração
(MARTIN, 1998).
Preconiza-se o uso de antibioticoterapia no pré-operatório em casos de
obstruções biliares. Geralmente utiliza-se por via intravenosa fármacos ativos
contra agentes entéricos comumente encontrados na moléstia biliar obstrutiva,
como a Escherichia coli, Klebsiella, Proteus, Streptococcus, Pseudomonas ou
Clostridium spp.. Sendo assim, é recomendado o uso das cefalosporinas, que
apresentam bons resultados clínicos, quando em elevadas concentrações
plasmáticas e teciduais, já que possuem uma atividade de amplo espectro
(MARTIN, 1996).
3.1.7.2.2 Colecistotomia
Pouco realizada, a colecistotomia é indicada para remoção de alguns
colélitos (FOSSUM et al., 2002). Quando não há indicação de colecistectomia, a
colecistotomia é indicada para a canulação do ducto biliar, para confirmação da
permeabilidade, ou ainda, quando há indicação para retirada de cálculos que não
tenham provocado alterações inflamatórias graves na parede da vesícula biliar
(MARTIN, 1998).
A técnica cirúrgica consiste em, após proteger a área circundante da
vesícula biliar com tampões de laparotomia umedecidos e estéreis, fazer suturas
de fixação na vesícula biliar com o intuito de facilitar a manipulação e impedir que
o conteúdo derrame. Deve ser feita uma incisão no fundo da vesícula biliar,
removendo posteriormente o conteúdo, que deve ser separado para exame
19

laboratorial específico, lavando em seguida a vesícula com solução fisiológica
0,9% estéril aquecida. Através do ducto biliar comum deve ser passado um catéter
macio, lavando-o com um jato para garantir que não haja obstrução. A incisão
deve ser fechada com sutura inversora de camadas, usando fio absorvível de 3-0
a 5-0, reduzindo a probabilidade do material de sutura servir de ninho para a
formação de cálculos (FOSSUM et al., 2002). Martin (1998) indica o uso de pontos
interrompidos com material absorvível, num padrão Lembert, considerando que
antes da oclusão é importante obter biópsia da parede vesical para avaliação
histopatológica e realização de cultura bacteriana.
3.1.7.2.3 Colecistectomia
A colecistectomia é indicada em casos de doenças severas da vesícula
biliar, em casos de danos secundários a traumatismos, colecistite severa,
neoplasias e danos irreparáveis ao ducto cístico. Nesta manobra cirúrgica têm-se
o objetivo de minimizar o traumatismo nos tecidos circundantes, impedindo que
caia bile na cavidade peritoneal, evitando também danos para o sistema ductal
biliar (BIRCHARD et al., 1998).
Afecções como a colelitíase e colecistite são tratadas de forma mais
eficiente com a colecistectomia (MARTIN, 1998). Fossum et al. (2002) relatam que
a colecistectomia é o tratamento cirúrgico de escolha em cães com sinais clínicos
secundários a colelitíase.
A manobra cirúrgica descrita por Bichard et al. (1998) é a de isolamento da
vesícula através de tampões de laparotomia úmidos, dissecando a vesícula biliar a
partir do fundo, podendo ser usada pinça Babcock ou suturas de fixação para
manipulação da vesícula durante a dissecção. O ducto e a artéria cística devem
ser pinçados e duplamente ligados com suturas absorvíveis ou grampos
hemostáticos, sendo então seccionados na região imediatamente distal à pinça,
removendo-se a pinça e a vesícula biliar (Figura 4), que deve ser enviada para
cultura e histopatologia, sendo a incisão abdominal fechada de maneira rotineira.
Bichard et al. (1998) ainda recomendam a colocação de um dreno na área da
20

vesícula biliar incisada, saindo da parede abdominal, em casos de vazamento
biliar ou outra contaminação durante a cirurgia.
É importante identificar o ducto biliar comum para evitar que seja lesado,
podendo ser usada uma cânula neste ducto, introduzida a partir da papila
duodenal, em caso de necessidade (FOSSUM et al., 2002)
Figura 4: Colecistectomia. A. Exposição da vesícula biliar com incisão no peritôneo visceral ao
longo da junção da vesícula e do fígado. B. Identificação do ducto biliar comum, que
pode ser canulado através da papila duodenal, para melhor proteção. C. Pinçamento e
ligamento duplo do ducto cístico e artéria cística.
Fonte: FOSSUM et al. (2002)
A colecistectomia também pode ser realizada por videolaparoscopia, sendo
uma opção de tratamento cirúrgico em casos de colelitíase, colecistite ou traumas
na vesícula biliar que tenha ocorrido extravasamento de bile (UCHÔA, 2002). A
técnica videolaparoscópica apresenta a vantagem de haver menor exposição das
vísceras abdominais, reduzindo o estresse cirúrgico, além de se mostrar menos
cruenta, ocorrendo menor trauma para o animal (GOMEZ et al., 1996).
Cães submetidos à colecistectomia têm apresentado algumas complicações,
entre elas, as mais comuns são a laceração da vesícula e/ou do ducto cístico e
sua avulsão do ducto biliar comum, hemorragia e peritonite biliar causada pelo
21

extravasamento de bile para a cavidade peritoneal, que causa desconforto e dor
para o animal (SILVA et al., 2004)
3.1.7.2.3 Coledocotomia
Quando o ducto biliar se apresenta dilatado de forma acentuada, como em
casos de obstrução crônica, a incisão direta do ducto pode ser realizada,
permitindo a remoção da obstrução. Em casos de coledocolitíase, primeiramente
tenta-se remover o cálculo através de lavagem com jato do ducto biliar comum,
após a introdução de um cateter por enterotomia ou colecistotomia. Porém, em
obstrução extraluminal ou estenose ductal, realizam-se técnicas de desvio biliar.
A coledocotomia deve ser fechada sobre uma sonda através de suturas
interrompidas simples, usando uma agulha afilada pequena e fio absorvível. A
sonda pode ser retirada no término da sutura. Em casos de obstruções que levem
à distensão do ducto biliar, a parede do ducto se torna mais fina, o que dificulta o
controle de vazamento que possa vir a ocorrer por perfuração com agulha ou
incisões. As tentativas de suturar a parede distendida podem piorar o vazamento
biliar (MARTIN, 1996).
3.1.7.2.4 Anastomose biliar-intestinal
Esta manobra cirúrgica tem como intuito principal redirecionar o fluxo biliar
em casos de obstrução na junção coledocoduodenal, sendo recomendada por
Martin (1996) a anastomose da vesícula biliar com o duodeno, em função da maior
estabilidade do segundo dentro da cavidade peritoneal, além de oferecer menor
tensão pós-operatória na linha de incisão anastomótica. O animal deve estar em
jejum por mais de 24 horas para minimizar a chance de extravasamento de
conteúdo intestinal para a cavidade peritoneal. A vesícula biliar deve ser
dissecada a partir do fundo, aproximando-a do duodeno, onde devem ser feitas
suturas de sustentação através do colo da vesícula e da borda antimesentérica da
alça, permitindo uma longa incisão na vesícula biliar, assegurando uma melhor
drenagem do conteúdo intestinal que reflui no pós-operatório. A bile deve ser
removida da vesícula, onde se faz um incisão de tamanho variável, de acordo com
22

o porte do animal, retirando resíduo biliar com auxílio de uma gaze. Na borda
antimesentérica é retirado um pedaço elíptico da mucosa duodenal. A superfície
das mucosas duodenal e vesical devem ser suturadas com fio absorvível em um
padrão simples contínuo, preocupando-se com a penetração da sutura na
submucosa e na serosa de ambos os órgãos para maior sustentação (Figura 5). A
integridade da anastomose pode ser verificada ao introduzir solução fisiológica
0,9% na luz duodenal (MARTIN, 1996).
Figura 5: Anastomose biliar-intestinal. A. Aproximação da vesícula biliar e da alça intestinal com
uso de suturas de sustentação. B. Sutura da mucosa da vesícula biliar com a mucosa
duodenal. C. Aproximação das superfícies serosas ao redor da anastomose.
Fonte: MARTIN (1996)
A colecistoduodenostomia é o tratamento escolhido para desvio do fluxo
biliar quando a vesícula se encontra íntegra e, ocorre obstrução do ducto colédoco
seguido de ruptura do mesmo. A sutura do ducto pode levar à estenose parcial ou
completa no local traumatizado, podendo ocorrer também drenagem da bile pela
linha de sutura, o que torna o desvio do fluxo biliar a melhor alternativa cirúrgica
para estes casos (LINS et al., 2004).
23

Fossum et al. (2002) recomendam a colecistojejunostomia em cães e gatos
ao invés da colecistoduodenostomia, pelo simples fato de que estas espécies
apresentam um ducto biliar comum reduzido, tornando difícil a anastomose da
vesícula com o duodeno.
3.1.8 Pós-operatório
É importante que seja mantida a fluidoterapia até que o animal consiga se
hidratar normalmente por via oral. Os estados eletrolíticos e ácido-básico devem
ser avaliados e corrigidos. O uso de antibióticos deve permanecer por 7 a 10 dias
em casos de colecistite ou quando há vazamento biliar durante ou depois da
cirurgia. Em caso de extravasamento de bile para a cavidade peritoneal,
recomenda-se o uso de analgésicos como a oximorfina e o butorfanol para aliviar
a dor e o desconforto do animal (FOSSUM et al., 2002).
3.1.9 Relato de caso e discussão
Foi encaminhado para o Centro Veterinário Asa Sul, um cão macho da raça
Pinscher, de cor marrom, pesando 1,5 kg, com 5 anos de idade, apresentando
queixas de forte dor abdominal, prostração, anorexia, urina com coloração
intensamente amarelada e fezes muito escurecidas. Foi realizado exame clínico,
onde o animal apresentava temperatura corporal normal, mucosas róseas,
hidratação normal, linfonodos palpáveis com tamanhos normais, sendo também
possível confirmar o quadro de dor abdominal intensa. Ao analisar o histórico do
paciente, percebeu-se que o mesmo teve pancreatite três vezes anteriormente,
em um intervalo de dois anos, onde sempre recebeu o tratamento adequado e
indicado. A suspeita de pancreatite é levantada quando o animal tem sinais de
depressão, anorexia e dor abdominal (BIRCHARD et al., 1998), o que condiz com
os sinais clínicos apresentados pelo cão em questão, que associados ao histórico,
levou a crer que poderia se tratar de um quadro de pancreatite, sendo então
solicitados exames complementares.
O hemograma do animal apresentou todos os valores normais, porém a
bioquímica sanguínea demonstrou TGP = 81,9 U/I, sendo 10 a 40 U/l o valor de
24

eferência para cão adulto e, amilase = 846,0 U/I, tendo o valor de referência para
cão adulto =185 a 750 U/l. Os achados laboratoriais da pancreatite incluem
elevação das concentrações séricas de enzimas pancreáticas, dentre elas a
amilase. O aumento das atividades das enzimas hepáticas reflete uma lesão
hepatocelular, como resultado de isquemia hepática ou exposição do fígado a
altas concentrações de produtos tóxicos entregues no sangue portal pelo
pâncreas (WILLIAMS, 2001).
O cão foi submetido a exame ultra-sonográfico no mesmo dia que apresentou
os sinais clínicos, para melhor investigação do caso, sendo então detectado
através deste, alteração no fígado, que se apresentava aumentado de tamanho,
com parênquima hiperecogênico e vasos dilatados. A vesícula biliar foi visualizada
moderadamente distendida, com conteúdo denso (lama biliar) e presença de
estrutura aderida na parede, levando então à suspeita de hepatopatia crônica em
função de uma neoplasia de vesícula biliar. Segundo a literatura, tumores
primários e metastáticos constituem uma causa significativa de hepatopatias em
cães e gatos. Além disto, a pancreatite na forma fibrosante crônica pode resultar
em obstrução do ducto biliar comum, levando então a hepatopatia (BIRCHARD et
al., 1998).
Diante do quadro clínico e dos exames complementares, o animal foi
encaminhado para cirurgia, para realização de colecistectomia por
videolaparoscopia, com o intuito de impedir a evolução da neoplasia suspeita.
Após análise clínica pelo cirurgião, chegou-se à conclusão de que não seria
possível a realização da videolaparoscopia, em função do porte do animal, sendo
então indicada a colecistectomia por laparotomia, pois segundo Fossum et al.
(2002), a colecistectomia é indicada em casos de neoplasias primárias da vesícula
biliar.
Apesar da literatura recomendar jejum alimentar de 24 horas e hídrico de 12
horas antes da cirurgia (MARTIN, 1996), foi indicado para o animal jejum alimentar
de 12 horas e hídrico de 6 horas, a fim de evitar um estresse maior para o mesmo.
Uma semana após o início dos sinais clínicos, com jejum estabelecido, o animal
foi preparado para cirurgia, onde foi feita tricotomia ampla da região tóraco-lombar
25

ventral e lateral esquerda. A veia cefálica direita do animal foi canulada com
cateter nº 24G, sendo então mantida fluidoterapia com solução fisiológica 0,9 %. A
acepromazina 1 foi o tranqulizante pré-anestésico de eleição, na dose de 0,1 mg/kg
via intravenosa; a indução anestésica foi feita com propofol 2 via intravenosa, na
dose de 5mg/kg, sendo este anestésico classificado como não barbitúrico, de
depuração e distribuição rápida, sendo indicado para indução e manutenção da
anestesia segundo Fantoni (2002). Com o uso de um traqueotubo nº 4, o animal
foi entubado, iniciando assim a anestesia inalatória com isoflurano 3 , anestésico
indicado por não causar dano celular, não sendo então hepatotóxico (FANTONI,
2002). Durante toda a cirurgia a anestesia foi mantida com isoflurano, utilizando-se
no total 7 mL do fármaco durante todo o procedimento.
Foi feita anti-sepsia prévia com uso de povidine degermante e álcool iodado e
logo em seguida, foi realizada anti-sepsia definitiva com os mesmos produtos;
colocando os panos de campo estéreis sobre a superfície do animal, protegendo a
área cirúrgica. Com o uso de um bisturi com lâmina nº 23, foi feita uma incisão de
pele e tecido subcutâneo em L invertido na região tóraco-lombar lateral esquerda,
abrangendo uma área triangular de 8 cm². Com a tesoura Metzenbaum, o músculo
grande dorsal e oblíquo externo do abdômen foram seccionados, chegando à
cavidade abdominal. A 13ª costela foi afastada cranialmente para melhor
visualização e manipulação do fígado, onde o processo papilar e o lobo lateral
direito do mesmo foram deslocados crânio-lateralmente expondo a vesícula biliar,
que se apresentou bastante distendida.
Após identificação das vias biliares extra-hepáticas, inclusive do ducto
colédoco, o fundo da vesícula biliar foi fixado com pinça Halstead e levemente
tracionado, e com tesoura Metzenbaun, a vesícula começou a ser separada do
fígado por avulsão, a partir do fundo, em direção ao colo, assim como recomenda
Bichard et al. (1998). Esse procedimento foi realizado com muita cautela, em
função da fragilidade apresentada pela parede da vesícula biliar, onde qualquer
dano pode levar ao extravasamento da bile, que por sua vez pode vir a causar
peritonite, gerando assim desconforto e complicações indesejáveis para o animal
(FOSSUM et al., 2002).
26

Após dissecação completa da vesícula, encontrando-se esta totalmente
separada do fígado, foi possível visualizar o ducto e artéria cística, que foram
pinçados duplamente com pinças Halstead. Com indicado por Bichard et al.
(1998), utilizou-se fios absorvíveis para os procedimentos realizados nas vias
biliares extra-hepáticas, ligando então duplamente o ducto e artéria cística com fio
poliglatina 910 4 , número 4-0 (Figura 6), logo abaixo da pinça mais distal à
vesícula, seccionando-se em seguida o ducto e artéria cística, entre as duas
pinças, retirando-se a vesícula biliar íntegra com uma porção do ducto cístico
pinçado, seguindo a conduta citada por Fossum et al. (2002).
Figura 6: Setas indicando vesícula biliar ao centro, totalmente separada do fígado, sendo
tracionada para melhor exposição, demonstrando também a dupla ligadura no ducto
cístico. Procedimento realizado em cão durante o estágio supervisionado no período de
24 de junho a 01 de setembro de 2006.
Inicialmente, o intuito era seguir a recomendação de Fossum et al. (2002) de
se canular com um cateter e lavar o ducto colédoco a partir da papila duodenal,
através de uma enterotomia, porém considerando que o exame ultra-sonográfico
não indicou alteração no colédoco, e durante a cirurgia, o mesmo apresentava-se
27

normal, e o porte do animal e suas estruturas internas eram muito pequenas para
tal procedimento, a canulação foi dispensada.
Após retirada da vesícula, a pinça Halstead foi liberada, confirmando que as
ligaduras foram feitas de forma correta, sem extravasamento nenhum de bile, e os
fios absorvíveis fixados no ducto cístico foram cortados na base dos nós. O fígado
foi liberado e as demais vísceras foram reposicionadas. Iniciou-se o procedimento
de fechamento da cavidade, voltando a 13ª costela esquerda para seu local de
origem, suturando sua porção mais distal na 12ª costela esquerda para melhor
fixação, através de sutura simples interrompida com fio de náilon 5 número 3-0. Os
músculos grande dorsal e oblíquo externo foram suturados com fio de náilon 5
número 3-0 com sutura simples interrompida, o tecido subcutâneo foi aproximado
com sutura intradérmica em zigue-zague com fio de náilon 5 número 3-0. Por fim,
foi realizada dermorrafia, com sutura simples separada, usando fio de náilon 5
número 3-0.
Após o término do procedimento cirúrgico, a vesícula biliar retirada foi
manipulada, realizando uma incisão no corpo da mesma, expondo sua cavidade,
retirando-se a bile e cálculos de coloração enegrecida, de formas irregulares e
tamanhos variando entre 0,2cm e 0,6cm (Figura 7). Segundo Crawford (2000),
cálculos biliares negros correspondem aos cálculos biliares pigmentares, sendo
estes misturas de sais cálcicos insolúveis de bilirrubina não conjugada com sais
de cálcio inorgânicos. A vesícula biliar foi examinada de forma minuciosa, não
sendo encontrada nenhuma alteração que caracterizasse neoplasia, dispensando
envio para exame histopatológico como recomendado por Martin (1998).
28

Figura 7: Colélitos indicados pelas setas, e vesícula biliar indicada pela ponta da tesoura.
Colecistectomia realizada em cão durante o estágio supervisionado no período de 24 de
junho a 01 de setembro de 2006.
O animal permaneceu internado por quatro dias após a cirurgia, com troca
diária do curativo, onde era feita limpeza na ferida cirúrgica com solução fisiológica
0,9%, sendo esta recoberta posteriormente com gaze e atadura estéreis, sendo
administrado via oral 13 mg/kg de Carduus marianus 6 suspensão, uma vez ao dia,
que age como estabilizador das membranas dos hepatócitos, resguardando sua
integridade e, assim, a função fisiológica do fígado (FERENCI, 1989). Utilizou-se
também metronidazol 7 , quimioterápico que possue amplo espectro de ação contra
bactérias Gram-negativas, Gram-positivas e alguns protozoários e fungos,
apresentando também a vantagem de raramente ocorrer resistência bacteriana
quando usado (GÓRNIAK, 2002), sendo então administrado duas vezes ao dia, na
dose de 30 mg/kg, para antibioticoterapia profilática (VIANA, 2003) e cloridrato de
tramadol 8, via subcutânea, duas vezes ao dia, na dose de 2 mg/kg, já que estudos
demonstraram analgesia pós-operatória satisfatória no tratamento da dor aguda
causada por cirurgias abdominais, sem apresentar efeitos colaterais importantes
(CASSU & LUNA, 2003). No quinto dia pós-cirúrgico, o animal recebeu alta, com
recomendação médica de troca diária do curativo, continuando a medicação que
estava sendo usada por mais três dias, exceto o cloridrato de tramadol 8 . No oitavo
dia pós-cirúrgico, foram retirados os pontos de pele e o animal foi reexaminado
29

apresentando excelente estado de saúde, com apetite normalizado, sem queixas
de dores abdominais.
Através do caso clínico acompanhado, foi possível observar a dificuldade em
se diagnosticar esse tipo de afecção. Porém, o animal apresentou um quadro
típico, com pancreatite crônica, capaz de desenvolver a forma fibrosante,
associada ao quadro de hepatopatia diagnosticado nos exames de sangue e
ultra-sonográfico. Como na maioria dos casos, o diagnóstico definitivo foi dado
com a laparotomia exploratória, confirmando a presença de colélitos e revertendo
quadro clínico do paciente, através da colecistectomia.
30

3.2 Ovariossalpingohisterectomia por videolaparoscopia
3.2.1 Anatomia e fisiologia do aparelho reprodutor feminino
Os órgãos genitais femininos (Figura 8) são compostos por dois ovários,
correspondentes às glândulas reprodutivas essenciais; as tubas uterinas,
responsáveis pela condução dos óvulos para o útero para posterior fertilização; o
útero, onde há desenvolvimento do óvulo; a vagina, canal o qual o feto é expelido
do útero; o vestíbulo vaginal, onde há abertura da uretra; a vulva; o clitóris,
homólogo do pênis; e por fim as glândulas mamárias, que apesar de se tratarem
de glândulas da pele, estão intimamente associadas ao funcionamento dos órgãos
reprodutivos da fêmea (ELLENPORT, 1986-b).
Figura 8: Aparelho reprodutor da cadela. Ilustração baseada em Bojrab (1996).
Nas cadelas, os ovários se apresentam pequenos, ovais, alongados e
achatados, localizando-se normalmente a uma curta distância caudalmente ao rim,
podendo algumas vezes estar em contato com o mesmo. O ovário direito se
localiza entre a parte direita do duodeno e a parede abdominal lateral. Já o ovário
esquerdo é encontrado próximo ao baço. Ainda nas cadelas, é possível perceber
31

que cada ovário está completamente oculto pela bolsa ovariana. Essa bolsa
ovariana é constituída de duas camadas, uma de gordura e outra de músculo liso,
que se continuam até o corno uterino, formando o mesossalpinge e o ligamento
próprio do ovário. Os ovários podem ainda apresentar folículos projetantes na
superfície (ELLENPORT, 1986-b).
As tubas uterinas das cadelas, também chamadas de trompas de Fallópio,
são pequenas e inicialmente passam cranialmente na parte lateral da bolsa
ovariana, seguindo então caudalmente na parte medial da bolsa. Trata-se de uma
parte do mesossalpinge, se apresentando ligeiramente flexíveis, com uma região
fimbriada localizada na bolsa ovariana, havendo uma abertura abdominal um tanto
grande, com o óstio uterino pequeno (ELLENPORT, 1986-a).
O útero nos carnívoros tem um corpo pequeno com longos e estreitos
cornos, que podem chegar a 15cm de comprimento. Os cornos são de diâmetro
uniforme, situando-se inteiramente dentro do abdome. A divergência do corpo
ocorre em formato de V, seguindo no sentido de cada rim, apresentando as partes
caudais unidas pelo peritôneo. O colo do útero é curto, apresentando uma
espessa camada muscular. Na região dorsal não se percebe nenhuma delimitação
entre útero e vagina, porém o cérvix do útero se mostra mais espesso que a
vagina, apresentando uma projeção cilíndrica. No útero ainda encontramos os
ligamentos largos, apresentando muita gordura e algum músculo liso, e os
ligamentos redondos localizados na borda livre das pregas emitidas da face lateral
dos ligamentos largos, apresentam também músculo liso e gordura na sua
formação. Cada ligamento passa através do canal inguinal envolto por uma bolsa
peritoneal, o chamado processo vaginal. Ainda existe uma prega ligamentosa,
conhecida como ligamento suspensório, que se estende cranialmente da bolsa
ovariana, lateralmente ao rim e se insere na parede abdominal (ELLENPORT,
1986-a).
As artérias e veias uterinas são responsáveis pelo suprimento de sangue
necessário para o útero. Já os ovários são irrigados pelos vasos ovarianos, que
percorrem um trajeto tortuoso dentro do pedículo que abrange o ligamento
suspensório, onde as artérias ovarianas se originam da aorta, a veia ovariana
32

esquerda drena na veia renal esquerda e a veia direita drena na veia cava caudal
(FOSSUM, 2002).
O trato genital das cadelas possui funções reprodutivas, com produção de
óvulos e promoção de um ambiente adequado para o desenvolvimento da prole,
havendo também complexas alterações hormonais e teciduais (REECE, 1996).
Dentre os principais hormônios produzidos pelos ovários, o estrógeno tem
como principal função induzir a proliferação celular e o crescimento dos tecidos
relacionados à reprodução. O corpo lúteo presente no ovário produz progesterona,
que possui atividade relacionada com o estrógeno, promovendo o crescimento de
glândulas endometriais, estimulando a atividade secretória do oviduto e glândulas
endometriais, fornecendo nutrientes necessários para o desenvolvimento do
embrião antes da implantação, promovendo o desenvolvimento da glândula
mamária, prevenindo a contração do útero durante a prenhez e regulando a
secreção de gonadotrofinas (REECE, 1996).
3.2.2 Ovariossalpingohisterectomia (OSH)
O termo ovariossalpingohisterectomia trata da retirada cirúrgica dos ovários,
parte do útero, além das salpinges (que deriva do grego sálpinx, trompa). O
prefixo “ovariosalpingohister” indica os órgãos abordados no procedimento
cirúrgico, ou seja, os ovários, as trompas uterinas e o útero, já o sufixo “ectomia”
está relacionado com a manobra cirúrgica realizada, que no caso é a extirpação
(GONÇALVES et al. 2004).
A OSH, também conhecida como castração, é uma cirurgia reprodutiva que
tem como intuito limitar a reprodução, evitar ou tratar tumores influenciados por
hormônios reprodutivos, como os tumores mamários, já que estrógenos
produzidos pelos ovários exercem um papel na etiologia desta afecção,
observando que se a cirurgia for realizada antes do primeiro cio, reduz para 0,5 %
a probabilidade de se desenvolver neoplasia, se realizada entre o primeiro e o
segundo cio esse risco já passa a ser de 8%, e após dois ou mais ciclos estrais, o
risco sobe para 26% (FOSSUM, 2002). Além disso, a castração é indicada para
tratamento de uteropatias como a piometra, torção uterina, hiperplasia do
33

endométrio, ruptura uterina e neoplasia uterina, sendo também o procedimento
cirúrgico indicado para fêmeas epiléticas e diabéticas com a intenção de impedir a
influência dos hormônios sobre as medicações utilizadas nestes casos
(FINGLAND, 1996).
Em estudo realizado por Gonçalves et al. (2004), de 138 casos de indicação
para OSH, 68 eram encaminhamentos para cirurgia de esterilização eletiva, onde
o intuito dos proprietários era de suprimir a capacidade reprodutiva do seus
animais.
3.2.3 Técnicas Cirúrgicas
Muitas técnicas cirúrgicas de esterilização de cães e gatos têm sido
descritas, apresentando suas vantagens e desvantagens, adequando-se assim a
cada paciente de acordo com a situação apresentada, como a disponibilidade de
materiais, o estado de saúde e porte do animal. Dentre as técnicas descritas,
temos a tradicional OSH por laparotomia, tanto pela linha alba como pelo flanco
lateral, e a por laparoscopia (HOWE, 2006).
A laparoscopia tem sido cada vez mais indicada para doenças ovarianas e
uterinas, assim como também para OSH (FREEMAN, 1999).
3.2.4 OSH videolaparoscópica
Atualmente observa-se o uso crescente de procedimentos não invasivos na
Medicina com o objetivo de se reduzir os inconvenientes existentes nas técnicas
convencionais. Visando os benefícios existentes, a Medicina Veterinária tem
usado a laparoscopia em diferentes procedimentos e, apesar de poucos estudos
descreverem o uso da cirurgia laparoscópica na veterinária, bons resultados têm
sido observados. A primeira OSH via laparoscópica em cadela foi realizada e
descrita em 1994, por Siegl et al., mostrando-se adequada (BRUN et al., 1999).
Os procedimentos laparoscópicos têm demonstrado poucas desvantagens,
onde a principal delas é o alto custo dos equipamentos, que acaba por refletir no
custo das cirurgias, além da exigência de um treinamento específico pelo cirurgião
para adequada realização do procedimento (BARAÚNA, 2001).
34

São várias as vantagens apresentadas pela videolaparoscopia, quando
comparada com a laparotomia, onde se destaca a aparência estética, custos
hospitalares, dor pós-operatória, complicações no trans e pós-operatório e período
de hospitalização (BRUN et al., 1999). Outra vantagem apresentada em estudos
experimentais com laparoscopia é a redução na formação de aderências após o
procedimento cirúrgico, quando comparada com a laparotomia (GUTT et al.,
2005).
3.2.4.1 Equipamentos e instrumentais
Os equipamentos necessários para a realização de procedimentos
laparoscópicos são poucos, porém exigem que o cirurgião tenha domínio sobre os
mesmos, a fim de impedir que ocorram problemas (MENCAGLIA; WATTIEZ,
2000).
Na videolaparoscopia existem dois tipos de equipamentos, sendo as peças
básicas usadas para qualquer tipo de abordagem cirúrgica laparoscópica; e os
equipamentos específicos para diferentes abordagens, apresentando desenhos
específicos (CERVANTES; PATINÕ, 1997).
Os equipamentos básicos são o sistema óptico, insuflador, a fonte de gás,
eletrocautério, aparelho de irrigação e o instrumental.
O sistema óptico (Figura 9) é composto de uma fonte de luz fria, fibra
óptica, laparoscópico, câmera de vídeo, monitor de TV e vídeo gravador
(SCHUTTE; YARMUCH, 2002).
A fonte de luz é classificada como fria por estar separada do cabo de
transmissão da luz por uma proteção, transferindo o mínimo de calor
(CERVANTES; PATINÕ, 1997). Dentre as várias fontes de luz usadas na
videolaparoscopia, as mais comuns são as de lâmpada halógena, de 150 watts, e
de xenônio, de 300 watts, sendo que a segunda oferece melhor qualidade da
imagem apresentada. Na videolaparoscopia a qualidade da câmera determina a
sensibilidade à luz, sendo que câmeras de alta qualidade exigem menos luz
(RICHTER, 2001).
35

A fibra óptica é constituída por um feixe de grande quantidade de fibras de
vidro, responsável por conduzir a luz da fonte até a extremidade do laparoscópico,
sendo que em um condutor de 2 metros de comprimento, apenas um terço da luz
incidente inicial chega até a extremidade do condutor (SCHUTTE; YARMUCH,
2002).
Os laparoscópios se apresentam na forma rígida ou flexível. Os flexíveis
têm seu uso na endoscopia gastrintestinal e exames do aparelho respiratório, já os
rígidos são usados em cirurgias abdominais, torácicas e articulares (FREEMAN,
1999). O diâmetro externo dos laparoscópios varia de 2,7 a 10mm, sendo que
quanto maior o diâmetro, menor a exigência de luz. Apesar de alguns cirurgiões se
sentirem desconfortáveis usando uma óptica de 10mm em cães pequenos e
gatos, não existe nenhuma restrição. A angulação dos laparoscópios varia entre 0
e 70º (RICHTER, 2001).
A câmera de vídeo foi o que impulsionou a cirurgia videolaparoscópica,
sendo esta capaz de transferir para tela da TV a imagem captada pelo
laparoscópio, permitindo uma visão melhor durante a cirurgia. É composta
basicamente por um sensor de vídeo, que se liga ao monitor, e pelo cabeçote que
se acopla à óptica (CERVANTES; PATINÕ, 1997).
O monitor utilizado pode ser um tubo de imagem de alta resolução, ou uma
TV de alta resolução, que são acoplados a um vídeo gravador permitindo
documentar todo o procedimento (SCHUTTE; YARMUCH, 2002).
O insuflador e sua fonte de gás (Figura 9) são usados com o intuito de
insuflar gás para o interior do campo operatório, para que haja melhor exposição e
melhor comodidade no procedimento (CERVANTES; PATINÕ, 1997). No caso da
OSH, o insuflador é o equipamento usado para se criar o pneumoperitôneo,
através da injeção de gás na cavidade abdominal, conectado por uma mangueira
de alta pressão a uma fonte de gás. Uma das principais características dos
insufladores é o sensor de pressão intra-abdominal que detém automaticamente o
fluxo de gás ao se atingir a pressão desejada, mantendo assim durante toda a
cirurgia, compensando a fuga de gás que ocorre por diferentes motivos
(SCHUTTE; YARMUCH, 2002). Freeman (1999) recomenda que seja mantida
36

pressão intra-abdominal de 10 a 12 mmHg para OSH videolaparoscópica. Os
gases utilizados para insuflação devem ser incolores, não combustíveis,
fisiologicamente inertes e acessíveis, onde se enquadram o CO2, N2O, ar
comprimido, nitrogênio, hélio, argônio e xenônio. Dentre esses, o CO2 é o mais
usado, apesar de apresentar algumas desvantagens, como a irritação da
superfície visceral pela formação do ácido carbônico, que é absorvido pelo sangue
levando à hipercapnia, vasodilatação, hipotensão, taquicardia e arritmias; porém
está facilmente disponível, é mais barato, tem rápida difusão e excreção pelo
organismo do animal e não entra em combustão no uso de laser ou eletrocautério
(KUNTZ et al., 2000). Mesmo sendo o oxigênio, o ar comum e o nitrogênio baratos
e estando facilmente disponíveis, não são usados por terem absorção e excreção
lenta, além do alto risco de embolismo (FREEMAN, 1999).
O eletrocautério (Figura 9) é utilizado com o intuito de dividir os tecidos no
foco da corrente em pequena área, onde vaporiza ou rompe as células. Pode ser
monopolar, onde a corrente passa pelo corpo através de eletrodos ativos,
retornando posteriormente através da placa de aterramento por eletrodos ativos.
Existe também o bipolar, que não necessita de placa de aterramento porque os
eletrodos ativos e de retorno estão no instrumento eletrocirúrgico, passando a
corrente apenas no tecido confinado entre os eletrodos (FREEMAN, 1999).
37

A
B C
Figura 9: Foto do conjunto: A. monitor; B. eletrocautério; C. fonte de luz; D. câmera; E: insuflador.
Foto tirada durante OSH videolaparoscópica realizada em cadela durante o estágio
supervisionado no período de 24 de junho a 01 de setembro de 2006.
O aparelho de irrigação e aspiração é usado para melhorar a visualização
do campo operatório ao remover coágulos de sangue, levando também à redução
de aderência pós-cirúrgica. A irrigação geralmente é feita com solução de ringer
lactato estéril sob pressão e a sucção é realizada com aparelho portátil de sucção
mecânica, onde todo conteúdo retirado é armazenado em um recipiente,
permitindo quantificá-lo (FREEMAN, 1999).
Utiliza-se a agulha de Veress, sistema trocarte-cânula, pinças, tesouras e
clipadores como instrumental de acesso e manipulação da cavidade abordada.
A agulha de Veress (Figura 10) é de extrema importância para a criação do
pneumoperitôneo. Apresenta na extremidade distal um estilete oco e rombo e um
mecanismo de válvula na extremidade proximal, onde há conexão da mangueira
que sai do insuflador. Após a incisão de pele, a agulha de Veress é introduzida, o
estilete é empurrado para trás automaticamente, expondo as bordas cortantes da
agulha, que voltam a ser recobertas pelo estilete após a introdução na cavidade
abdominal, prevenindo qualquer lesão nos órgãos abdominais (CERVANTES;
PATINÕ, 1997).
D
E
38

É através das cânulas do sistema trocarte-cânula (Figura 10) que os
instrumentos de manipulação e a ótica irão passar, se apresentando em diferentes
medidas, de acordo com o instrumental que irá passar no seu interior, podendo
ser de plástico ou de metal, rígidas, cilíndricas, com uma válvula que permite a
passagem dos instrumentos, mas impede a perda de gás de dentro da cavidade
abdominal. O trocarte é um estilete de ponta afiada, que passa por dentro da
cânula, sendo retirado do sistema trocarte-cânula após a introdução na cavidade
abdominal, permanecendo apenas a cânula para passagem dos materiais.
Trocárteres descartáveis apresentam um sistema de proteção na extremidade
distal que recobre a lâmina após penetrar na cavidade, minimizando o risco de
lesões (RICHTER, 2001).
As pinças (Figura 10) são classificadas como de apreensão e de dissecção.
As de apreensão, também chamadas de grasping, podem ser compatíveis com o
eletrocautério, onde a pinça se apresenta isolada para evitar danos em tecidos
adjacentes à área de manipulação. Possuem um sistema de trava, de rotação ou
articulação e sistema de fechamento simples ou duplo das pás. As pinças de
dissecção são úteis para isolamento e identificação de vasos sanguíneos e
pequenas estruturas abordadas, onde as mais comuns são as curvas, de
Maryland, de ângulo reto e Kelly (FREEMAN, 1999).
As tesouras (Figura 10) geralmente permitem ser acopladas no
eletrocautério, podendo ser descartáveis ou não. A mais usada é a tesoura
Metzenbaum, porém existem outros tipos como as tesouras de gancho, usada em
estruturas tubulares, e as tesouras retas, que podem se apresentar como
microtesouras utilizadas em estruturas delicadas (FREEMAN, 1999).
Para realização de ligaduras, com o intuito de controlar sangramentos, são
usados clipes de titânio. Os clipadores (Figura 10) são usados para fixar os clipes
e podem ser descartáveis ou reutilizáveis (FREEMAN, 1999).
39

A B C D E
Figura 10: A. clipador; B. tesoura; C. pinça de apreensão grasping; D. conjunto trocarte-cânula; E.
agulha de Veress. Foto tirada durante OSH videolaparoscópica realizada em cadela
durante o estágio supervisionado no período de 24 de junho a 01 de setembro de 2006.
3.2.4.2 Considerações anestésicas
As cirurgias laparoscópicas apresentam um importante efeito sobre o
funcionamento fisiológico do sistema cardiovascular e respiratório, em função da
posição em que o animal é mantido (BARAÚNA, 2001), do aumento da pressão
abdominal e da absorção do CO2 usado para obter o pneumoperitôneo; e é por
isso que um exame pré-operatório bem feito se faz necessário (FREEMAN, 1999).
Recomenda-se o uso de medicamentos pré-anestésicos com a intenção de
promover sedação, analgesia e amnésia, reduzindo também secreções,
ansiedade, náuseas e vômitos. O uso de medicamentos pré-anestésicos tem
como objetivo principal reduzir a quantidade de anestesia utilizada durante a
endocirurgia. Essas medicações não se diferenciam daquelas usadas em
procedimentos abertos. Fenotiazínicos, como a acepromazina, são usados para
minimizar as náuseas e vômitos, porém existe o risco do paciente não compensar
bem a vasodilatação causada por eles. Agonista alfa-2 adrenérgicos não são
recomendados por causarem depressão cardiorrespiratória e, como a insuflação
com gás e a postura em que o animal fica durante a cirurgia já deprimem esses
sistemas, evita-se o uso desse grupo de medicamentos (FREEMAN, 1999).
Para a manutenção da anestesia durante a cirurgia é recomendado o uso
de anestésicos gerais, promovendo relaxamento muscular, analgesia e amnésia, e
para isso indica-se o uso de anestesia inalatória. A escolha de qual anestésico
40

inalatório usar depende de alguns fatores como a condição de saúde do animal.
Dos inalatórios o isoflurano é o mais recomendado por ter menos efeitos na autoregulação
cerebral, na pressão sanguínea, na contratilidade e ritmo cardíaco
(FREEMAN, 1999).
No caso da OSH por videolaparoscopia, pode ser realizada anestesia
epidural, trazendo benefícios no trans e pós-operatório por causar analgesia
efetiva e mínima depressão da resposta fisiológica aos fatores estressantes, como
a elevação da pressão de CO2 sanguínea. Um exemplo de anestesia epidural
utilizada para laparoscopia é o uso de lidocaína 2% ou bupivacaína 0,5% na dose
de 1ml / 5 kg, usando no máximo 20 mL por animal, que deve ser injetada no
espaço lombo-sacral dos cães, causando anestesia caudalmente ao diafragma,
lembrando que o animal deve permanecer com a cabeça mais elevada que o
restante do corpo por aproximadamente 20 minutos, a fim de evitar que o
anestésico migre para a região da cabeça (FREEMAN, 1999).
3.2.4.3 Procedimento cirúrgico
O abdome do animal deve ser preparado do mesmo modo em que é feito
em cirurgias abertas, realizando a tricotomia ampla e anti-sepsia da região. Isso
porque além de estar garantindo uma área mais limpa e com melhor visualização
da área cirúrgica, pode ocorrer a necessidade de uma conversão da cirurgia
laparoscópica para uma laparotomia em função de alguma complicação (ALÉS et
al., 1999).
Idealmente a bexiga, o estômago e as alças intestinais devem estar vazios,
pois se estiverem repletos atrapalham a visualização dos demais órgãos e
estruturas, além de aumentar a chance de ocorrer um acidente (RICHTER, 2001).
Durante o procedimento laparoscópico a mesa cirúrgica deve permanecer
inclinada com a intenção de expor de maneira mais confortável para o cirurgião a
área de interesse. Para OSH, o animal permanece na posição de Trendelenburg,
ou seja, em decúbito dorsal, com uma inclinação que faça com que a cabeça fique
mais baixa, de forma que os órgãos abdominais escorreguem cranialmente e o
campo operatório caudal fique mais exposto (FREEMAN, 1999).
41

Após a anti-sepsia local, os panos de campo são colocados, delimitando o
campo operatório e protegendo de contaminações. O primeiro instrumento usado
é a agulha de Veress, que é inserida caudo-lateralmente à cicatriz umbilical da
cadela, sendo direcionada para a pelve, evitando atingir o ligamento falciforme e
não causando injúrias no baço. Antes de se introduzir a agulha de Veress, é feita
uma pequena incisão na pele, tenciona-se e suspende-se a parede abdominal
com a mão, inserindo em seguida a agulha. Para assegurar que a ponta da agulha
está no interior da cavidade abdominal, utilizam-se alguns recursos como a
colocação de uma seringa com solução fisiológica 0,9% estéril na extremidade
proximal da agulha, aspira-se com a seringa para verificar se há sangue, muco ou
outro fluído corpóreo, se nada for detectado, injeta-se a solução que deverá fluir
livremente e, ao separar a seringa da agulha e erguer a parede abdominal, a
solução fisiológica 0,9% que permaneceu no centro da agulha deverá fluir para a
cavidade, caso não haja oclusão na ponta da agulha. Porém, o que indica de
forma definitiva que a agulha está no local correto é o balotamento, ou seja,
durante a insuflação a parede abdominal inteira deve saltar livremente. Caso a
insuflação seja localizada, significa que a agulha está em posição inadequada e
deve ser reposicionada (FREEMAN, 1999).
Com a agulha na posição correta e a pressão abdominal desejada
alcançada, o primeiro trocarte pode ser introduzido, e para isso, duas técnicas são
descritas. Uma das técnicas é a aberta ou de Hasson, onde é feita uma incisão na
pele, se disseca o tecido subcutâneo, incisionando a linha alba posteriormente até
a exposição do peritôneo, introduzindo então o trocarte, reduzindo o risco de
prejuízos nas vísceras durante o procedimento. A outra técnica é a fechada onde
se utiliza um trocarte de 5 ou 10 mm com um sistema de segurança, pois o
mesmo se encontra recoberto por uma proteção externa de plástico que retrai
quando encontra resistência, como quando entra na cavidade abdominal,
perfurando a parede e recobre a lâmina de corte quando não há resistência. Na
técnica fechada, após uma pequena incisão de pele, o trocarte com sistema de
segurança é introduzido, empurrando e torcendo, formando um ângulo reto com a
42

parede abdominal até a penetração total do trocarte e da cânula, onde o primeiro é
removido para passagem do laparoscópio pela cânula (FREEMAN, 1999).
Com o laparoscópio já na cavidade abdominal, conecta-se a fonte de luz no
mesmo e acopla-se a fonte de gás na válvula existente na cânula. Com o uso da
óptica realiza-se um exame da cavidade abdominal, onde as posições dos órgãos
são verificadas, assim como aderências e outras observações (FREEMAN, 1999).
Para a realização da OSH, a indicação da quantidade de cânulas a serem
introduzidas na cavidade varia de acordo com a literatura, podendo-se usar três
cânulas, contando com aquela usada pela ótica, sendo necessário neste caso, a
utilização de sutura transparietal na região pré-púbica, fixando o útero próximo à
bifurcação dos cornos (BRUN, 2004). Outra técnica descreve o uso de 4 cânulas
(Figura 11), também contando com a usada pelo laparoscópio, sendo uma
cranialmente à cicatriz umbilical na linha alba, uma lateral direita na linha da
glândula mamária, uma lateral esquerda na linha da glândula mamária e uma
caudalmente à cicatriz umbilical, na altura do púbis, também na linha alba (BRUN
et al., 2000). Acessos secundários são posicionados de modo que permitam um
ótimo acesso para os órgãos de interesse e facilite a cirurgia. Os locais escolhidos
devem ser separados para criar ângulos de 30 a 60º entre eles, e para permitir a
manipulação dos instrumentos, de modo que um não prejudique o outro,
lembrando que uma distância muito grande pode atrapalhar a manipulação
(FREEMAN, 1999). Em humanos há recomendação de um espaço de 6 a 8 cm
entre os trocárteres (CERVANTES; PATINÕ, 1997), já em cães utiliza-se uma
distância de 5 a 10 cm, o que pode variar de acordo com as dimensões do cão a
ser operado (BRUN et al., 2000).
43

Figura 11: Posicionamento das cânulas. CD = caudal, CR = cranial, E = esquerda, D = direita.
Fonte: BRUN et al. (2000).
Com o auxílio da ótica e da fonte de luz, os locais escolhidos para a
introdução dos demais trocárteres são iluminados de dentro para fora, destacando
os vasos sanguíneos da parede abdominal, afim de que sejam evitados durante o
procedimento de inserção dos trocárteres e cânulas. Ao pressionar a parede
abdominal externa, é possível visualizar com a ótica o local em que o trocarte está
sendo introduzido após a incisão na pele, assegurando uma entrada segura do
mesmo na cavidade abdominal. Com todas as cânulas posicionadas, e já sem os
trocárteres, os instrumentais são introduzidos, sendo importante que estes
estejam fechados durante sua entrada e que sejam visualizados no monitor até
que alcancem o sítio operatório, onde já podem ser abertos para manipulação dos
ovários, útero e tecidos adjacentes (FREEMAN, 1999).
Posterior a visualização da posição anatômica do sistema reprodutivo da
cadela, os passos para OSH por videolaparoscopia são os mesmos da técnica de
laparotomia, ou seja, rompimento do ligamento suspensório do ovário, formação
de uma janela no mesovário, ligação e ressecção do pedículo ovariano,
dissecação do útero e seus cornos, ligação e ressecção do corpo uterino e artérias
uterinas, remoção do trato genital e fechamento da cavidade (FREEMAN, 1999).
Após inclinar levemente o animal em um ângulo de 45º para a direita,
utiliza-se uma pinça de apreensão localizada em uma das cânulas caudais para a
exposição do ovário esquerdo, que deve ser levemente tencionado caudalmente,
destacando o ligamento suspensório do ovário e vasos anexos, que devem ser
ligados corretamente evitando sangramento, que pode prejudicar a visualização
44

das estruturas. Após a formação de uma janela no mesovário, utilizando uma
pinça de dissecação inserida na cânula lateral direita, todo o pedículo ovariano
deve ser ligado, incluindo o ligamento suspensório, seus vasos anexos, artéria e
veia ovariana, onde o procedimento de ligadura pode ser feito com clipes,
eletrocautério ou através de nós de sutura, permitindo posterior secção do
pedículo com o uso de uma tesoura e eletrocautério, que serão também usados
para dissecção do mesométrio, seccionando o ligamento redondo e largo do útero,
chegando ao nível das artérias uterinas. Para identificação do outro ovário, o
animal deve ser inclinado levemente para o lado oposto, onde deve ser repetido o
mesmo procedimento no mesovário, pedículo ovariano, ligamento suspensório do
ovário, ligamento largo e redondo do útero e mesométrio (FREEMAN, 1999).
A ligadura do corpo uterino pode ser feita através do Endoloop, que se trata
de um fio de náilon com o nó já preparado na forma de laço, que é introduzido
pelo acesso lateral mais próximo da bifurcação uterina. Com o auxílio das pinças,
os cornos uterinos são passados através do laço, de forma que o fio atinja a
porção cranial da cérvix, sendo então puxado ao mesmo tempo em que a cânula é
empurrada até que o nó seja apertado. Essa ligadura deve ser realizada duas
vezes, sendo recomendada uma distância de 1 cm entre as duas ligaduras. Com a
segurança de nós firmes, o corpo uterino pode ser seccionado (FREEMAN, 1999).
Outra técnica descreve o uso de clipes de titânio para ligar as artérias e veias
uterinas, onde cada clipe liga o conjunto artéria e veia, sendo utilizados dois clipes
de cada lado, totalizando quatro clipes, sendo a secção dos vasos realizada entre
os dois clipes de cada lado. Assegurando a correta ligadura dos vasos do corpo
do útero, utiliza-se uma tesoura de Metzenbaum acoplada a um bisturi elétrico
para secção do corpo uterino (BRUN et al., 1999).
Para a remoção do tecido em questão, utiliza-se uma pinça de apreensão,
de preferência a Grasping, através de uma cânula de 10 mm, devendo esta
apreender firmemente um dos ovários, trazendo o conjunto ovários, cornos e
corpo uterino até a ponta da cânula, removendo então de forma simultânea a
cânula, ovários, cornos uterinos e corpo uterino da cavidade abdominal em sentido
linear através do orifício formado pela cânula. Caso o tecido a ser retirado possua
45

uma doença maligna ou esteja infectado, deve ser utilizada uma bolsa coletora
que é introduzida por um dos acessos, sendo então o tecido colocado no seu
interior, fechando a bolsa em seguida e retirando o conjunto (FREEMAN, 1999).
3.2.4.4 Possíveis complicações
Além de existir a possibilidade de complicações em função da anestesia
geral, o que pode ser evitado com uma análise prévia da função metabólica e
cardiopulmonar do paciente, há o risco de uma víscera oca, baço ou vaso
sanguíneo ser lesionado e o animal sofrer severas conseqüências, incluindo o
embolismo gasoso e o dano mecânico do órgão (RICHTER, 2001).
A hipercapnia é uma das complicações que podem ocorrer na laparoscopia,
em função do CO2 que é absorvido, resultando em taquicardia, hipertensão e
arritmias cardíacas. Para prevenir que isso ocorra, recomenda-se monitoração da
pressão abdominal, melhor ventilação e controle do plano anestésico (FREEMAN,
1999).
A posição de Trendelemburg pode elevar o diafragma, causando um
aumento de até 50% na pressão inspiratória, diminuindo a capacidade funcional,
levando a um desequilíbrio da taxa de ventilação, atelectasia, hipoxemia e
hipercapnia, sem contar com o risco de refluxo gastro-esofágico com aspiração
(BARAÚNA, 2001).
O aumento da pressão abdominal, o posicionamento do animal e um
inadequado volume sanguíneo podem dificultar o retorno venoso, é por isso que a
literatura recomenda a manutenção da volemia mantendo a fluidoterapia
endovenosa e uma pressão de insuflação do abdome durante a cirurgia de 10 a
14 mmHg (FREEMAN, 1999). Já Alves et al. (2004), recomendam pressão intraabdominal
de 6 mmHg para realização da OSH por videolaparoscopia.
Outras queixas de pacientes que passam pela cirurgia laparoscópica são a
dor e as náuseas, que podem ser explicadas pela irritação na superfície visceral
causada pelo CO2, que é transformado em ácido carbônico e absorvido pela
corrente sanguínea (CERVANTES; PATINÕ, 1997).
46

O uso dos trocárteres e da agulha de Veress pode causar injúrias à artéria
ou veia epigástrica superficial e vasos epigástricos profundos. Caso a lesão seja
em um pequeno vaso, a hemorragia é autolimitante, porém se um grande vaso é
atingido, é necessária intervenção do cirurgião, onde o procedimento
recomendado é o de remover o trocarte, localizar o sítio de sangramento e contêlo
através de sutura, clipe ou coagulação com eletrocautério. Após controle da
hemorragia, a cânula é reintroduzida e a cirurgia se segue. Uma medida para
evitar lesões de tecidos e vasos durante a inserção dos trocárteres secundários, é
a de iluminação da parede abdominal com a fonte de luz da ótica, a fim de
identificar os vasos superficiais (FREEMAN, 1999).
Perfurações no estômago, intestino e bexiga também podem vir a ocorrer
ao se introduzir um trocarte ou agulha. Muitas vezes isso ocorre em caso de uma
dilatação gástrica por indução anestésica com máscara ou por uma entubação
esofageal acidental, que pode ser evitado com o uso de um tubo orogástrico para
descompressão do estômago. A bexiga repleta também facilita a ocorrência de
lesões, e com a introdução de uma sonda uretral e esvaziamento da bexiga esse
risco é reduzido (FREEMAN, 1999).
Outro fato comum de ocorrer, porém não considerado de grande seriedade,
é o enfisema subcutâneo que surge em virtude da dissipação do gás no tecido
subcutâneo por um acesso incorreto do interior da cavidade abdominal com a
agulha de Veress ou o sistema trocarte-cânula. Quando ocorre em áreas
extensas, o enfisema desaparece em cerca de 24 horas, mas caso seja utilizado
um gás insolúvel, como o hélio, o enfisema pode perdurar por algumas semanas.
Se o enfisema ocorrer durante a cirurgia, em torno da abertura do trocarte, realizase
uma sutura em bolsa de tabaco em volta da cânula para impedir o vazamento;
caso não resolva, o orifício de acesso é fechado e outra porta de inserção é aberta
(FREEMAN, 1999).
Como costuma-se usar eletrocautério na videolaparoscopia, queimaduras
podem ocorrer quando o mecanismo elétrico é ativado fora do campo de visão da
ótica e o instrumental esteja em contato com algum tecido (FREEMAN, 1999).
47

Hérnias podem aparecer no pós-operatório caso as aberturas do peritôneo,
fáscia e tecido subcutâneo estejam alinhadas. A prevenção de hérnias é através
de uma incisão oblíqua para colocação da cânula e uma sutura adequada
(FREEMAN, 1999).
Em virtude de perfurações intestinais, contaminação de biópsia intestinal ou
descuido na esterilidade antes e durante a cirurgia, infecções podem ocorrer. Para
minimizar esse risco, deve ser dada grande atenção às técnicas adequadas
(RICHTER, 2001).
3.2.5 Relato de caso e discussão
Deu entrada no Centro Veterinário Asa Sul em Brasília, DF, uma cadela
sem raça definida, pesando 20 kg, com 3 anos de idade, onde a proprietária tinha
como intuito realizar ovariossalpingohisterectomia, impedindo assim que o animal
se reproduzisse. Foi realizado exame clínico, onde todos os parâmetros se
apresentavam normais, com temperatura retal de 38,4 ºC, mucosas róseas, tempo
de preenchimento capilar de 3 segundos, linfonodos palpáveis com tamanhos
normais, ausculta cardíaca e respiratória normais e perfeito estado de nutrição.
Foram esclarecidas para a proprietária as conseqüências ao realizar-se
essa cirurgia, ou seja, limitação da reprodução, prevenção de tumores
influenciados por hormônios reprodutivos, como os mamários, e auxílio no controle
de doenças ligadas ao trato reprodutivo, conforme citam Fossum et al. (2002),
sendo também expostas as diversas maneiras de se realizar a OSH, dentre elas a
tradicional laparotomia com incisão da linha alba e a videolaparoscopia, segundo
Howe (2006). Foram também expostas para a proprietária as vantagens em se
proceder a técnica laparoscópica comparada com a técnica aberta, como melhor
aparência estética, menores gastos no pós-cirúrgico com curativos e
medicamentos, menor dor pós-operatória, menos complicações no trans e pósoperatório
e menor período de hospitalização, como cita Brun et al. (1999), além
da menor formação de aderências do que na laparotomia, segundo Gutt et al.
(2005).
48

Assim como citam Malm et al. (2004), foi esclarecido para a proprietária que
no trans-operatório da laparoscopia o animal se estressa mais do que na
abordagem convencional, em função de um maior tempo cirúrgico.
Por se tratar de uma cirurgia eletiva, foram requeridos exames
complementares que garantissem que o animal apresentava-se saudável,
realizando-se hemograma, que se apresentou normal, e bioquímica sérica, com
dosagem da uréia, creatinina, transaminase glutâmico-pirúvica (TGP) e fosfatase
alcalina. A uréia e a creatinina, enzimas que demonstram a função renal, a TGP e
a fosfatase alcalina, que são enzimas abundantes no fígado, se apresentaram
normais nos exames realizados (CARVALHO, 1995). O exame clínico associado
aos exames complementares realizados no dia seguinte, demonstraram que o
animal estava apto para realização da cirurgia.
O animal permaneceu em jejum alimentar de 12 horas antes da cirurgia,
com o intuito de evitar êmese e pneumonia por aspiração, assim como preconiza
Fossum et al. (2002). Foi feita tricotomia ampla na região abdominal da cadela,
considerando a possibilidade de ocorrer conversão da cirurgia laparoscópica para
uma laparotomia por alguma complicação, e garantindo também uma área
cirúrgica mais limpa (ALÉS et al., 1999). Após tricotomia e anti-sepsia do membro
anterior direito do animal com povidine degermante seguido de álcool iodado, a
veia cefálica foi canulada com cateter número 24G, e mantida fluidoterapia com
solução fisiológica a 0,9%.
Como medicação pré-anestésica foi usada acepromazina 1 na dose de 0,1
mg/kg via intravenosa, sendo aplicado, após 3 minutos, propofol 2 na dose de
5mg/kg pela mesma via de aplicação, entubando o animal em seguida com o uso
de um traqueotubo nº 6, dando início à anestesia inalatória com isoflurano 3 ,
anestésico indicado por não causar dano celular, não sendo então hepatotóxico
(FANTONI, 2002), utilizando-se durante todo o procedimento 35 mL do fármaco.
O animal foi colocado na posição de Trendelemburg, assim como
recomenda Freeman (1999), a placa correspondente ao fio terra do bisturi
monopolar foi posicionada embaixo do paciente, na região tóraco-lombar, sendo
feita a anti-sepsia prévia e a definitiva com povidine degermante e álcool iodado
49

na área cirúrgica, colocando em seguida os panos de campo, que foram fixados
com pinças Backhaus, deixando somente a região abdominal descoberta.
A cirurgia se iniciou com uma incisão de pele na linha média ventral, préumbilical,
com cerca de 1,5 cm de comprimento, a 1 cm da cicatriz umbilical, com
a divulsão do tecido subcutâneo, até a visualização da linha alba. O músculo reto
abdominal, o tecido subcutâneo e a pele foram elevados sob tensão dos dedos do
cirurgião, sendo então introduzida a agulha de Veress de forma perpendicular à
linha alba, no ponto médio da incisão. O teste com solução fisiológica estéril
infundida com uma seringa de 3 ml na agulha de Veress foi realizado,
demonstrando que a ponta da mesma se encontrava dentro da cavidade
abdominal, conforme indica Freeman (1999).
Utilizando-se um insuflador eletromecânico, a cavidade foi insuflada com
dióxido de carbono a 5%, mantendo-se uma pressão intracavitária de 10 a 12
mmHg, seguindo a recomendação de Freeman (1999), evitando aumento
excessivo da pressão dentro da cavidade. Estabelecido o pneumoperitôneo,
retirou-se a agulha de Veress e através da abertura de pele já existente, um
trocarte de 10 mm foi inserido. Pela cânula deste trocarte foi passada uma ótica de
zero grau acoplada à microcâmera e à fonte de luz.
Em seguida, foi feita uma inspeção na cavidade abdominal, observando o
aspecto macrosópico do útero, onde não foi visualizada nenhuma alteração, e
observando-se ainda as alças intestinais e a bexiga, confirmando que estavam
vazias, o que reduz a possibilidade de uma lesão nesses órgãos durante o
procedimento, segundo Richter (2001). Sob visão direta, foi eleito o sítio para
introdução do segundo trocarte, de 5 mm de diâmetro, que foi posicionado na
região lateral esquerda, a uma distância aproximada de 12 cm caudal à primeira
incisão e 10 cm lateralmente à linha média ventral. Realizou-se a introdução do
terceiro trocarte, 5 mm de diâmetro, na região lateral direita, em posicionamento
semelhante ao do segundo (Figura 12). O quarto trocarte, de 10 mm, foi
posicionado na linha média ventral, a aproximadamente 5 cm da região do púbis,
totalizando assim 4 trocártes introduzidos, que facilitam a realização do
procedimento, concordando com Brun et al. (1999).
50

Figura 12: Introdução do trocarte durante OSH videolaparoscópica realizada durante estágio
supervisionado no período de 24 de junho a 01 de setembro de 2006.
Tendo todas as cânulas posicionadas, o animal foi levemente inclinado para
o lado direito, cerca de 45º, facilitando assim a visualização e manipulação do
ovário esquerdo, assim como recomenda Freeman (1999). Foram introduzidas
uma pinça Grasping no acesso lateral esquerdo, e uma pinça Maryland na cânula
lateral direita, procedendo então a manipulação uterina. A bolsa ovariana foi
apreendida com a pinça Grasping, sofrendo leve tensão ventro-caudal, expondo a
bolsa ovariana, o ligamento suspensório do ovário, o mesovário e a
mesossalpinge. Utilizando a pinça Maryland, foi aberta uma janela no mesovário,
dissecando-o de forma a visualizar os vasos ovarianos, que foram ligados logo em
seguida com 2 clipes de titânio, após a introdução do clipador pela cânula na linha
média ventral, próximo do púbis.
A pinça Maryland foi retirada, sendo introduzida na mesma cânula uma
tesoura curva ligada ao eletrocautério, realizando então uma secção entre os
clipes de titânio, e seccionando o ligamento suspensório, a mesossalpinge e o
mesovário, sempre utilizando a eletrocoagulação para evitar o sangramento de
pequenos vasos, impedindo que a visualização com a ótica ficasse prejudicada,
seguindo a técnica citada por Freeman (1999). Com a pinça Grasping ainda
posicionada, o corno uterino esquerdo foi elevado expondo o mesométrio, que foi
51

dissecado com a tesoura e eletrocauterização no sentido do corpo do útero,
seccionando também o ligamento largo e redondo do útero, até o corno uterino
esquerdo ficar totalmente livre.
O animal foi então reposicionado, agora com leve inclinação para o lado
esquerdo, retirando os instrumentos das cânulas, introduzindo então uma pinça
Grasping na cânula do lado direito e uma pinça Maryland no lado esquerdo,
repetindo o mesmo procedimento que foi realizado na bolsa ovariana, ligamentos,
mesovário, mesosalpinge, mesométrio e corno uterino esquerdo, utilizando-se dos
mesmos instrumentais e da mesma técnica.
Com os cornos uterinos livres e o mesométrio dissecado no procedimento
anterior, a artéria e veia uterina foram visualizados. Optou-se pela utilização de
clipes de titânio na ligadura das artérias e veias uterinas, através de dupla
ligadura, ou seja, dois clipes de cada lado, como recomenda Brun et al. (2000),
havendo sempre uma pinça expondo a porção que estava sendo manipulada.
Com a tesoura acoplada ao bisturi elétrico monopolar, a secção foi realizada entre
os dois clipes de cada lado, seguindo para secção do corpo uterino na altura da
cérvix, como cita Brun et al. (2000), utilizando também a cauterização monopolar
no mesmo tecido.
Após a secção e separação completa do tecido, as pinças foram retiradas
dos acessos laterais e o clipador retirado da cânula mais caudal, permanecendo
apenas o laparoscópio. Para a remoção do tecido, foi utilizada a pinça de
apreensão Grasping, através da cânula de 10 mm localizada na linha média
ventral, onde o ovário esquerdo foi firmemente apreendido, trazendo o conjunto
ovários, cornos e corpo uterino até a ponta da cânula, retirando posteriormente o
mesmo conjunto de forma simultânea e em sentido linear através do orifício
formado pela cânula (Figura 13-A e 13-B), seguindo a técnica idealizada por
Freeman (1999).
52

Figura 13: A e B) retirada do útero em uma OSH videolaparoscópica, realizada em cadela, durante
estágio supervisionado no período de 24 de junho a 01 de setembro de 2006.
53
A B

Após a retirada do órgão, a cavidade foi inteiramente inspecionada, a ótica
foi retirada, removendo em seguida as cânulas e desinsuflando a cavidade
abdominal. Na musculatura foi realizada sutura Sultan com fio náilon 5 3-0 na
região onde haviam as cânulas, e a pele foi suturada com fio náilon 5 3-0, com
sutura simples separada, sendo a área cirúrgica limpa com solução fisiológica.
O animal foi internado por 24 horas, sendo ministrado enrofloxacina 9 na
dose de 5 mg/kg, a cada 12 horas, por via oral, com o intuito de prevenir uma
possível infecção pós-cirúrgica, já que se trata de uma fluorquinolona de amplo
espectro de ação, com utilização comum na Medicina Veterinária, como cita
Górniak (2002), administrando também cloridrato de tramadol 8 , na dose de 2
mg/kg, a cada 8 horas, por via oral. O animal foi então liberado 24 horas após a
cirurgia, mantendo a enrofloxacina 9 durante 9 dias.
Oito dias após a cirurgia, a cadela retornou à clínica para retirada dos
pontos, apresentando perfeita cicatrização da ferida cirúrgica e excelente estado
de saúde.
A técnica descrita se mostrou adequada e viável para a realização de
ovariossalpingohisterectomia laparoscópica em animais sadios, apesar do
procedimento ser restrito, por exigir material e treinamento específico para sua
realização. Os equipamentos e instrumentais utilizados foram suficientes e
apropriados para que o plano cirúrgico ocorresse bem. O animal apresentou
rápida recuperação pós-cirúrgica, destacando também que não ocorreu nenhuma
complicação que demonstrasse aspectos negativos nesse tipo de procedimento.
54

4. CONCLUSÃO
O presente trabalho demonstrou a importância de se realizar um trabalho
investigatório da forma mais adequada, utilizando-se de todos os recursos
possíveis, a fim se chegar a um diagnóstico preciso. A colelitíase canina é uma
patologia de pouco ocorrência na Medicina Veterinária e por isso, muitas vezes
não é colocada como possível causa de alterações que se associam a outras
patologias. O caso de colelitíase apresentado neste trabalho destaca quais são os
passos e as dificuldades para se chegar ao diagnóstico e tratamento adequado
dessa patologia.
Foi também possível perceber que a ovariossalpingohisterectomia por
videolaparoscopia é um procedimento cirúrgico que está ao alcance da veterinária,
tendo seu uso em crescimento. Apesar de também possuir desvantagens, a OSH
videolaparoscópica tem se destacado pelas suas vantagens, como menor trauma
e menos complicações no trans e pós-operatóro, apresentando na maioria dos
casos um resultado satisfatório.
56

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60

ANEXO A – Fontes de aquisições
1 Acepromazina – Acepram® - Univet. São Paulo, Brasil.
2
Propofol - Rapinovet® - Coopers. São Paulo, Brasil.
3
Isoflurano - Isoflurane® - Cristália. São Paulo, Brasil.
4
Poliglatina 910 - Vycril® - Johnson e Johnson Comércio e Distribuição Ltda. São
Paulo, Brasil.
5
Náilon – Poliamida – Ethicon. São Paulo, Brasil.
6
Carduus marianus - Legalon® - Altana. São Paulo, Brasil.
7
Metronidazol - Flagil® - Rhodia Farma Ltda. São Paulo, Brasil.
8
Cloridrato de Tramadol - Tramal® - Pharmacia Brasil Ltda. São Paulo, Brasil.
9
Enrofloxacina – Flotril® - Fort Dodge Saúde Animal Ltda. São Paulo, Brasil.
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ANEXO B – Certificados dos estágios curriculares
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