Artigo Científico - Upis

UPIS – FACULDADES INTEGRADAS
DEPARTAMENTO DE MEDICINA VETERINÁRIA
TRABALHO DE CONCLUSÃO DO CURSO
Área de Ovinocaprinocultura
DE MEDICINA VETERINÁRIA
Acadêmico: Nalhou Oliveira Alencar
Orientador: Prof. Dr. Hélio Blume
Supervisores: Méd. Vet. Maria Dalva Bezerra de Alcântara
Méd. Vet. Fabianna Fortuna de Freitas

Brasília – DF
Dezembro, 2006
AGRADECIMENTOS
Aos queridos professores do curso de Veterinária, em especial ao
Professor Dr. Hélio Blume, pela sua orientação e pelos ensinamentos
transmitidos, culminando com a realização deste trabalho; à Professora
Msc. Roselene Ecco, pelo incentivo e participação na minha formação
acadêmica; ao professor Msc. Rafael Gianella Mondadori, pela sabedoria e
competência com que tem conduzido e melhorado o curso de Medicina
Veterinária e à Professora Msc. Adriana Moraes da Silva pela ajuda no
encaminhamento do estágio e pela forma organizada e responsável com
que conduz a coordenadoria de estágios supervisionados.
A minha esposa Luci pela colaboração na realização do trabalho e
pelo apoio durante mais essa jornada.
Ao pessoal da EMEPA, em particular às minhas supervisoras do
estágio, a médica veterinária Fabianna Fortuna de Freitas (E.E.B.M.) e
Maria Dalva Bezerra de Alcântara (E.E.P.) pelos ensinamentos
transmitidos e a oportunidade que me deram de praticar os conhecimentos
teóricos adquiridos durante o curso.

AGRADECIMENTOS
RESUMO
LISTA DE TABELAS
LISTA DE FIGURAS
SUMÁRIO
1. INTRODUÇÃO 1
2. HISTÓRICO DA OVINOCAPRINOCULTURA 4
3. ATIVIDADES DESENVOLVIDAS 7
4. MANEJO GERAL DO REBANHO 11
5. MANEJO SANITÁRIO 16
5.1. HELMINTOSES (VERMINOSES) 18
5.1.1. Etiologia 18
5.1.2. Epidemiologia 19
5.1.3. Sinais Clínicos 22
5.1.4. Diagnóstico 22
5.1.5. Controle e Profilaxia 25
5.1.6. Situação Acompanhada 29
5.2. ECTIMA CONTAGIOSO (BOQUEIRA) 30
5.2.1. Etiologia 30
5.2.2. Sinais Clínicos 31
5.2.3. Diagnóstico 32
5.2.4.Tratamento 33

5.2.5. Controle 33
5.2.6. Situação Acompanhada 33
5.3. LINFADENITE CASEOSA (MAL DO CAROÇO) 35
5.3.1. Etiologia 36
5.3.2. Epidemiologia 36
5.3.3. Patogenia 37
5.3.4. Sinais Clínicos 38
5.3.5. Diagnóstico 38
5.3.6. Tratamento 39
5.3.7. Controle e Profilaxia 39
5.3.8. Situação Acompanhada 40
6. CONCLUSÃO 43
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 45
ANEXO 1 – Certificados de Estágio Obrigatório Supervisionado
de Medicina Veterinária
ANEXO 2 – Formulários utilizados pela EMEPA na
escrituração zootécnica e no registro dos animais
ANEXO 3 – Algumas raças criadas pela EMEPA 49
47
48

LISTA DE FIGURAS
FIGURA 01 – Colocação de brinco em um ovino. Fonte: EMEPA
(2006)
FIGURA 02 – Parto distórcico de uma ovelha. Fonte: EMEPA
(2006)
FIGURA 03 – Parto distórcico de uma ovelha. Fonte: EMEPA
(2006)
FIGURA 04 – Aplicação de vacina em um caprino. Fonte: EMEPA
(2006)
FIGURA 05 – Fases de vida livre dos nematódeos gastrintestinais.
Fonte: VIEIRA (1967)
FIGURA 06 – Coleta de fezes para exames (OPG) – Fonte:
EMEPA (2006)
FIGURA 07 – Tonalidades da conjuntiva ocular. Fonte:
MOLENTO (2006)
FIGURA 08 - Cabra leiteira com Ectima contagioso (boqueira).
Fonte: EMEPA (2006)
FIGURA 09 – Cabra leiteira com Ectima contagioso (boqueira).
Fonte: EMEPA (2006)
FIGURA 10 - Linfadenite caseosa visceral em um caprino com
abcesso nos principais órgãos (baço com vários abcessos). Fonte:
EMEPA (2006)
FIGURA 11 – Retirada de abcesso de um caprino com Linfadenite
caseosa superficial. Fonte: EMEPA (2006)
14
15
15
17
21
23
24
34
35
41
42

LISTA DE TABELAS
TABELA 1 – Efetivo rebanho ovino e caprino – Brasil e regiões. IBGE –
Produção Pecuária Municipal (2003)
TABELA 2 – Atendimentos clínicos e atividades realizadas. 10
TABELA 3 – Ração usada na E.E.B.M. para animais de 01 a 25 dias
(Ração inicial), de 25 dias ao desmame e após o desmame. EMEPA (2006)
TABELA 4 – Rações usadas para fêmeas no terço final (Ração A) e para
animais que irão participar de exposições e leilões (Ração E) – EMEPA
(2006)
TABELA 5 – Principais anti-helmínticos utilizados no controle da
nematodeose gastrintestinal dos caprinos e ovinos. Vieira e Cavalcante
(1996)
6
12
13
27

1. INTRODUÇÃO
A escolha da Região Nordeste para realização do estágio
supervisionado nas áreas de Ovinocultura e Caprinocultura foi motivada
pela tradição que tem esta região na criação de caprinos e ovinos. A opção
da EMEPA (Empresa de Pesquisa Agropecuária do Estado da Paraíba S/A)
ocorreu por indicação de pessoas ligadas à área e também pelas
informações de que a EMEPA foi pioneira na importação de raças caprinas
como a Boer e a Savana e de ovinos da raça Dorper. Outra razão foi saber
que um dos seus principais objetivos é investir em animais de genética
elevada e espalhar esta genética através do empréstimo de seus
reprodutores para os produtores desenvolverem-na em seus rebanhos
(sistema de comodato). O produtor solicita um reprodutor de uma raça
desejada e em troca a EMEPA recebe 10% dos produtos da cobertura.
O estágio teve a duração de 2 meses, perfazendo uma carga horária
de 464 horas, sendo a primeira parte realizada no período de 01/08/06 a
27/08/06, na Estação Experimental Benjamim Maranhão – E.E.B.M. -
unidade descentralizada da EMEPA e a segunda, no período de 28/08/06 a
29/09/06, na Estação Experimental de Pendência – E.E.P. – tendo enfoque
principal no manejo sanitário sob a supervisão da médica veterinária
Fabianna Fortuna de Freitas (E.E.B.M.) e da médica veterinária Maria
Dalva Bezerra de Alcântara (E.E.P.). Dentro do manejo sanitário foi feita a
revisão bibliográfica e discussão das seguintes enfermidades: Helmintoses
(verminoses), Ectima contagioso (boqueira) e Linfadenite caseosa (mal do
caroço). A escolha dos temas ocorreu em função da quantidade de animais
atendidos acometidos de tais doenças durante o período do estágio.
Porém, foram atendidos casos de Acidose Láctea, pododermatite,
1.

partos distócicos. Ainda foram realizadas necropsias de três animais e a
imobilização do membro dianteiro de um bode e também uma cesariana em
uma cabra. Houve participação também no manejo geral das estações com
o acompanhamento da preparação de rações fornecidas aos diferentes lotes
conforme sua idade e aptidão (Tabelas 3 e 4). Na E.E.B.M. foram
realizados acompanhamentos de cobertura de ovelhas Santa Inês e
assistência à parição de cabras Bôer. Na E.E.P., estes procedimentos
estavam relacionados às cabras leiteiras (Parda alpina, Anglo nubiana,
Alpina britânica) e ovelhas. Estas atividades consistiam em ajuda nos
partos distócicos, limpeza e massagem do nascituro, desinfecção e corte do
umbigo, ajuda para mamar o colostro e identificação dos animais. Nas
fazendas para as quais a EMEPA emprestava reprodutores foram feitas
várias visitas com o objetivo de acompanhar os produtos, fazer a pesagem e
identificação. Na primeira propriedade visitada, as coberturas foram feitas
com reprodutores da raça Dâmara da EMEPA. Na segunda foram utilizados
reprodutores das raças Dorper e Bôer. Na terceira, foram utilizados
reprodutores Moxotó e Canindé.
A E.E.B.M. sediada no Município de Campo de Santana, à 150 km
de João Pessoa, pertence à meso-região do Agreste Paraibano e
microrregião do Curimatã, possuindo as coordenadas geográficas de 6° 29’
18’’ e 35° 38’ 14’’ W.Gr. Fundada em 1959, com uma área total de 262,6
km2 e uma altitude de 168m . O clima é quente e úmido, com precipitações
pluviométricas, oscilando em torno de 800mm anuais. A temperatura oscila
entre 22 e 26°C. possuía um plantel de 319 animais, sendo 103 Boer, 85
ovinos (Dorper, Santa Inês e mestiços), no Centro de Manejo Boer. O
Centro de Manejo Recria é ocupado por cinco machos adultos para leilão,
25 cabritos desmamados, cinco reprodutores e três borregos. O Centro de

Manejo Sede possui 40 cabritos, 29 cabras paridas, dois bodes
reprodutores, 16 novilhas, duas cabras e 45 ovelhas Santa Inês prenhas e
dois reprodutores Santa Inês.
A E.E.P. encontra-se situada no Município de Soledade, na região
dos Cariris Velho Paraibano, localizada a 210 km de João Pessoa, com
temperatura anual em torno de 35°C e a mínima de 22°C, com pequenas
variações. A precipitação pluviométrica apresenta-se em torno de 105 a
705mm/ano e a média geral é em torno de 390mm/ano. Possui uma área de
727ha, ocupada com capim cultivado(Buffel), palma forrageira, açudes,
vegetais nativos. Possui um plantel de 649 animais divididos em vários
rebanhos. No Centro de manejo BNB (Banco do Nordeste do Brasil)
encontram-se 361 animais, sendo: Canindé (30); Santa Inês (116); Dâmara
(18); Dorper (79); mestiços (131). No Projeto Brasil nº 3, contém apenas
caprinos da raça Savana, sendo 25 cabras paridas e 43 cabritos (produtos).
No Centro de manejo Sede, estão os reprodutores assim divididos: quatro
da raça Santa Inês, quatro da raça Savana, três da raça Boer, dois da raça
Dorper, três da raça Alpina Britânica, um da raça Anglo Nubiana e um da
raça Parda Alpina. O Sistema de produção de leite e derivados, contém 200
animais, sendo 32 matrizes e 45 produtos da raça Parda Alpina, 30 matrizes
e 53 produtos da raça Anglo- Nubiana, 21 matrizes e 15 produtos da raça
Alpina Britânica.
Além das atividades citadas anteriormente, a EMEPA tem como um
dos seus objetivos principais desenvolver a genética de todas essas raças e
preparar os animais para participar de leilões, exposições e feiras
agropecuárias no Estado da Paraíba e em todo o Nordeste.

2. HISTÓRICO DA OVINOCULTURA E CAPRINOCULTURA
A cabra foi o primeiro animal domesticado pelo homem capaz de
produzir alimentos. Isso aconteceu há cerca de dez mil anos, conforme
atesta relatos históricos, mitológicos e bíblicos. Os caprinos têm a mesma
origem dos bovinos com tronco ancrestral dos antílopes, sendo as raças
domésticas atuais descendentes da Capra aegagrus, da Pérsia e Ásia
Menor, Capra falconeri, do Himalaia e Capra prisca, da Bacia do
Mediterrâneo. A cabra doméstica é a Capra hircus (RIBEIRO, 1997).
A ovinocultura e a caprinocultura são atividades exploradas em
todos os continentes, sendo que os maiores rebanhos de caprinos estão
localizados na Índia, China e Paquistão. Os países com maiores rebanhos
de ovinos são a Austrália, a China e a Nova Zelândia. Na América do Sul o
rebanho caprino é de 22,8 milhões de cabeças, sendo o rebanho brasileiro o
maior com 12 milhões de cabeças, seguido pela Argentina com 3,4
milhões, Venezuela com 1,8 milhões (Production Yearbook (1994 apud
RIBEIRO, 1997). Cerca de 94,2% dos caprinos do mundo encontram-se em
regiões em desenvolvimento, evidenciando a capacidade do caprino de se
adaptar à condições adversas, justificando sua reputação de animal rústico.
No Brasil, segundo o IBGE (2004), o rebanho de caprinos é de 10
milhões de cabeças e o de ovinos é de 15 milhões. A Região Nordeste é a
mais populosa, possuindo 92% do rebanho brasileiro de caprinos e mais da
metade do rebanho de ovinos. A Bahia é o Estado com o maior rebanho,
4.

3,9 milhões de cabeças de caprinos e 2,9 milhões de ovinos. A Paraíba
ocupa o quinto lugar com 680.741 caprinos e 408.671 ovinos.
No caso de caprinos a supremacia do Nordeste é muito grande, pois
o Sudeste, que ocupa o segundo lugar, tem apenas 2,36%, contra os 92,95%
acima citados. Observa-se que são menos de 5% dos caprinos distribuídos
pelas demais regiões geográficas do país (Tabela 1).
A criação de ovinos e caprinos vem se destacando a cada dia e já se
tornou mais uma alternativa para o produtor rural. A produção de carne de
caprinos e ovinos de 2003 a 2005 cresceu 6,5%, significando o maior
avanço relativo, dentre os principais tipos de carne, embora represente
apenas 5% do volume total. Os sistemas produtivos têm mudado e mais
produtores estão explorando a criação de pequenos ruminantes. Ao longo
das últimas décadas a ovinocultura e caprinocultura sofreram
transformações radicais nos elos de suas cadeiras produtivas, em
decorrência da notória expansão dos mercados interno e externo
(NOGUEIRA JUNIOR, 2005).
Tabela 1 - Efetivo Rebanho Ovino e Caprino – Brasil e Regiões
Regiões Ovinos % Caprinos % Total %
Brasil 14.556.484 100 9.581.653 100 24.138.137 100
Nordeste 8.233.014 55,56 8.905.773 92,95 17.138.787 71
Norte 407.643 2,8 140.359 1,46 548.002 2,27
Centro-Oeste 799.984 5,5 103.724 1,08 903.708 3,74
Sul 4.622.365 31,75 205.707 2,15 4.828.072 20
Sudeste 493.478 3,39 226.090 2,36 717.568 2,98
Fonte: IBGE – Produção Pecuária Municipal, 2003

3. ATIVIDADES DESENVOLVIDAS
Durante o período do estágio supervisionado nas Estações de
Pendência e Benjamim Maranhão, foi realizado o acompanhamento dos
técnicos em agropecuária e os veterinários no manejo geral dos animais,
nos diferentes centros, lidando com raças diferentes e animais de várias
idades.
Uma das atividades realizadas com a presença do inspetor da
APACCO (Associação Paraibana dos Criadores de Caprinos e Ovinos) foi
a tatuagem dos animais para efeito de registro. Na tatuagem de animais
feita na orelha direita consta o número do Estado em que nasceu o animal,
juntamente com o número de inscrição da empresa junto a APACCO, ou
seja, cinco números, sendo que os dois primeiros representam o Estado que
o animal nasceu e os últimos o número da empresa.. Na orelha esquerda foi
tatuado o ano que o animal nasceu e o número de seqüência dos
nascimentos, ou seja, 06001 para o primeiro animal nascido em 2006 na
propriedade.
Outras atividades periódicas acompanhadas nas Estações foram a
pesagem e a biometria dos animais, para avaliação do desenvolvimento
corporal e ganho de peso. A biometria consiste nas seguintes medidas:
altura da cernelha (AC), profundidade do torax (PT), comprimento da
perna (CP), comprimento do corpo (CC), abertura do peito (AP), perímetro
toráxico (PTX) e perímetro da coxa (PC). A biometria é feita de 28 em 28
dias com um paquímetro ou fita métrica. Um manejador faz a contenção
do animal e o técnico realiza a medição. Outra atividade periódica é o

casqueamento, que era realizado com o auxílio de uma tesoura própria ou
canivete bem amolado, retirando-se o excesso do casco. Na E.E.P., um mês
antes da Exposição Agropecuária de Campina Grande, começou-se a
preparação dos animais com: banho, escovação, alimentação diferenciada
com complemento vitamínico e energético, treinamento para andar no
cabresto junto ao manejador.
Foram realizadas nas duas Estações a coleta de fezes para OPG
(Ovos por Grama de Fezes) e de sangue para hematócrito de animais que
apresentavam a conjuntiva clara e o estado corporal baixo, e que muitas
vezes apresentavam diarréia. Foi realizada a coleta de fezes em ovelhas 15
dias antes e 15 dias após o parto para avaliar a infestação parasitárias
desses animais, uma vez que nesse período do periparto a imunidade fica
baixa e a eliminação de ovos de nematódeos gastrintestinais aumenta.
Houve também um atendimento e acompanhamento de um caprino
da raça Savana de alto valor genético que iria para a exposição de Campina
Grande. O animal apresentou apatia, anorexia e fezes moles. Após a
realização do exame clínico foi constatado um quadro de acidose (sintomas
de acidose). O tratamento imediato foi fluidoterapia para controlar a
desidratação. Administrou-se bicarbonato de sódio e líquido ruminal
coletado de um animal sadio. A acidose foi diminuída e a diarréia
combatida com Borgal.
Houve acompanhamento e participação de uma cesariana em uma
cabra Savana de alto valor zootécnico que estava sendo preparada para a
exposição em Campina Grande. O animal começou com alteração no
comportamento, inquietude, vulva edemaciada com secreção escura.
Esperou-se 48 horas pela parição, que não aconteceu. Não houve dilatação,
e foi necessária a realização da cesariana e a retirada do cabrito que já
estava morto e enfizematoso. A cabra foi bem cuidada no pós-operatório,
recuperou-se, porém, ficou fora da exposição.

Tabela 2 - Atendimentos clínicos e atividades realizadas.
Casuística Caprino Ovino

Partos distócicos 1 2
Pododermatite 4 0
Aborto 1 0
Anemia 4 3
Pneumonia 3 0
Retenção de placenta 0 1
Drenagem de abcesso – Linfadenite 5 2
Ectima contagioso 30 0
Coleta de material para p/CAE 12 8
Coleta de fezes 20 0
Coleta de sangue 12 0
Acidose Lactea 1 0
Cesariana 1 0
Diarréia 10 10
Vacina contra clostridiose Todos Todos
Vermifugação 10 20
Tatuagem Todos Todos
Cobertura controlada 56 45
Exame de OPG 0 25
Necropsia 3 2
Cuidados com o parto 25 30
Corte e desinfecção do umbigo 60 40
Ajuda para mamar colostro 10 15
Colocação de brincos 40 60

4. MANEJO GERAL DO REBANHO
O manejo era iniciado com a limpeza dos apriscos (chiqueiros) e
fornecimento do alimento e água para os animais. Neste momento, os
técnicos em agropecuária já começam a inspecionar os rebanhos e observar
possíveis alterações e mudanças de comportamento dos animais (diarréia,
animais apáticos ou que não acompanham o rebanho). Estas alterações
eram comunicadas ao veterinário responsável para que fosse realizado o
respectivo tratamento.
Os animais nas E.E.P. e E.E.B.M. são separados por categorias:
matrizes, reprodutores e crias. Cada fase tem um manejo específico de
acordo com a idade e o sexo. Os animais são pesados logo após o
nascimento e a cada 28 dias, mantendo um acompanhamento intensivo,
registrados em fichas de controle zootécnico (anexo 2). Os animais são
criados em regime intensivo e semi-intensivo. No sistema intensivo são
separados em piquetes de acordo com a categoria animal, a alimentação era
composta por volumoso à base de silagem de milho ou feno de capim tifton
e concentrado elaborado com caroço de algodão e farelo de milho. No
sistema semi-intensivo, os animais se alimentam de pastagem cultivada
(Buffel e Urucloa) e nativa e retornam ao aprisco duas vezes ao dia para
receber suplementação alimentar com volumoso (feno ou silagem) e farelo
de milho, além de sal mineral.
As rações utilizadas na E.E.B.M. eram elaboradas visando atender as
exigências nutricionais dos animais, de acordo com a idade, estado
fisiológico e também para os animais selecionados para participar de
exposições e leilões (Tabela 3).

Tabela 3 - Ração usada na E.E.B.M. para animais de 01 a 25 dias (ração
inicial); de 25 dias ao desmame e após o desmame.
Ração inicial/até 25d % 25 dias/desmame % Após desmame %
Milho triturado
Farelo de trigo
Farelo de soja
Sal mineral
Fonte: EMEPA, 2006
50
30
18
02
Milho triturado
Feno de tifton
Farelo de soja
Farelo de trigo
Sal mineral
Calc. calcítico
56
15
23,5
3,5
01
01
Milho triturado
Feno de tifton
Farelo de soja
Farelo de trigo
Sal mineral
Calc. calcítico
Na E.E.B.M. é usada, também, ração diferenciada para fêmeas no
terço final da gestação (Ração A) e para animais que irão participar de
exposições e leilões (Ração E), conforme tabela 4:
Tabela 4 – Rações usadas para fêmeas no terço final (Ração A) e para
animais que irão participar de exposições e leilões (Ração E).
30
30
18
20
01
01

Ingredientes Ração A - % Ração E - %
Milho moído 30,0 28,0
Farelo de trigo 32,5 15,0
Torta de algodão 15,0 0
Caroço de algodão 20,0 8,0
Farelo de soja 0 0
Feno de titfon 0 30,0
Cloreto de amônio 0,5 0,5
Calcário 1,0 0,7
Sal mineral 1,0 0,7
Total 100,0 100,0
Energia 77,0 72,0
Proteínas 17,0 18,5
Fonte: EMEPA, 2006
Outra atividade importante acompanhada durante o estágio foi a
escrituração zootécnica. A EMEPA, periodicamente, recebe a visita de um
inspetor do Serviço de Registro Genealógico da APACCO, para
inspecionar e tatuar os animais. Aqueles que são aprovados na inspeção,
recebem o registro provisório e se tudo correr bem com o animal, na
próxima visita ele recebe o registro definitivo. O escritório da EMEPA faz
uma comunicação de cobertura para a APACCO, e na época da parição faz-
se a comunicação dos nascimentos, afim de que, quando o inspetor for
chamado para fazer a tatuagem, a APACCO já tenha a relação dos animais
existentes na propriedade. São usados vários formulários para
2.

controlar a escrituração zootécnica dos animais a partir da cobertura (
Anexo 2).
Os animais da EMEPA destinados à reprodução recebem brincos de
cores variadas, conforme a raça. Os que se originam do sistema de
comodato, são destinados à realização de pesquisa e experimentos,
recebem brincos de uma só cor e forma diferente daqueles usados nos
animais de reprodução (Figura 1).
Figura 1 – Colocação de brinco em um ovino.
Fonte: EMEPA (2006).
No período de parição a assistência às parturientes é permanente e os
estagiários e veterinários podem ser chamados a qualquer momento para
ajudar nos partos (Figura 2 e 3).
3.

Figura 2 – Parto distórcico de uma ovelha.
Fonte: EMEPA (2006)
Figura 3 – Parto distócico.
Fonte: EMEPA 2006

5. MANEJO SANITÁRIO
O manejo sanitário animal constitui um dos lados do triângulo
formado juntamente com os aspectos nutricionais e reprodutivo. Sendo a
nutrição um dos esteios que sustentem o tripé, ela deve ser a preocupação
primordial do criador, pois, animais bem alimentados e bem nutridos são
animais fortes e que dificilmente adoecem. Animais bem nutridos
reproduzem melhor. As doenças porém podem estar na própria alimentação
ou podem ocorrer com alimentação inadequada, ou podem entrar nas
propriedades de repente, trazidas por um animal que vai a uma exposição
ou que é adquirido de locais contaminados. As doenças podem ser
transmitidas por outras espécies de animais.
A vacinação é a maneira mais segura de evitar doenças. Nas estações
de Pendência e Benjamim Maranhão, os animais são vacinados contra
Clostribioses da seguinte forma: a primeira dose é aplicada quando o
animal completa um mês de vida, quando a mãe foi vacinada, e na segunda
semana de vida quando a mãe não foi vacinada. A segunda dose é aplicada
aos 21 dias após a primeira e a terceira dose após quatro meses depois da
última dose. As cabras prenhes podem ser vacinadas em qualquer período
da gestação. A dose é de 2ml para ovinos e caprinos pela via subcutânea. A
vacinação contra raiva é feita em todos os animais a partir dos quatro meses
de idade com revacinação anual. A dose de vacina é de 2ml por via
subcutânea e intramuscular (Figura 4).

Figura 4 – Aplicação de vacina em caprino.
Fonte: EMEPA (2006)
Segundo Pugh (2004), os programas de manejo sanitário do rebanho
devem ser elaborados especificamente para uma propriedade, de forma
individual, e varia de acordo com o tamanho do rebanho, seu objetivo e as
metas de produção de proprietário. As práticas de manejo sanitário devem
ser elaboradas em separado para cada categoria de animal. As fêmeas
secas, em final de gestação e paridas são cuidadas de forma diferente. Os
neonatos, crias desmamadas e reprodutores, devem receber tratamento
diferenciado.
4.

5.1 - HELMINTOSES (Verminoses)
5.1.1. Etiologia
As helmintoses de caprinos e ovinos são causadas por parasitos
pertencentes às classes Nematoda, Cestoda e Trematoda. Os principais
gêneros parasitos de caprinos e ovinos são: Haemonchus, Trichostrongylus,
Strongilóides, Moniezia, Cooperia, Oesophagostomum, Trichuris e
Cisticercus (RIET-CORREIA, et all, 2003 e AMARANTE, 2005).
Os trichostrongilídeos, incluindo Dictyocaulus, são responsáveis por
mortalidade considerável e morbidade difusa, especialmente em
ruminantes. Os gêneros mais importantes do trato digestivo são
Haemonchus, Ostertágia, Trychostrongylus, Cooperia, Nematódirus,
Hyostrongylus, Marshallagia e Mecistocirrus (URQUHART, et all. 1998).
A elevada prevalência associada a grande patogenicidade, faz do
Haemonchus contortus a principal espécie endoparasita de ovinos e
caprinos na região semi-árida e no Brasil. Este parasito do abomaso é
hematófago, ou seja, se alimenta de sangue. Os animais com carga
parasitária elevada podem apresentar anemia e edema submandibular e os
casos de mortalidade por este parasito são relativamente comuns. Em
seguida, em ordem de importância aparece a espécie Trichostrongylus
Colubriformis, parasito do intestino delgado, presente praticamente em
todas as criações de ovinos e caprinos. Esses lesam a mucosa intestinal
provocando exsudação de proteínas séricas para a luz intestinal. Em
grandes infecções os animais podem apresentar anorexia, diarréia e edema
submandibular (papeira) (AMARANTE, 2005 e RIET-CORREIA, et all,
2003).
5.

5.1.2. Epidemiologia
A epidemiologia é o estudo dos fatores, inter-relacionados, que
levam ao aparecimento de doenças numa população. No caso das
namatodeoses gastrintestinais, a presença do verme não significa
necessariamente a presença da doença. Os principais fatores que interferem
na epidemiologia dos nematódeos gastrintestinais são os relacionados ao
ambiente e ao hospedeiro. Os nematódeos possuem um ciclo evolutivo
direto com um período de desenvolvimento no hospedeiro (fase parasitária)
e outro no meio ambiente (fase de vida livre). A fase ambiental se inicia
com a liberação dos ovos na pastagem através das fezes e o
desenvolvimento das larvas até L3 (larva infectante), que dura
aproximadamente sete dias, dependendo da temperatura e da umidade
(figura 5). O ciclo parasitário propriamente dito se inicia com a ingestão
das larvas infectantes juntamente com o pasto pelo hospedeiro onde
desenvolve-se para atingir o estágio adulto. O período pré-patente, ou seja,
a partir da infecção até a eliminação dos ovos através das fezes, é de
aproximadamente 21 dias (Santa Rosa, 1996). A L3 após ser ingerida pelo
hospedeiro chega até o abomaso ou intestino, penetra nos tecidos e muda
para L4. Depois de 10 dias muda para L5 e emerge dos tecidos e se
transforma em verme adulto na luz do órgão. As fêmeas iniciam a
ovipostura, que pode variar de 100 a 10.000 ovos/dia/fêmea, dependendo
da espécie (RIET-CORREA, 2001).
Na maioria das vezes, as infecções naturais por tricostrongilídeos
abrangem uma mescla de espécies. A importância de cada uma delas é
variável conforme a região e a estação do ano. Nas áreas onde o inverno é
chuvoso, a Ostertágia tende a ser o gênero de maior importância clínica em
6.

ovinos e bovinos, predominando o Haemonchus nas regiões em que o
verão é chuvoso. As características das doenças são determinadas por
fatores que influenciam a susceptibilidade do hospedeiro, a quantidade de
larvas infectantes acumuladas nas pastagens e o número de larvas
hipobióticas. A Hipobiose acontece durante o período em que as condições
ambientais são adversas. Assim a Hipobiose assegura que a nova geração
de adultos fique apta à oviposição logo que as condições ambientais se
tornem favoráveis (RADOSTISTIS, 2002).

Figura 5 - Fases de vida livre dos nematódeos gastrintestinais.
Fonte: Vieira (1967)

5.1.3. Sinais Clínicos
Os sinais clínicos caracterizam-se por anorexia, menor ganho de
peso, emagrecimento progressivo, desidratação, pelo hirsuto, fezes pastosas
e, posteriormente, diarréia. Em ovinos a ocorrência de fezes pastosas ou
diarréicas pode ser detectada pela presença de excrementos secos presos na
lã da região perineal (RIET-CORREA, 2001). No estado crônico observa-
se edema submandibular, debilidade orgânica geral, queda progressiva da
produção leiteira e, na maioria das vezes, morte (SANTA ROSA, 1996).
5.1.4. Diagnóstico
O diagnóstico das nematodeoses gastrintestinais pode partir de uma
avaliação clínica dos animais, contudo, somente sinais clínicos não são
suficientes para um diagnóstico preciso, visto que existem outras
enfermidades que apresentam sinais clínicos semelhantes aos das
verminoses. A necropsia com contagem parasitária, a contagem de ovos
por grama de fezes (OPG) e a cultura de larvas são as técnicas que devem
ser utilizadas para confirmar as suspeitas clínicas. Deve-se ter cuidado na
interpretação do OPG, pois nem sempre esse exame reflete o número de
nematódeos presentes nos animais. Fatores como estado imunitário do
animal, espécies presentes, capacidade de oviposição, consistência das
fezes e estágio dos parasitos no interior do hospedeiro podem interferir no
resultado do exame (RIET-CORREA, 2001).
A colheita das fezes para exame laboratorial deve ser feita
diretamente do reto do animal com luvas de plástico descartável. Em
animais de pequeno porte, introduz-se apenas um dedo. Em animais
maiores pode-se introduzir dois dedos, fazendo-se uma massagem na
mucosa retal. Após ter obtido o material, descalçar a luva, invertendo-a,
podendo dar-lhe um nó para melhor conter as fezes colhidas. O envio para

o laboratório deve ser o mais rápido possível e as amostras de fezes devem
ser acondicionadas em caixa isotérmica com gelo. Recomenda-se que seja
coletado material de dez animais por categoria, incluindo animais
saudáveis e animais com sinais de verminose (MOLENTO, 2006).
Figura 6 - Coleta de fezes para exames (OPG)..
Fonte: EMEPA, 2006

Segundo Molento (2006), a utilização do método Famacha é de
grande utilidade para identificar os animais que receberão ou não
tratamento, observando a coloração da conjuntiva ocular e correlacionando
o resultado com o valor do hematócito (Figura 7). Quando o animal
apresenta mucosa ocular muito clara e hematócrito abaixo de 30%, deve-se
trata-lo imediatamente. Na EMEPA era aplicado rotineiramente e somos a
favor da aplicação deste método, uma vez que é de fácil aplicação e reduz a
medicação com anti-helmintícos e ajuda a despoluir o ambiente.
7.

5.1.5 - Controle e Profilaxia
Figura 7 - Tonalidades da conjuntiva ocular.
Fonte: Molento (2006)
A partir do diagnóstico laboratorial (OPG) devem ser implementadas
medidas de controle. Contudo, não é indicado apenas o controle químico
pelo uso de anti-helmínticos, pois esses conferem uma segurança relativa,
principalmente, quando as pastagens estão muito contaminadas ou quando
8.

há resistência ao princípio ativo utilizado. Deve-se evitar a superpopulação
de animais, assim como o pastoreio prolongado em determinada área, que
favorece o aumento de ofertas de formas infectantes aos animais. É
necessário utilizar tratamentos estratégicos que tenham como princípio
básico o conhecimento do estado parasitológico dos hospedeiros e do
ambiente (RIET-CORREA, 2001).
Santa Rosa (1996) recomenda tratamento estratégico após o estudo
epidemiológico em regiões onde as estações do ano são bem definidas.
Consiste na aplicação dos anti-helmínticos em épocas pré-determinadas,
antes que ocorra aumento significativo da população de parasitas no
rebanho e na pastagem. Basicamente consiste na concentração das
vermifugações no período seco visando o controle dos parasitas em seus
respectivos hospedeiros, pois, nessa época do ano, são os únicos locais de
sobrevivência do parasita. Desse modo, ocorrerá a descontaminação da
pastagem no período chuvoso.
Segundo Amarante (2005), o controle de helmintose de pequenos
ruminantes não pode depender apenas da aplicação de anti-helminticos.
Portanto, deve-se acrescentar a essa prática a criação de animais
geneticamente resistentes aos nematódeos, bem como a adoção de práticas
de manejo que visem a redução da contaminação ambiental pelos estágios
de vida livre dos parasitos, tendo em vista que a maioria dos nematódeos
apresenta duas fases distintas no seu desenvolvimento: uma fase parasitária
que ocorre no hospedeiro e que se inicia com a ingestão da larva infectante
e completa com o parasita adulto eliminando ovos nas fezes. A outra fase
ocorre na pastagem que é a vida livre que vai do ovo até a larva infectante.
Costa e Vieira (1984 apud Vieira 1997) ressaltaram a importância da
adoção de um controle estratégico para a helmintose de pequenos
ruminantes. Este controle é um programa baseado em estudos
epidemiológicos regionais, que permitem conhecimento da dinâmica

populacional dos parasitos, no hospedeiro e no meio ambiente. O
tratamento é realizado em épocas pouco favoráveis à sobrevivência das
larvas de nematódeos gastrintestinais no ambiente e, consequentemente,
menor risco de infecção dos animais após o tratamento. Os autores
recomendam o seguinte esquema para a região semi-árida:
- Primeira medicação: início do período seco (junho ou julho)
- Segunda medicação: 60 dias após primeira (agosto/setembro)
- Terceira medicação: final do período seco (novembro)
- Quarta medicação: meados do período chuvoso (março)
A aplicação de anti-helmínticos deve ser feita racionalmente, através
de dosificações estratégicas, que visem diminuir o número de formas
infectantes na pastagem; dosificações táticas, que são realizadas para cobrir
o tempo entre duas dosificações estratégicas, motivadas por fatores
climáticos, como umidade e temperatura aumentados; e dosificações
curativas, utilizadas quando aparecem sinais clínicos de parasitose ou
morte de animais. O objetivo das dosificações estratégicas é de administrar
anti-helmínticos quando os parasitos estão em menor número na pastagem,
ou em épocas em que as condições climáticas estiverem desfavoráveis à
sobrevivência dos estágios de vida livre (RIET-CORREA, 2001).
Vieira (1997) apresentou em forma de tabela vários grupos de anti-
helmínticos desenvolvidos para atuar sobre ovos, larvas, formas imaturas e
adultos dos nematódeos gastrintestinais (Tabela 5).
Tabela 5 - Principais anti-helmínticos utilizados no controle da nematodeose
gastrintestinal dos caprinos e ovinos
Grupo
Químico
Benzimidazóis e
pró-benzimidazóis
Princípio
Ativo
Albendazol
Albendazol
Nome
Comercial
Albendathor 1,9%
Anor 10%
indicação Dose Via de aplicação
Cap Ovi Oral S.C. I.M
.
+
+
+
+
4,75mg/kg (2,25ml/kg)
4,75mg/kg(4,048ml/kg)
+
+

Oxfendazol Systamex 2,65% + + 5,0mg/kg (0,22ml/kg)
Fenbendazol Panacur 3,3% (químio) + + 5,0mg/kh (0,15ml/kg)
Albendazol Ovalben 1,9%
+ + 4,75mg/kg(0,25ml/kg)
Imidotiazóis e C.tetramisol+
+ +
Pirimidina C.prometazina Adevermin inj. 10% + + 6,6mg/kg (0,066ml/kg)
C.levamisole Ripercol sol.oral 5% + + 7,5mg/kg (0,15ml/kg)
C.tetramisol Tetramisol fagra11,75% + 7,8mg/kg (0,066ml/kg)
C.tetramisol Vermisol- RF 10%
+ 6,6mg/kg (0,066ml/kg)
Salicilanilidas e Closantel Nitrofenol
+ 10mg/kg (1,1ml/kg)
Substitutos
Nitrofenólicos
Diantel Rumivac oral 8% + + 8mg/kg (1,1ml/kg)
Organofosforados* Triclorfon Triclovet oral pó 97% + + 100mg/kg (1mlkg de
uma solução a 10%)
Avermectinas Ivermectin Ivomec solução 0,08% + + 0,2mg/kg (0,25ml/kg) + Axila, face
Ivermectin Ivomec infetável 1%
+ 0,2mg/kg (0,02mlkg) interna coxa
Milbermicinas Moxidectin Cydectin injetável 1% + 0,2mg/kg(0,02ml/kg) Axila, face
interna coxa
FONTE:Vieira & Cavalcante (1996). Dados não publicados.
* Somente consumir a carne e o leite sete dias após a vermifugação. Não
vermifugar fêmeas prenhes. Em caso de sinais de intoxicação, aplicar
sulfato de atropina.
Antes de investir em tratamentos com anti-helminticos, os produtores
deveriam investir na realização de exames laboratoriais para verificar se a
aplicação de tratamento é realmente necessária. Além disso, apenas com
exame copropasitológicos periódicos pode-se determinar se a droga que
está sendo utilizada em uma propriedade está tendo a eficácia esperada
contra uma determinada população de helmintos (AMARANTE 2005).
Costa e Vieira (1984 apud Vieira 1997) ainda recomendam as
seguintes medidas profiláticas adicionais para o controle de nematódeos:
- Limpar e desinfetar as instalações;
- Manter as fezes em locais distantes dos animais ;
- Evitar super-população nas pastagens;
- Separar os animais por faixa etária;
- Vermifugar os animais ao trocar de área;
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+

- Incorporar ao rebanho animais vermifugados;
- Manter os animais no aprisco até no mínimo doze horas após a
vermifugação;
- Animais jovens ao ser vermifugados devem ser colocados em
pastagem descontaminadas;
50 dias.
- Descanso da pastagem em épocas chuvosas deve ser superior a
5.1.6 - Situação Acompanhada
Na E.E.P., é realizado o controle estratégico, observando os estudos
epidemiológicos regionais, o período seco e o período chuvoso, visando a
utilização de anti-helmínticos em épocas menos favoráveis à sobrevivência
das larvas de nematódeos gastrintestinais no ambiente, como recomenda
Costa e Vieira (1984). Realiza-se também exames periódicos para que
conheça a situação dos rebanhos , antes de fazer o tratamento com anti-
helmínticos e para isso utiliza a seguinte técnica de exame parasitológico:
Método de Gordon e Whitlock modificado
Objetivo: identificação e contagem de ovos de helmintos por grama de
fezes (OPG). Indicado para fezes de grandes animais.
Princípio: método de flutuação associado à contagem de ovos, usando a
câmara de Mc-Master.
Material: duas a três gramas de fezes pesadas em balança, solução
hipersaturada de NaCI (400g de sal para 1000ml de água), câmara de
McMaster, bastão de vidro, proveta graduada, copo, tamis e pipeta de
Pasteur com pêra de borracha.

Técnica: tritura-se duas a três gramas de fezes em um copo com bastão de
vidro e acrescentar 60ml de solução hipersaturada de NaCI
*homogeniza
*passa a mistura através do tamis
*retira-se o tamis
*homogeniza o líquido e com a pipeta de Pasteur retira uma amostra
para encher a câmara. Repete a operação e enche a outra célula.
*espera dois minutos para os ovos flutuarem e depois observa ao
microscópio na objetiva de 10x.
células).
*em seguida, era feita a contagem dos ovos contidos na câmara (duas
Observação: O significado da contagem de ovos por grama de fezes não é
indicativo real do grau de infecção do hospedeiro, devendo sempre levar
em consideração alguns fatores como hora do dia da coleta do material,
idade, nutrição, imunidade, alterações fisiológicas e patológicas dentre
outras.
5.2 – ECTIMA CONTAGIOSO
O ectima contagioso, também conhecido como boqueira, é uma
doença viral dos caprinos e ovinos, transmissível ao homem, caracterizada
pelo aparecimento de pápulas, vesículas, pústulas, e formação de crostas,
que acomete mais os animais jovens. A menor incidência em adultos se
deve possivelmente a imunidade de vacinações prévias ou infecções
passadas (RIBEIRO,1997 E SANTA ROSA, 1996).
5.2.1 – Etiologia
Vírus muito resistente do grupo DNA, pertencente à família
Poxviridae do gênero parapoxivirus. Liofilizado ou em congelamento a

menos 20 graus conserva-se por três anos e nas pastagens pode permanecer
por um ano. Não resiste a temperatura de 60 graus por 30minutos e é des-
truído pelo fenol a 5%. O vírus encontra-se no solo e invade as células epi-
teliais da mucosa da boca através de pequenas soluções de continuidade ou
ferimento. A partir daí, origina-se a lesão proliferativa do tecido epidermal
(SANTA ROSA, 1996).
Segundo Vieira (1967), a causa determinante do ectima é um vírus
filtrável, dermotrópico (com predileção para a pele), da mesma família da
varíola, mas com poder antigênico diferente.
O agente é um poxvirus do subgrupo parapoxvirus, que também
inclui o pseudo poxvirus, causador dos nódulos dos ordenhadores dos seres
humanos (vírus da Paravacínia), e o agente da estomatite papular bovina.
Existem diferenças biológicas entre cepas do vírus do ectima contagioso,
mas essas diferenças não são expressas antigenidamente, apenas um
sorotipo é reconhecido (SMITH, 1993).
O ectima é causado pelo parapoxvirus composto, no mínimo, de seis
cepas imunológicas.O gênero parapoxvirus contém o vírus da ectima, vírus
da estomatite papular, vírus da pseudo varíola e vírus do actima contagioso
da camurça. O vírus do ectima é imunologicamente distinto da vacínia, mas
semelhante ao agente causador da pseudo varíola, e antigenicamente
semelhante ao vírus da varíola caprina, mas não com o vírus da varíola
ovina. O vírus do ectima é prontamente transmitido para o homem
(ROBINSON, 1981 E 1988, apud RADOSTITS, 2002), principalmente,
trabalhadores de abatedouro que manipulam lã e couro.
5.2.2 - Sinais Clínicos
9.

A lesão primária se desenvolve na pele dos lábios e se estende para a
mucosa oral. Ocasionalmente, encontram-se lesões nos pés, na região
interdigital e ao redor da coroa. As ovelhas e cabras que amamentam suas
crias infectados podem desenvolver lesões no úbere. Nos cordeiros jovens a
lesão inicial pode se desenvolver na gengiva, abaixo dos dentes incisivos.
As lesões se desenvolvem como pápulas e progridem pelos estágios
vesicular e pustular, antes de formar crosta. A coalescência de muitas
lesões discretas costuma levar à formação de crostas grandes e a
proliferação do tecido dérmico produz uma massa verrucosa debaixo delas.
Quando a lesão se estende para a mucosa oral desenvolve-se uma
necrobacilose secundária (MANUAL MERK DE VETERINÁRIA, 2001).
Segundo Santa Rosa (1996), os sintomas clínicos caracterizam-se por
lesões com as seguintes evoluções: pápulas (com proliferação do tecido
epidermal), vesículas, pústulas, úlceras e crostas. Essas lesões proliferativas
do tecido epidermal aparecem principalmente nos lábios, nas gengivas, nas
narinas, no úbere e, às vezes, na língua, na vulva, nos olhos, nos espaços
interdigitais e nas coroas dos cascos. Quando as lesões aparecem dentro da
boca a mucosa toma uma coloração acinzentada, com ulcerações
sanguinolentas que exalam um odor fétido. Nesse caso, o animal fica
impossibilitado de comer. Ao engolir saliva contaminada a infecção se
propaga para o estômago, intestinos e pulmões provocando a morte.
5.2.3 – Diagnóstico
O diagnóstico diferencial segundo Radostitis (2002) deve ser feito
com a Língua azul, a Dermatite ulcerativa, Dermatite proliferativa
(podridão do pé em formato de morango) e com a varíola ovina. Embora
exames laboratoriais não sejam efetuados com o objetivo de diagnóstico,
um diagnóstico definitivo pode ser feito através de sorologia (teste de
difusão em agar-gel),fixação de complemento e cultura de tecido no tecido

testicular, porém a microscopia eletrônica é o método mais rápido e mais
confiável.
5.2.4 – Tratamento
Não existe tratamento específico, recomenda-se a utilização de anti-
séptico após a limpeza das lesões e a remoção das crostas. Tem-se aplicado
com sucesso a solução de iodo a 10%. No úbere, as lesões devem ser
tratadas com solução de iodo e glicerina na proporção de 1:3 ou solução de
ácido fênico a 3% mais glicerina (SANTA ROSA, 1996).
5.2.5 – Controle
A doença é controlada pela vacinação sistemática. Nos casos de
aparecimento da doença em propriedade onde os animais não foram
vacinados, deve-se isolar os animais doentes e vacinar os demais (SANTA
ROSA, 1996). A vacinação é de pouco valor quando grande número de
animais já está acometido. A vacina é preparada a partir de suspensão de
crostas em glicerol salina, sendo pintada em pequena área da pele
escarificada na coxa. A vacinação é completamente eficaz no mínimo por
dois anos, mas os cordeiros devem ser inspecionados uma semana após a
vacinação para assegurar-se de que resultaram lesões locais. A ausência de
reação local significa falta de viabilidade da vacina ou de imunidade
anterior. A imunidade não é sólida até três semanas após a vacinação.
(RADOSTITIS, 2002).
5.2.6 - Situação Acompanhada
Na Estação Experimental de Pendência no período de 28/08/06 a
29/09/06, ocorreram dezenas de casos de actima contagioso no rebanho de
10.

cabras leiteiras das raças Anglo-nubiana, Parda Alpina e Alpina Britânica
que ficaram no centro de manejo chamado sistema de produção de leite e
derivados (figuras 6 e 7). A princípio eram umas poucas cabras isoladas,
depois este número foi aumentando à medida que o pasto ia ficando seco e
endurecido. As crostas eram retiradas e aplicava-se a solução de iodo a
10% glicerinado. Uma vez por semana o curativo era feito com benzofenol.
As cabras com poucas lesões ou lesões superficiais em duas semanas já
estavam curadas. As cabras com lesões mais profundas, atingindo as
gengivas e a mucosa oral o curso da doença demorava mais de três
semanas. Segundo relato dos manejadores e dos técnicos agrícolas
responsáveis, a época da seca, quando os animais lesionam o focinho no
pasto duro e em várias espécies de cactos existentes no campo, propicia o
aparecimento das boqueiras, uma vez que o vírus resiste muito tempo no
solo. O rebanho era inspecionado diariamente para isolar as cabras que
apresentavam princípio de boqueira, ao mesmo tempo que aquelas tratadas
e recuperadas eram soltas para o campo.

Figura 8 – Cabra c/ Ectima contagioso (boqueira).
Fonte: EMEPA (2006)
Figura 9 – Cabra leiteira com Ectima contagioso (boqueira).
Fonte: EMEPA (2006)
5.3. LINFADENITE CASEOSA (Mal do caroço)
Essa abscedação caseosa dos linfonodos e órgãos internos de
caprinos e ovinos ocorre mundialmente. Trata-se de uma infecção
endêmica importante nas regiões com grandes populações de ovinos e
caprinos. As perdas econômicas resultam da redução no ganho de peso,
eficiência reprodutiva e produção de lã e leite, bem como da condenação de
11.

carcaças e desvalorização de couros (MANUAL MERCK DE
VETERINÁRIA, 2001).
5.3.1. Etiologia
A linfadenite caseosa, vulgarmente conhecida como mal-do-caroço,
é causada pelo Corynebacterium pseudotuberculosis, bacilo gram-positivo,
pleomorfico, aeróbio, que cresce em ágar sangue em 24-48 horas e causa
hemólise. Tem uma toxina termo lábil, dermonecrótica, que é uma
fosfolipidase a qual atua como esfingomielinase e causando aumento da
permeabilidade vascular. Produz também um lipídio de superfície,
leucotóxico, que o protege da fagocitose (RIET-CORREA, 2001).
O Corynebacterium pseudotuberculosis também é a causa da
linfangite ulcerativa dos bovinos e eqüinos, da acne contagiosa do eqüino,
descritas, porém, como doenças distintas, pois parece ter patogênese
diferente e não ocorrem em associação com a linfadenite caseosa
(RADOSTITS et all, 2002).
Esse pequeno Bastonete Gram-positivo é um parasita intracelular
facultativo encontrado em fômites, no solo e esterco contaminados com
exsudato purulento. Já se identificaram dois biótipos: um grupo nitrato-
negativo (infecta ovinos e caprinos) e um grupo nitrato-positivo (infecta
eqüinos). Os isolados de bovinos são grupos heterogêneos (MANUAL
MERCK DE VETERINARIA, 2001).
5.3.2. Epidemiologia
No Brasil a doença tem sido diagnosticada em todos as regiões onde
se aplica a ovinocultura e a caprinocultura. A prevalência na região
Nordeste pode chegar a 50% em virtude da presença nessa região de várias
espécies de plantas cetáceas, que causam ferimentos na pele de caprinos e

ovinos, favorecendo a infecção por Corynebacterium pseudotuberculosis
(LANGENEGER, 1988, apud RIET-CORREA, 2001).
Segundo Radostitis (2002), a linfadenite caseosa apresenta aumento
da prevalência relacionado a idade, alcançando seu pico de incidência nos
adultos, pelo fato desses estarem mais expostos aos fatores de risco
(tosquia, pastejo no campo, banhos contra ectoparasitas). As fontes de
infecção são os corrimentos dos linfonodos superficiais, que se abscedam e
se rompem e as secreções nasal e bucal dos animais com abscessos
pulmonares que drenam para a árvore brônquica. O microorganismo pode
sobreviver no solo infectado por pus por até 08 meses; em galpões de
tosquia infectado por 04 meses; na palha, feno e outros fômites por até 02
meses. Temperaturas baixas e condições úmidas prolongam o tempo de
sobrevivência. A infectividade persiste no banheiro dos ovinos e caprinos,
no mínimo por 24 horas. A infecção é facilitada pela presença de feridas,
porém o microorganismo pode penetrar pela pele intacta. A transmissão
pode ser por contato, por fômites, instalações, líquidos de banheiro e
chuveiro contaminados, como também pela poeira dos galpões de tosquia e
de currais contaminados. A doença clínica ocorre em animais com a forma
visceral disseminada, uma das causas da ineficiência reprodutiva e da
síndrome da ovelha magra, bem como da morte e descarte de ovinos mais
velhos nos rebanhos infectados.
5.3.3. Patogenia
A bactéria penetra no organismo através de ferimentos, arranhões ou
mesmo na pele intacta, alcança a linfa e atinge os linfonodos regionais. A
partir destes, podem ocorrer as infecções sistêmicas. Em menores
proporções podem ser observadas as infecções por via respiratória,
digestiva, genital e cordão umbilical. A bactéria produz uma exotoxina, a
fosfolipase, que tem efeito vasogênico das células endoteliais, causando

uma reação necro-hemorrágica e, em conseqüência da lesão vascular há um
aumento da permeabilidade do vaso, que pré-dispõe à disseminação da
bactéria do local da infecção primária para outros órgãos (SANTA ROSA,
1996).
5.3.4. Sinais Clínicos
À palpação, há aumento de um ou mais linfonodos superficiais. Os
mais acometidos são: submaxilares, pré-escapulares, pré-crurais,
supramamários e poplíteos. Nos casos em que há envolvimento sistêmico,
podem ocorrer pneumonia crônica, pielonefrite, ataxia e paraplegia,
conforme o local da infecção. Em ovelhas é comum a transmissão do
linfonodo supramamário para o tecido mamário, provocando queda na
produção de leite, crescimento retardado do cordeiro e até sua morte. As
lesões intra-escrotais são comuns em carneiros, mas não envolvem o
testículo e o sêmen (RADOSTITS, 2002).
Os abscessos internos causados por Corynebacterium
pseudotuberculosis são importantes causa de perda crônica de peso em
pequenos ruminantes. Quando presentes no tórax, os abscessos internos
podem causar dispnéia crônica. Abscessos hepáticos também são relatados,
causando insuficiência do respectivo órgão. Como resultado da compressão
da medula espinhal por abscessos nos corpos vertebrais, foi detectada a
moléstia neurológica em casos de infecção por Corynebacterium
pseudotuberculosis. Afeta cordeiros nascidos em confinamento, em
condições sanitárias precárias podendo ser confundida com a moléstia do
músculo branco (SMITH, 1993), doença que ataca cordeiros jovens com
deficiência em Selênio e Vitamina E, provocando Síndrome
músculoesquelético, pela destruição de membranas celulares e proteínas
(PUGH, 2005).

5.3.5. Diagnóstico
12.
O diagnóstico presuntivo realiza-se pela presença de abscesso nos
linfonodos. Para o diagnóstico definitivo o agente deve ser isolado de
exudato dos animais vivos, obtido por biopsia ou coletado na necropsia ou
no abate (RIET-CORREA, 2001).
Segundo Santa Rosa (1996,) a presença de abscessos nos linfonodos
não é suficiente para o diagnóstico, sendo necessário isolar a bactéria a
partir do pus. A bactéria cresce facilmente em ágar sangue e pode ser
observada e identificada 48 horas após a incubação aeróbica. A
identificação da bactéria permite fazer o diagnóstico diferencial entre os
abscessos encontrados fora do sistema linfático e mesmo dentro deles,
causados frequentemente por outras bactérias tais como Corinebacterium
pyogenes, Staphyloccocus spp e Streptococcus spp.
Os testes sorológicos consistem na hemaglutinação indireta, inibição
da hemólise, inibição sinérgica da hemólise, imunodifusão e os testes
ELISA para a detecção de anticorpos contra antígenos da parede celular
bem como da exotoxina (RADOSTITS, 2002).
5.3.6. Tratamento
O tratamento não costuma ser tentado, embora o microorganismo
seja sensível à penicilina e outros antibióticos. Isto acontece pelo fato do
microorganismo permanecer encapsulado no abscesso e dentro das células.
Aconselha-se fazer a drenagem cirúrgica do abscesso. (RADOSTITS,
2002).

5.3.7. Controle e Profilaxia
Santa Rosa (1996) recomenda medidas profiláticas que visam apenas
reduzir a incidência da doença no rebanho, tais como: a) inspeção periódica
do rebanho; b) isolar os animais com abscessos e proceder a incisão
cirúrgica antes que se rompam espontaneamente. Deve-se abrir o abscesso
e retirar todo o conteúdo purulento, em seguida fazer a desinfecção com
iodo a 10%; c) o material retirado do abscesso deve ser queimado e os
instrumentos utilizados desinfectados; d) os animais tratados só devem
retornar ao rebanho após completa cicatrização; e) evitar compra de
animais clinicamente enfermos.
Os abscessos frequentemente recidivam depois de uma drenagem ou
tentativa de excisão cirúrgica (MANUAL MERCK DE VETERINÁRIA,
2001).
As vacinas comerciais reduzem a incidência e prevalência da
linfadenite caseosa dentro de um rebanho, mas não evitam todas as
infecções novas e nem curam os animais já infectados. Atualmente todas as
vacinas contêm o toxóide da PLD e algumas contém células bacterianas
inteiras mortas (MANUAL MERCK DE VETERINÁRIA, 2001) a
vacinação deve começar nos cordeiros e cabritos com 3 a 4 meses de idade,
com reforços anuais administrados em todo o lote reprodutor um mês antes
do parto esperado.
A EMEPA não vacina seus animais contra Linfadenite caseosa e não
recomenda a vacinação devido a pouca eficiência da mesma e por onerar a
produção.
As dificuldades das técnicas sorológicas para identificar caprinos e
ovinos com a doença subclínica, faz com que a erradicação da enfermidade
seja difícil.

5.3.8. Situação Acompanhada
Foi necropsiado um caprino da raça Anglo Nubiana, que apresentava
uma condição corporal media, porém não conseguia atingir seu pleno
desenvolvimento reprodutivo, observou-se abscessos superficiais na
região peitoral próximo ao esterno. O animal foi sacrificado e necropsiado,
quando se constatou Linfadenite caseosa interna, com abscessos espalhados
pelo coração, pulmão, baço, rins (Figura 10).
Figura 10. Linfadenite caseosa visceral em um caprino com abscessos nos
principais órgãos (baço com vários abscessos).
Fonte: EMEPA (2006)
Vários casos de Linfadenite caseosa localizada nos lifonodos
superficiais, principalmente, parotídio, retrofaringeo e submandibular,
tiveram seus abscessos retirados da seguinte forma:
- Primeiro o animal foi contido por dois manejadores, um contendo
a cabeça e o outro o posterior do animal:

- Segundo, o técnico ou veterinário calçando luvas fez a desinfecção
e uma incisão no meio do abscesso no sentido vertical:
- Terceiro, foi feita a drenagem do conteúdo com o auxilio de uma
pinça de forma a retirar todo o pus e a parte fibrosa que fica grudada no
interior do abscesso.
- Por último, foi feita desinfecção e limpeza geral com algodão
contendo iodo a 10%.
Os animais tratados foram isolados e só voltaram ao rebanho depois
de completa cicatrização.
Figura 11 – Drenagem de abscesso de um caprino com Linfadenite
caseosa.
Fonte EMEPA (2006).

6. CONCLUSÃO
13.
O estágio supervisionado é o fechamento de ouro do curso de
Medicina Veterinária, pois é neste semestre que o aluno tem a oportunidade
de deparar-se com a realidade da profissão e do mercado de trabalho.
Exercendo funções como auxiliar de um profissional, pode-se fazer uma
avaliação do que foi ministrado em sala de aula e o que na realidade se usa
na prática, principalmente, no campo.
O trabalho no Nordeste é enriquecedor pela própria realidade que se
apresenta no sertão onde o estágio foi realizado, pelo contato com o seu
povo lutador, estudioso e solidário. Pode ser uma lição de vida para
qualquer principiante que deseja conhecer uma realidade diferente da sua.
O Estado da Paraíba é pequeno só no tamanho, mas grande e rico na
bondade de sua gente e na luta de seu povo. A ovinocultura e a
caprinocultura são atividades tradicionais no Nordeste, que servem de
sustento para o sertanejo, produtores de pequeno e médio porte, que as
utilizam como fonte de alimento e de renda. São atividades de relevante
importância socioeconômica para a região e para todo o Brasil. No entanto,
a produção e a produtividade desses animais ainda são limitadas devido a
problemas sanitários, nutricionais e de manejo. Com o aumento dos
rebanhos aumentaram também a incidência e a gravidade das doenças,
exigindo medidas de controle mais efetivas. As verminoses por nematódeos
gastrintestinais se constituem em uma das principais enfermidades dos
ovinos e caprinos, causando redução na produtividade e, às vezes, a morte.

Os prejuízos são mais acentuados nas ovelhas e cabras no periparto e nos
cordeiros e cabritos. Para melhorar o controle dessas helmintoses não basta
apenas tratamento com anti-helmínticos, pois os nematódeos têm
desenvolvido resistência a essas drogas, uma vez que a sua aplicação,
muitas vezes, é inadequada e sem nenhum critério, o que leva a este
resultado. Como complemento do controle os autores consultados são
unânimes em recomendar métodos alternativos, tais como: o incremento da
nutrição; a criação de ovinos resistentes; o manejo de pastagens; o controle
biológico dirigido às fases de vida livre feito através de fungos, bactérias e
insetos; consorciação de agricultura e pecuária e o uso de diferentes
espécies de herbívoros como meio de descontaminação das pastagens.
Outras enfermidades são também importantes como o Ectima contagioso
(boqueira) e a Linfadenite caseosa (mal do caroço), discutidas nesse
trabalho.
Com esse estágio no Nordeste, com a experiência no semi-árido,
onde chove apenas três a quatro meses por ano, verificou-se a luta e o
trabalho que aquele povo tem para sobreviver. Pode-se concluir que o
desenvolvimento da ovinocultura e caprinocultura tem condições de
avançar muito mais, principalmente nas regiões onde o clima é mais
favorável, razão de seu potencial extraordinário. É um campo aberto que
está crescendo e necessitando de pesquisadores, veterinários e técnicos,
engajados num grande projeto para transformar o Brasil em um grande
produtor e exportador de carne e produtos derivados de ovinos e caprinos,
procurando fortalecer também o mercado interno, através do
desenvolvimento da cadeia produtiva para que todos possam consumir
produtos derivados da ovinocultura e da caprinocultura, acabando com o
preconceito que algumas pessoas ainda têm contra esses produtos.

7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
AMARANTE, A.F.T., Controle de Verminose Ovina, Brasília-DF,
Revista CFMV nº 34, Janeiro/Abril, 2005; p. 19-30.
IBEGE, Produção pecuária municipal, 2003 – Disponível em:
http/www.sidra.ibge.gov.br. Acessado em 29/10/06.
MANUAL MERCK DE VETERINÁRIA. Editor Sugan E. Aiello, 8ª ed.
São Paulo: Roca. 2001. 1861p.
MOLENTO, M. B. Controle das Helmintoses. Revista O Berro n. 93,
setembro de 2006, p.63-66.
14.
NOGUEIRA, E. A.; Júnior, S. N. – Ovinos e Caprinos Avançam em São
Paulo, IEA (CCTC) – 2005. Disponível em: http://www.iea.sp.gov.br.
Acessado em 29/10/06.
PUGH, D. G., Clínica de ovinos e caprinos. São Paulo: Roca, 2004, 514p.
RADOSTITIS O. M.; GAY C. C., BLOOD D. C. e HINCHCLIFF, K. W.
Clínica Veterinária – Um tratado de doenças de bovinos, ovinos, suínos,
caprinos e eqüinos. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 9ª ed. 1737p.
RIBEIRO, S. D. A. Caprinocultura: Criação racional de caprinos. São
Paulo: Nobel, 1997. 318p.
RIET-CORREA, F. et all. Doenças de ruminantes e eqüinos. 2. ed. São
Paulo: Livraria Varela 2001. Vol. II, 574p.

SANTA ROSA, Janete. Enfermidades em caprinos: diagnóstico,
patogenia, terapêutica e controle. Brasília: Embrapa-CNPC, 1996. 220p.
SMITH, B. P. Tratado de Medicina Interna de Grandes Animais. São
Paulo: Manole, 1993. Vol. II. 1738p.
URQUHART, G.M. et all. Parasitologia veterinária. 2. ed. Rio de
Janeiro: Guanabara Koogan, 1998, 273 p.
15.

8. ANEXOS
ANEXO 1 – Certificados de Estágio Obrigatório Supervisionado em
Medicina Veterinária
16.

ANEXO 2 – Formulários utilizados pela EMEPA na escrituração
zootécnica e no registro dos animais
17.

ANEXO 3 – Algumas raças criadas pela EMEPA
18.