NT256/A: Tópicos Especiais em Biologia Vegetal I

PROGRAMA DA DISCIPLINA NT 256 – TURMA A – 2º SEMESTRE DE 2010
TÉCNICAS DE ANÁLISE CROMOSSÔMICA – ABORDAGENS CLÁSSICAS & MOLECULARES
Profa. Dra. Eliana Regina Forni Martins
Súmula
A disciplina visa apresentar com aulas teórico­práticas a estrutura cromossômica e as
diferentes estratégias para o estudo dos cromossomos, demonstrando a importância destas
técnicas para as áreas da taxonomia, melhoramento e evolução. Espera­se que ao final da
disciplina os alunos tenham noções dos passos básicos das metodologias em citogenética, além de
desenvolver o espírito crítico quanto às análises cromossômicas e das possíveis utilizações destas
técnicas dentro do desenvolvimento das suas dissertações/teses.
1. Ciclo celular
2. Meiose
3. Estrutura da cromatina
4. Diferenciação longitudinal dos cromossomos
5. Técnicas de bandeamentos cromossômicos
6. Alterações cromossômicas estruturais
7. Alterações cromossômicas numéricas
8. Poliploidia
9. Hibridização in situ – a técnica, suas variantes e aplicações
Conteúdo programático
Avaliação
A avaliação será feita com base na apresentação do seminário baseado em artigo científico, com
ligação ao assunto do projeto de pós­graduação desenvolvido pelo aluno, além do relatório das
aulas práticas.
Bibliografia
Guerra, M. Introdução à Citogenética Geral. 1°edição. Editora Guanabara.
Schwarzacher, T. & Heslop­Harrison. 2000. Pratical in situ hybridization. 1°edição. Ed Springer­
Verlag.

Sumner, A.T. 2004. Chromosomes: organization and function.
Appels, R., Morris, R., Gill, B.S., May, C.E. 1998. Chromosome Biology. Kluwer Academic
Publishers, 424 pp.
Artigos científicos.

Cronograma
Data Horário Dia Aula Assunto
15/07 14 às 18 Quinta Aula Teórica 01:
1.1­ Introdução à Citogenética: Por que estudar cromossomos?
1.2 ­ Ciclo celular
Aula Prática 01: Coleta de material para análise mitótica e meiótica, pré­tratamento.
16/07 14 às 18 Sexta Aula Teórica 02: Estrutura da cromatina
Aula Prática 02:
19/07 14 às 18 Segunda Aula Teórica 03:
Aula Prática 03:
Fixação de material.
Mitose: preparo de lâminas de ponta de raiz sem e com pré­tratamento e análise
(coloração com carmim propiônico, orceína acética e Giemsa)
Diferenciação longitudinal do cromossomo – Heterocromatina, Centrômero e
Telômero
Mitose: preparo de lâminas de ponta de raiz sem e com pré­tratamento e análise
(coloração de Fuelgen, coloração com hematoxilina e preparo de lâminas sem
coloração)
20/07 14 às 18 Terça Aula Teórica 04: Meiose
Aula Prática 04: Meiose: preparo de lâminas de meiose (coloração com carmim propriônico)
21/07 14 às 18 Quarta Aula Teórica 05: Técnicas de bandeamento
Aula Prática 05: Técnica de Bandeamento C, Ag­NOR, CMA/DAPI e análise das lâminas
22/07* 9 às 11:30 Quinta Aula Prática 06 ­ 1: (Manhã) Preparo de cariótipo e idiograma (Programa Adobe Photoshop ® )
14 às 18 Aula Teórica 06: Alterações cromossômicas estruturais
Aula Prática 06 ­ 2: (Tarde) Preparo e análise de lâminas de Rheo spathacea

23/07 14 às 18 Sexta Aula Teórica 07: Poliploidia
25/07 16 às 17 Domingo Opcional: Aula Prática Pré­inóculo bactérias
26/07 14 às 18 Segunda Aula Teórica 08:
27/07 14 às 18 Terça Aula Prática 09:
Hibridização in situ
Aula Prática 08: Inóculo das bactérias
Extração de plasmídeos
Extração de DNA genômico
28/07 14 às 18 Quarta Aula Prática 10: Marcação de sondas (FISH e GISH) – Métodos: Nick translation & PCR
29/07 14 às 18 Quinta Aula Prática 11: FISH/GISH
Aula Teórica 09: Discussão de artigos de Poliploidia
30/07 14 às 18 Sexta Aula Prática 12: FISH/GISH & Visualização das lâminas
Aula Teórica 11: Variações das técnicas de FISH
02/08 14 às 18 Segunda Aula Teórica 13: Seminários
09/08 Segunda Entrega do relatório comentado e documentado da prática
*Neste dia, excepcionalmente, haverá aula também no turno da manhã.