Relatório Final do Projeto Pacu Aqüicultura.pdf
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parecidos com os encontrados no rio Madeira, em Porto Velho, durante a época de reprodução (Bernardi et al., 2009), incluindo pH = 6,5, temperatura = 28,0 ºC e OD = 5,1 mg/L. A composição iônica da água é fator que influencia a DE e o tamanho dos ovos de peixe (Cowley, 2009). Informações a respeito de temperatura média, aplicação de hormônios, tempo entre indução hormonal e desovas em horas-grau foram registradas e são apresentadas na Tabela 1. Tabela 1: Resultados das aplicações de hormônios na reprodução Espécie Hormônio Curimatá Prochilodus lineatus Cachara Pseudoplatystoma fasciatum Tambaqui Colossoma mesopotamicus Matrinxã Brycon orbignyanus Pirarara Phractocephalus hemioliopterus Jaú Z. jehu Jurupensem Surubim cf lima Jundiá Rhandia sp Pituitária de carpa Pituitária de carpa Pituitária de carpa Pituitária de carpa Pituitária de carpa Pituitária de carpa Pituitária de carpa LHRH(a) + Domperidona Medição de Densidade Específica Dosagem (mg/kg) 1ª injeção / 2ª injeção Data da Desova Temperatura Média da Água (°C) Horas- Grau 1 / 4 20/12/09 28,1 262 1 / 4 20/12/09 28,1 222 1 / 4 20/12/09 28,1 241 1 / 4 22/12/09 28,4 154 1 / 4 22/12/09 28,4 242 1 / 4 17/01/10 27,7 231 1 / 4 17/01/10 27,7 235 0,3ug+0,3mg / 3ug+3mg 24/01/10 28,0 233 A estratégia utilizada para definir a DE foi identificar a densidade de uma solução de cloreto de sódio (NaCl) de concentração equivalente à densidade dos ovos ou larvas avaliados, uma vez que o ovo ou a larva com a mesma densidade da solução salina fica “em equilíbrio”, ou seja, não ascende e não afunda quando nela é imerso. Esta estratégia foi utilizada por outros investigadores na medição de DE de ovos de peixe (Coombs, 1981: Sundnes et al., 1965; Unuma et al., 2005) e larvas (Tu et al., 1998). A DE foi aferida e o registro fotográfico realizado em ovócitos, ovos fecundados e larvas coletadas durante o processo de extrusão, incubação e desenvolvimento larval, sendo considerados os seguintes momentos do seu desenvolvimento: ovócito, uma hora após a fecundação, 4 horas após a fecundação, 16 horas após a fecundação,
imediatamente após a eclosão, 12 horas após a eclosão e no momento da primeira alimentação exógena. Para melhor observação das larvas, especialmente daquelas mais ativas nos estágios finais da fase de alimentação endógena, as mesmas foram anestesiadas para permanecerem imóveis durante a análise da DE, procedimento utilizado em análise de DE de girinos vivos (Tu et al., 1998). As larvas foram imersas em cloridrato de lidocaína a 2%, anestésico eficaz para peixes (Carrasco et al., 1984). A metodologia utilizada na medição da densidade específica foi adaptada pela equipe técnica do Projeto Pacu Aqüicultura depois de analisar a literatura existente e experimentar várias estratégias. A determinação da DE envolveu quatro etapas: 1) A Preparação das soluções estoques foi realizada pesando cloreto de sódio (produto PA, da marca Dinâmica), em quantidades de 5, 10, 20, 40, 60, 80 e 100 g para cada litro de água (cuja fonte foi o poço do laboratório do Projeto Pacu Aqüicultura), agitando para dissolver e reservando as soluções nas respectivas concentrações em bolsas de 10 L. 2) A avaliação inicial de flutuabilidade de ovos ou larvas foi realizada pela imersão de lotes de aproximadamente 10 ovos/larvas em provetas contendo as soluções estoques (5, 10, 20, 40, 60, 80 ou 100 g/L). Identificaram-se, inicialmente, as duas concentrações nas quais os ovos/larvas afundaram e ascenderam, respectivamente, considerando que entre essas duas concentrações estaria aquela com a mesma densidade do material biológico. A solução de densidade menor faz com que os ovos/larvas afundem, enquanto a solução de densidade maior faz com que os ovos/larvas ascendam até a superfície. Assim, foi possível identificar rapidamente a solução pré-determinada com a DE mais próxima a dos ovos/larvas. 3) Os ajustes fino na densidade das soluções estoques foram efetuados com adição de água pura para diluir, com o auxílio de picetas, ou de solução salina saturada com 350 g/L de NaCl para concentrar a solução, com bureta, tomando cuidado para homogeneizar previamente as novas soluções antes da introdução do material biológico. Essas modificações nas concentrações tiveram continuidade até que os ovos/larvas submersos chegassem ao seu ponto de equilíbrio, permanecendo suspensos, sem afundar ou ascender quando colocados em uma proveta com a solução. Novos lotes de ovos ou larvas eram introduzidos com freqüência para eliminar interferências de natureza osmótica que levassem à perda ou ganho de água pelo material biológico. Assim, o ponto de equilíbrio foi definido rapidamente (geralmente em menos de 10 segundos) para evitar este problema. 4) A medição da DE da solução final foi feita com o auxílio de um densímetro ou “hydrometer” (marca INCOTERM, para densidades de 1,000 a 1,100 g/mL, calibração confirmada em 1,000 g/mL usando água de poço do Projeto Pacu Aqüicultura a 28 °C); e uma proveta de 500 mL. O resultado, obtido em g/mL, foi a medida da DE dos ovos ou das larvas. Os diâmetros/comprimentos das diferentes fases e espécies consideradas na determinação da densidade específica foram estimados a posteriori com base em fotografias desse material e numa escala fotografada em microscópio estereoscópico com a mesma câmara e nos mesmos aumentos usados durante os trabalhos.
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- Page 39 and 40: Desova matrinxã
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pareci<strong>do</strong>s com os encontra<strong>do</strong>s no rio Madeira, em Porto Velho, durante a época de<br />
reprodução (Bernardi et al., 2009), incluin<strong>do</strong> pH = 6,5, temperatura = 28,0 ºC e OD =<br />
5,1 mg/L. A composição iônica da água é fator que influencia a DE e o tamanho <strong>do</strong>s<br />
ovos de peixe (Cowley, 2009).<br />
Informações a respeito de temperatura média, aplicação de hormônios, tempo entre<br />
indução hormonal e desovas em horas-grau foram registradas e são apresentadas na<br />
Tabela 1.<br />
Tabela 1: Resulta<strong>do</strong>s das aplicações de hormônios na reprodução<br />
Espécie Hormônio<br />
Curimatá<br />
Prochilodus<br />
lineatus<br />
Cachara<br />
Pseu<strong>do</strong>platystoma<br />
fasciatum<br />
Tambaqui<br />
Colossoma<br />
mesopotamicus<br />
Matrinxã<br />
Brycon<br />
orbignyanus<br />
Pirarara<br />
Phractocephalus<br />
hemioliopterus<br />
Jaú<br />
Z. jehu<br />
Jurupensem<br />
Surubim cf lima<br />
Jundiá<br />
Rhandia sp<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
Pituitária de<br />
carpa<br />
LHRH(a) +<br />
Domperi<strong>do</strong>na<br />
Medição de Densidade Específica<br />
Dosagem (mg/kg)<br />
1ª injeção / 2ª<br />
injeção<br />
Data da<br />
Desova<br />
Temperatura<br />
Média da<br />
Água (°C)<br />
Horas-<br />
Grau<br />
1 / 4 20/12/09 28,1 262<br />
1 / 4 20/12/09 28,1 222<br />
1 / 4 20/12/09 28,1 241<br />
1 / 4 22/12/09 28,4 154<br />
1 / 4 22/12/09 28,4 242<br />
1 / 4 17/01/10 27,7 231<br />
1 / 4 17/01/10 27,7 235<br />
0,3ug+0,3mg /<br />
3ug+3mg<br />
24/01/10 28,0 233<br />
A estratégia utilizada para definir a DE foi identificar a densidade de uma solução de<br />
cloreto de sódio (NaCl) de concentração equivalente à densidade <strong>do</strong>s ovos ou larvas<br />
avalia<strong>do</strong>s, uma vez que o ovo ou a larva com a mesma densidade da solução salina fica<br />
“em equilíbrio”, ou seja, não ascende e não afunda quan<strong>do</strong> nela é imerso. Esta estratégia<br />
foi utilizada por outros investiga<strong>do</strong>res na medição de DE de ovos de peixe (Coombs,<br />
1981: Sundnes et al., 1965; Unuma et al., 2005) e larvas (Tu et al., 1998).<br />
A DE foi aferida e o registro fotográfico realiza<strong>do</strong> em ovócitos, ovos fecunda<strong>do</strong>s e<br />
larvas coletadas durante o processo de extrusão, incubação e desenvolvimento larval,<br />
sen<strong>do</strong> considera<strong>do</strong>s os seguintes momentos <strong>do</strong> seu desenvolvimento: ovócito, uma hora<br />
após a fecundação, 4 horas após a fecundação, 16 horas após a fecundação,
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