Doença de Petri da Videira - UTL Repository - Universidade Técnica ...
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Material e métodos<br />
Pch2 (Tegli et al., 2000) que amplificam um fragmento <strong>de</strong> 360 bp. A mistura <strong>de</strong> reacção,<br />
<strong>de</strong> volume 25 µL, foi a seguinte: 1x Tampão <strong>de</strong> PCR, 50 µM <strong>de</strong> ca<strong>da</strong> dNTP, 0,5 µM <strong>de</strong><br />
ca<strong>da</strong> primer, 2 U <strong>de</strong> Taq DNA polimerase (Dream Taq, Fermentas) e 1µL do produto<br />
amplificado resultante <strong>da</strong> reacção PCR anterior. Como controlo negativo utilizou-se a<br />
mesma mistura <strong>de</strong> amplificação, substituindo o produto amplificado por água miliQ<br />
esteriliza<strong>da</strong>.<br />
O programa <strong>de</strong> amplificação utilizado consistiu numa pré-<strong>de</strong>snaturação <strong>de</strong> 3 min. a 95ºC,<br />
segui<strong>da</strong> <strong>de</strong> 15 ciclos <strong>de</strong> 20 s a 94 ºC (<strong>de</strong>snaturação), 30 s a 60ºC (hibri<strong>da</strong>ção), 1 min. a<br />
72ºC (extensão), terminando com um período <strong>de</strong> 1 min. a 72ºC (extensão final) (Tegli<br />
et al., 2000; Nascimento et al., 2001).<br />
Os produtos <strong>de</strong> amplificação foram separados por electroforese em gel <strong>de</strong> agarose a 2%<br />
(p/v) em tampão TBE a 0,5x (45 mM Tris-base, 45 mM acido bórico, 1mM EDTA, pH 8,0)<br />
(Sambrook et al., 1989), numa tina horizontal 20 x 25 cm (largura x comprimento)<br />
(“Horizon 20-25, Horizontal Gel Electrophoresis Apparatus, Life Technologies/GibcoBRL”).<br />
Em ca<strong>da</strong> um dos poços <strong>da</strong>s extremi<strong>da</strong><strong>de</strong>s do gel colocaram-se 1,5 µL do marcador <strong>de</strong><br />
peso molecular 123 pb DNA lad<strong>de</strong>r (GibcoBRL) adicionados <strong>de</strong> 3 µL <strong>de</strong> “gel-loading<br />
buffer” (0,25%, p/v, <strong>de</strong> azul <strong>de</strong> bromofenol; 40%, p/v, <strong>de</strong> sacarose em TBE 0,5x),<br />
enquanto que nos restantes poços se proce<strong>de</strong>u à aplicação <strong>da</strong>s amostras constituí<strong>da</strong>s por<br />
18 µL dos produtos amplificados, nas mesmas condições do marcador. A electroforese<br />
<strong>de</strong>correu durante 1h 30m a 80 V, corrente gera<strong>da</strong> pela fonte “Electrophoresis Power<br />
Supply – EPS 100, Pharmacia Biotec”, em tampão TBE 0,5x, à temperatura ambiente.<br />
No fim <strong>da</strong> electroforese o gel foi corado com brometo <strong>de</strong> etídio (0,5 µg/L), durante 10<br />
min. e <strong>de</strong>pois lavado em água <strong>de</strong>stila<strong>da</strong>, <strong>de</strong> forma a retirar o excesso do corante, durante<br />
20 min. Os resultados foram visualizados num transiluminador <strong>de</strong> luz ultra-violeta (312<br />
nm) “BTX 20.M, UVItec Limited”, e impressos em papel fotográfico, utilizando uma<br />
impressora térmica “Mitsubishi Mo<strong>de</strong>l P91E”.<br />
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