trigliceridi
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TRIGLICERIDI<br />
DETERMINAZIONE ENZIMATICA COLORIMETRICA IN SIERO E PLASMA METODO TRINDER END POINT<br />
For in vitro diagnostic use only<br />
Kit: 4 x 100 mL Cod. 90009730<br />
SIGNIFICATO DIAGNOSTICO<br />
I <strong>trigliceridi</strong> costituiscono una delle principali fonti di energia delle<br />
cellule e possono essere introdotti attraverso la dieta o essere<br />
sintetizzati nel fegato. Vengono trasportati nel plasma grazie alle<br />
lipoproteine per essere depositati principalmente nel tessuto adiposo<br />
e nei muscoli.<br />
Concentrazioni elevate di Trigliceridi nel siero si riscontrano nel<br />
diabete mellito, nefrosi, ipotiroidismo, patologie epatobiliari,<br />
alcoolismo.<br />
Valori bassi si possono ricondurre a ipertiroidismo e malnutrizione.<br />
PRINCIPIO<br />
I <strong>trigliceridi</strong> sono idrolizzati dalla lipoproteinlipasi a glicerolo ed<br />
ac. grassi. Il glicerolo viene fosforilato a glicerolo-3-fosfato dalla<br />
glicerokinasi, quindi convertito dalla glicerolo-3-fosfato oxidasi in<br />
diidrossiacetonfosfato ed acqua ossigenata.<br />
L'acqua ossigenata reagisce in presenza di perossidasi con<br />
4-aminofenazone e TOOS, formando un composto chinonico<br />
porpora, la cui intensità di colore è proporzionale alla concentrazione<br />
dei <strong>trigliceridi</strong> nel campione.<br />
REAGENTI<br />
Componenti del kit: Cod. TG380<br />
*REAGENTE 1 (liquido) 4 x 100 ml<br />
*REAGENTE 2 (liofilo) 4 x 100 ml<br />
LPL ≥ 130 U/L<br />
GK ≥ 100 U/L<br />
GPO ≥ 4000 U/L<br />
POD ≥ 1000 U/L<br />
ATP 2 mmol/L<br />
4-aminofenazone >0.1 mmol/L<br />
GOOD Buffer 0.1 M<br />
TOOS >0.3 mmol/L<br />
*REAGENTE 3 Standard 1 x 5 mL<br />
Trigliceridi 200 mg/dL (=2,26 mmol/L)<br />
STABILITA’: i reagenti, a 2-8°C, sono stabili fino alla data di<br />
scadenza riportata sul kit se non contaminati durante l’uso.<br />
REAGENTI AUSILIARI PER LA CALIBRAZIONE E PER<br />
IL CONTROLLO QUALITA’ (Non forniti con il kit)<br />
Si suggerisce caldamente di verificare l’esattezza del fattore<br />
utilizzato mediante Calibrazione preventiva. Va assolutamente<br />
utilizzato il fattore che viene originato da queste prove in sostituzione<br />
del fattore teorico inserito in metodica.<br />
Per garantire l’ adeguata Calibrazione, si suggerisce di usare il<br />
seguente kit:<br />
- CALIBRATORE Cod. 90010000<br />
Per garantire l’adeguata prestazione del test, si suggeriscono i<br />
seguenti kit:<br />
- SERUM N Cod. 90009980<br />
- SERUM P Cod. 90009990<br />
PREPARAZIONE DEL REAGENTE DI LAVORO<br />
*KIT 4 x 100 mL<br />
Aggiungere ad un vial di *Reagente 2 un poco di *Reagente 1.<br />
Mescolare gentilmente; a miscelazione avvenuta, riportare nel<br />
flacone di plastica. Mescolare gentilmente, sino a miscelazione<br />
completa.<br />
Portare i reagenti alla temperatura di lavoro prima dell’uso.<br />
Chiudere immediatamente dopo l’impiego.<br />
I prodotti vanno manipolati in modo adeguato, tale da evitare<br />
ogni contaminazione.<br />
L’uso non competente ci solleverà da ogni responsabilità.<br />
STABILITA’: 6 settimane a 2-8°C, 5 gg a temp. ambiente ed al buio.<br />
CAMPIONI<br />
• Siero, plasma (eparina, EDTA) non emolizzato, di un soggetto<br />
digiuno da almeno 12 ore.<br />
PROCEDURA ANALITICA<br />
• Wavelength: 550 nm (530-570)<br />
• Cammino ottico: 1 cm<br />
• Lettura: contro Bianco Reagente<br />
• Temperatura: 37°C<br />
• Metodo: end point<br />
• Reazione: 5 minuti<br />
• Linearità: fino a 1000 mg/dL<br />
• Campione/Reagente: 1/100<br />
Portare i reagenti alla temperatura di lavoro prima dell’uso.<br />
Pipettare in 3 provette o in 3 cuvette così etichettate:<br />
R/B: Bianco Reagente; ST: Standard; S: Sample/Campione:<br />
R/B ST S<br />
Reagente di lavoro 1000 μl 1000 μl 1000 μl<br />
Attendere che raggiunga 37°C quindi aggiungere:<br />
Acqua distillata 10 μl ---- ----<br />
*Reagente 3 Standard ---- 10 μl ----<br />
Campione ---- ---- 10 μl<br />
Miscelare attentamente. Dopo 5 minuti di incubazione a 37°C<br />
leggere l’assorbanza dello standard (Ast) e del campione (As)<br />
contro il Bianco Reagente.<br />
Il colore finale è stabile per almeno 1 ora a temp. ambiente ed al<br />
buio.<br />
CALCOLO<br />
(As/Ast) x 200 = mg/dL <strong>trigliceridi</strong><br />
(As/Ast) x 2.26 = mmol/L <strong>trigliceridi</strong><br />
VALORI DI RIFERIMENTO<br />
Siero o plasma: 40-165 mg/dL (0.4-1.86 mmol/L)<br />
Si raccomanda che ogni laboratorio stabilisca i propri valori normali<br />
di riferimento per l’area geografica in cui si trova.<br />
CARATTERISTICHE METROLOGICHE<br />
Le caratteristiche del Reagente Trigliceridi sono determinate<br />
utilizzando uno spettrofotometro o analizzatori tipici di laboratorio. I<br />
dati pur rappresentando le caratteristiche del prodotto, potrebbero<br />
risultare differenti da questi nei singoli laboratori e/o per differenti<br />
analizzatori.<br />
Linearità: La concentrazione dei Trigliceridi viene determinata tra<br />
1,6 – 1000 mg/dL.<br />
Per concentrazioni ≥ 1000 mg/dL, diluire il campione<br />
1:2 con fisiologica, ripetere la determinazione e<br />
moltiplicare il risultato x 2.<br />
Limite di rilevazione: La minima quantità determinabile è 1,6 mg/dL.<br />
Precisione nella serie (Within-run Precision):<br />
Media (mg/dL) ± 2s CV %<br />
Umano 1 113,35 ± 4,17 1,84<br />
Umano 2 488,40 ± 11,36 1,16<br />
Precisione tra le serie (Run-to-run (Day-to-day) Precision):<br />
Media (mg/dL) ± 2s CV %<br />
Umano 1 114,23 ± 4,88 2,17<br />
Umano 2 491,58 ± 14,41 1,47<br />
Accuratezza: con materiali di controlli commerciali<br />
Attesa (mg/dL) Trovata (mg/dL)<br />
Normale 120 (108 – 144) 116 – 123 – 127<br />
Patologico 212 (179 – 245) 206 – 211 – 222<br />
Interferenze: vedi Bibliografia punto 2.
Correlazione: un gruppo di 20 sieri è stato testato con questa<br />
procedura e usando un reagente simile<br />
commercialmente disponibile.<br />
Il confronto ha dato i seguenti risultati:<br />
Regressione lineare Y = 1,0015X – 0,859<br />
Coefficiente di correlazione r = 0,9998 n = 20<br />
NOTE<br />
1. Una variazione proporzionale dei volumi di reazione non modifica<br />
il risultato.<br />
2. Si suggerisce di NON miscelare tra loro Reagenti provenienti da<br />
diversi Lotti di Produzione.<br />
3. Per una conc. di <strong>trigliceridi</strong> > 1000 mg/dL, diluire il campione 1:2<br />
con fisiologica, ripetere la determ. e moltiplicare il risultato x2.<br />
4. ATTENZIONE!<br />
Le applicazioni su Analizzatori / Strumenti di routine possono essere<br />
totalmente diverse da quanto sviluppato come determinazione<br />
manuale, ma anche tra loro, per i diversi Analizzatori.<br />
5. Elevata attenzione deve essere data alle sostanze interferenti:<br />
alcuni farmaci ed altre sostanze potrebbero influenzare i livelli od il<br />
dosaggio dei Trigliceridi (vedi Bibliografia 2).<br />
6. Il Reagente deve essere impiegato SOLO per l’uso indicato, da<br />
personale esperto ed addestrato, nelle dovute condizioni di<br />
Laboratorio.<br />
7. La diagnosi clinica non può essere fatta correttamente usando il<br />
risultato di un solo test, ma deve essere fatta integrando<br />
criticamente diversi tests di Laboratorio con differenti dati clinici.<br />
BIBLIOGRAFIA<br />
1. Textbook of Clinical Chemistry, Ed. by N.W. Tietz,<br />
W.B. Saunders Co., Philadelphia (1999).<br />
2. Young D.S., Effect of drugs on Clinical Lab. Test,<br />
5 th Ed. AACC Press (2000).<br />
3. Bucolo G., David M., Clin. Chem. 19, 476 (1973)<br />
4. Werner M., Gabrielson D. G., Eastman G.,<br />
Clin. Chem. 27, 268 (1981)<br />
Ver. 2007/10