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trigliceridi

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TRIGLICERIDI<br />

DETERMINAZIONE ENZIMATICA COLORIMETRICA IN SIERO E PLASMA METODO TRINDER END POINT<br />

For in vitro diagnostic use only<br />

Kit: 4 x 100 mL Cod. 90009730<br />

SIGNIFICATO DIAGNOSTICO<br />

I <strong>trigliceridi</strong> costituiscono una delle principali fonti di energia delle<br />

cellule e possono essere introdotti attraverso la dieta o essere<br />

sintetizzati nel fegato. Vengono trasportati nel plasma grazie alle<br />

lipoproteine per essere depositati principalmente nel tessuto adiposo<br />

e nei muscoli.<br />

Concentrazioni elevate di Trigliceridi nel siero si riscontrano nel<br />

diabete mellito, nefrosi, ipotiroidismo, patologie epatobiliari,<br />

alcoolismo.<br />

Valori bassi si possono ricondurre a ipertiroidismo e malnutrizione.<br />

PRINCIPIO<br />

I <strong>trigliceridi</strong> sono idrolizzati dalla lipoproteinlipasi a glicerolo ed<br />

ac. grassi. Il glicerolo viene fosforilato a glicerolo-3-fosfato dalla<br />

glicerokinasi, quindi convertito dalla glicerolo-3-fosfato oxidasi in<br />

diidrossiacetonfosfato ed acqua ossigenata.<br />

L'acqua ossigenata reagisce in presenza di perossidasi con<br />

4-aminofenazone e TOOS, formando un composto chinonico<br />

porpora, la cui intensità di colore è proporzionale alla concentrazione<br />

dei <strong>trigliceridi</strong> nel campione.<br />

REAGENTI<br />

Componenti del kit: Cod. TG380<br />

*REAGENTE 1 (liquido) 4 x 100 ml<br />

*REAGENTE 2 (liofilo) 4 x 100 ml<br />

LPL ≥ 130 U/L<br />

GK ≥ 100 U/L<br />

GPO ≥ 4000 U/L<br />

POD ≥ 1000 U/L<br />

ATP 2 mmol/L<br />

4-aminofenazone >0.1 mmol/L<br />

GOOD Buffer 0.1 M<br />

TOOS >0.3 mmol/L<br />

*REAGENTE 3 Standard 1 x 5 mL<br />

Trigliceridi 200 mg/dL (=2,26 mmol/L)<br />

STABILITA’: i reagenti, a 2-8°C, sono stabili fino alla data di<br />

scadenza riportata sul kit se non contaminati durante l’uso.<br />

REAGENTI AUSILIARI PER LA CALIBRAZIONE E PER<br />

IL CONTROLLO QUALITA’ (Non forniti con il kit)<br />

Si suggerisce caldamente di verificare l’esattezza del fattore<br />

utilizzato mediante Calibrazione preventiva. Va assolutamente<br />

utilizzato il fattore che viene originato da queste prove in sostituzione<br />

del fattore teorico inserito in metodica.<br />

Per garantire l’ adeguata Calibrazione, si suggerisce di usare il<br />

seguente kit:<br />

- CALIBRATORE Cod. 90010000<br />

Per garantire l’adeguata prestazione del test, si suggeriscono i<br />

seguenti kit:<br />

- SERUM N Cod. 90009980<br />

- SERUM P Cod. 90009990<br />

PREPARAZIONE DEL REAGENTE DI LAVORO<br />

*KIT 4 x 100 mL<br />

Aggiungere ad un vial di *Reagente 2 un poco di *Reagente 1.<br />

Mescolare gentilmente; a miscelazione avvenuta, riportare nel<br />

flacone di plastica. Mescolare gentilmente, sino a miscelazione<br />

completa.<br />

Portare i reagenti alla temperatura di lavoro prima dell’uso.<br />

Chiudere immediatamente dopo l’impiego.<br />

I prodotti vanno manipolati in modo adeguato, tale da evitare<br />

ogni contaminazione.<br />

L’uso non competente ci solleverà da ogni responsabilità.<br />

STABILITA’: 6 settimane a 2-8°C, 5 gg a temp. ambiente ed al buio.<br />

CAMPIONI<br />

• Siero, plasma (eparina, EDTA) non emolizzato, di un soggetto<br />

digiuno da almeno 12 ore.<br />

PROCEDURA ANALITICA<br />

• Wavelength: 550 nm (530-570)<br />

• Cammino ottico: 1 cm<br />

• Lettura: contro Bianco Reagente<br />

• Temperatura: 37°C<br />

• Metodo: end point<br />

• Reazione: 5 minuti<br />

• Linearità: fino a 1000 mg/dL<br />

• Campione/Reagente: 1/100<br />

Portare i reagenti alla temperatura di lavoro prima dell’uso.<br />

Pipettare in 3 provette o in 3 cuvette così etichettate:<br />

R/B: Bianco Reagente; ST: Standard; S: Sample/Campione:<br />

R/B ST S<br />

Reagente di lavoro 1000 μl 1000 μl 1000 μl<br />

Attendere che raggiunga 37°C quindi aggiungere:<br />

Acqua distillata 10 μl ---- ----<br />

*Reagente 3 Standard ---- 10 μl ----<br />

Campione ---- ---- 10 μl<br />

Miscelare attentamente. Dopo 5 minuti di incubazione a 37°C<br />

leggere l’assorbanza dello standard (Ast) e del campione (As)<br />

contro il Bianco Reagente.<br />

Il colore finale è stabile per almeno 1 ora a temp. ambiente ed al<br />

buio.<br />

CALCOLO<br />

(As/Ast) x 200 = mg/dL <strong>trigliceridi</strong><br />

(As/Ast) x 2.26 = mmol/L <strong>trigliceridi</strong><br />

VALORI DI RIFERIMENTO<br />

Siero o plasma: 40-165 mg/dL (0.4-1.86 mmol/L)<br />

Si raccomanda che ogni laboratorio stabilisca i propri valori normali<br />

di riferimento per l’area geografica in cui si trova.<br />

CARATTERISTICHE METROLOGICHE<br />

Le caratteristiche del Reagente Trigliceridi sono determinate<br />

utilizzando uno spettrofotometro o analizzatori tipici di laboratorio. I<br />

dati pur rappresentando le caratteristiche del prodotto, potrebbero<br />

risultare differenti da questi nei singoli laboratori e/o per differenti<br />

analizzatori.<br />

Linearità: La concentrazione dei Trigliceridi viene determinata tra<br />

1,6 – 1000 mg/dL.<br />

Per concentrazioni ≥ 1000 mg/dL, diluire il campione<br />

1:2 con fisiologica, ripetere la determinazione e<br />

moltiplicare il risultato x 2.<br />

Limite di rilevazione: La minima quantità determinabile è 1,6 mg/dL.<br />

Precisione nella serie (Within-run Precision):<br />

Media (mg/dL) ± 2s CV %<br />

Umano 1 113,35 ± 4,17 1,84<br />

Umano 2 488,40 ± 11,36 1,16<br />

Precisione tra le serie (Run-to-run (Day-to-day) Precision):<br />

Media (mg/dL) ± 2s CV %<br />

Umano 1 114,23 ± 4,88 2,17<br />

Umano 2 491,58 ± 14,41 1,47<br />

Accuratezza: con materiali di controlli commerciali<br />

Attesa (mg/dL) Trovata (mg/dL)<br />

Normale 120 (108 – 144) 116 – 123 – 127<br />

Patologico 212 (179 – 245) 206 – 211 – 222<br />

Interferenze: vedi Bibliografia punto 2.


Correlazione: un gruppo di 20 sieri è stato testato con questa<br />

procedura e usando un reagente simile<br />

commercialmente disponibile.<br />

Il confronto ha dato i seguenti risultati:<br />

Regressione lineare Y = 1,0015X – 0,859<br />

Coefficiente di correlazione r = 0,9998 n = 20<br />

NOTE<br />

1. Una variazione proporzionale dei volumi di reazione non modifica<br />

il risultato.<br />

2. Si suggerisce di NON miscelare tra loro Reagenti provenienti da<br />

diversi Lotti di Produzione.<br />

3. Per una conc. di <strong>trigliceridi</strong> > 1000 mg/dL, diluire il campione 1:2<br />

con fisiologica, ripetere la determ. e moltiplicare il risultato x2.<br />

4. ATTENZIONE!<br />

Le applicazioni su Analizzatori / Strumenti di routine possono essere<br />

totalmente diverse da quanto sviluppato come determinazione<br />

manuale, ma anche tra loro, per i diversi Analizzatori.<br />

5. Elevata attenzione deve essere data alle sostanze interferenti:<br />

alcuni farmaci ed altre sostanze potrebbero influenzare i livelli od il<br />

dosaggio dei Trigliceridi (vedi Bibliografia 2).<br />

6. Il Reagente deve essere impiegato SOLO per l’uso indicato, da<br />

personale esperto ed addestrato, nelle dovute condizioni di<br />

Laboratorio.<br />

7. La diagnosi clinica non può essere fatta correttamente usando il<br />

risultato di un solo test, ma deve essere fatta integrando<br />

criticamente diversi tests di Laboratorio con differenti dati clinici.<br />

BIBLIOGRAFIA<br />

1. Textbook of Clinical Chemistry, Ed. by N.W. Tietz,<br />

W.B. Saunders Co., Philadelphia (1999).<br />

2. Young D.S., Effect of drugs on Clinical Lab. Test,<br />

5 th Ed. AACC Press (2000).<br />

3. Bucolo G., David M., Clin. Chem. 19, 476 (1973)<br />

4. Werner M., Gabrielson D. G., Eastman G.,<br />

Clin. Chem. 27, 268 (1981)<br />

Ver. 2007/10

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