ALLERGEN Total IgE REF - Radim S.p.A.
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• Achtung: Proben, bei denen nicht nur <strong>Total</strong> <strong>IgE</strong> sondern auch spezifisches <strong>IgE</strong> gemessen werden<br />
soll, sollten kein Heparin als Antikoagulans enthalten, die dies zu einer Unterschätzung der<br />
Konzentration von spezifischem <strong>IgE</strong> führt.<br />
• Bei Vollblutproben sollte das Serum oder Plasma so schnell wie möglich abgetrennt werden, um<br />
eine Hämolyse zu vermeiden. Klümpchen müssen entfernt werden.<br />
• Die Patientenproben sollten venös (ohne Verletzung) mit einem Vakuumröhrchen oder einer<br />
sterilen Spritze entnommen werden. Dabei sollten die üblichen Vorsichtsmaßnahmen beachtet<br />
werden. Falls eine Spritze verwendet wird, sollte die Probe sofort in ein Vakuumröhrchen<br />
transferiert werden (flach und oben rot oder Serumseparator).<br />
• Serum- und Plasmaproben können über Nacht bei 2-8°C gelagert werden. Zur längeren<br />
Aufbewahrung sollten die Proben bei -20°C eingefroren werden.<br />
• Wiederholtes Einfrieren und Auftauen vermeiden.<br />
9.0 TESTDURCHFÜHRUNG<br />
Sowohl die manuelle als auch die automatische Testdurchführung auf Adaltis und <strong>Radim</strong> Geräten<br />
erfordern die folgenden Schritte.<br />
9.1 VORBEREITUNG DER REAGENZIEN<br />
• Alle Reagenzien und die Mikrotiterplatte auf Raumtemperatur bringen.<br />
• Ungenutzte Teststreifen mit dem beigefügten Trockenmittel im sorgfältig verschlossenen<br />
Plastikbeutel bei 2 - 8°C lagern.<br />
• Die Waschlösung ansetzen.<br />
9.2 PIPETTIER- UND INKUBATIONSSCHRITTE<br />
1. Planung des Assay-Ansatzes: die ersten Wells für die Kalibratoren reservieren.<br />
2. 150 µl Inkubationspuffer in alle Wells pipettieren.<br />
3. 25 µl Kalibratoren und Proben in die entsprechenden Wells pipettieren.<br />
4. Die Mikrotiterplatte 10 Sekunden vorsichtig schütteln, ohne dass der Inhalt aus den Wells<br />
schwappt.<br />
5. 60 Minuten bei 37°C inkubieren. Die Platte nicht abdecken.<br />
6. Dreimal waschen. (Hinweise unter 9.3 beachten.)<br />
7. 100 µl Anti-<strong>IgE</strong>-Biotin-Konjugat in alle Wells pipettieren.<br />
8. 30 Minuten bei 37 °C inkubieren. Die Platte dabei nicht abdecken.<br />
9. Dreimal waschen. (Hinweise unter 9.3 beachten.)<br />
10. 100 µl HRP-Streptavidin-Konjugat in alle Wells pipettieren.<br />
11. 30 Minuten bei 37°C inkubieren. Die Platte dabei nicht abdecken.<br />
12. Dreimal waschen. (Hinweise unter 9.3 beachten.)<br />
13. 100 µl Substrate HS in alle Wells geben.<br />
14. 15 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren.<br />
15. 100 µl Stopplösung in derselben Reihenfolge und demselben Timing wie bei der Substratzugabe<br />
pipettieren und bei 450 nm mit einem Referenzfilter von 620 nm messen. Die Platte innerhalb<br />
von 60 Minuten messen.<br />
9.3 HINWEISE ZUR TESTDURCHFÜHRUNG<br />
• DER WASCHVORGANG<br />
Für die Waschvorgang wird der Gebrauch eines automatischen Platten-Washers empfohlen.<br />
Nach dem Waschen die umgedrehte Platte auf saugfähigem Papier ausklopfen, um sämtliche<br />
Flüssigkeitsreste aus den Wells zu entfernen, falls der Washer die Waschlösung nicht komplett<br />
absaugt.<br />
Die Adaltis und <strong>Radim</strong> Gerätes führen diese Waschschritte automatisch durch. Drei<br />
Waschvorgänge sind erforderlich.<br />
A1002 – <strong>ALLERGEN</strong> <strong>Total</strong> <strong>IgE</strong><br />
M541 – Rev. 1 – 06/2010 – Pag. 22/32