La duplicazione del DNA
La duplicazione del DNA
La duplicazione del DNA
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
<strong>La</strong> <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong>
Evidenze sperimentali <strong>del</strong>la <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong>:<br />
visualizzazione in microscopia elettronica
Conclusioni:<br />
<strong>La</strong> <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> procede in maniera bidirezionale a partire da un<br />
punto preciso dei cromosomi virali, batterici e cellulari, denominato<br />
ORIGINE DELLA DUPLICAZIONE. DUPLICAZIONE Per ciascuna molecola di <strong>DNA</strong> si<br />
osservano quindi due FORCELLE REPLICATIVE che avanzano in opposte<br />
direzioni. Negli eucarioti, che hanno quantità molto elevate di <strong>DNA</strong><br />
rispetto ai virus e alle cellule batteriche, il <strong>DNA</strong> viene duplicato a<br />
partire da molte origini <strong>del</strong>la <strong>duplicazione</strong>. Ciò garantisce una velocità<br />
complessiva di sintesi compatibile con i tempi osservati.<br />
Dal momento che i due filamenti di <strong>DNA</strong> sono antiparalleli e che gli<br />
enzimi responsabili <strong>del</strong>la sintesi <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> hanno una precisa direzionalità<br />
d’azione, occorre chiarire bene la dinamica <strong>del</strong>l’intero processo.
<strong>La</strong> <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> è un meccanismo che richiede<br />
energia. <strong>La</strong> reazione di polimerizzazione dei nucleotidi<br />
trifosfati ha luogo con una precisa polarità ed è<br />
catalizzata da enzimi chiamati <strong>DNA</strong> polimerasi.<br />
polimerasi<br />
Nell’intero processo di <strong>duplicazione</strong> sono coinvolte almeno<br />
10 attività enzimatiche differenti
1<br />
Analizziamo qui la <strong>duplicazione</strong> di un <strong>DNA</strong> lineare a doppio filamento,<br />
nel quale i filamenti sono correttamente orientati in senso antiparallelo<br />
5’<br />
3’<br />
<strong>DNA</strong> a doppio filamento<br />
3’<br />
5’
2<br />
L’apertura <strong>del</strong>la doppia elica è catalizzata dall’intervento di<br />
un enzima, la <strong>DNA</strong> ELICASI, ELICASI che si ancora in corrispondenza di<br />
un punto preciso <strong>del</strong> cromosoma circolare di E. coli, detto ORIGINE<br />
DELLA DUPLICAZIONE. DUPLICAZIONE L’apertura <strong>del</strong>la doppia elica richiede energia<br />
che proviene dalla idrolisi <strong>del</strong>l’ATP.<br />
5’<br />
3’<br />
2ATP<br />
2ADP+Pi<br />
ELICASI<br />
3’<br />
5’
3<br />
Intervento di proteine che legano il <strong>DNA</strong> a singola elica<br />
(SSBP, SSBP, Single Strand-Binding<br />
Strand Binding Proteins) Proteins in modo stechiometrico<br />
e mantengono distesi i singoli filamenti di <strong>DNA</strong>.<br />
5’<br />
3’<br />
3’<br />
SSBP<br />
5’
4<br />
5’<br />
Intervento di una PRIMASI che sintetizza inneschi<br />
costituiti da RNA in direzione 5’->3 >3’, utilizzando come<br />
stampo la catena complementare.<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
3’<br />
3’<br />
5’<br />
5’
5<br />
5’<br />
3’<br />
Direzione di apertura<br />
<strong>del</strong>la forcella replicativa<br />
Intervento <strong>del</strong>la <strong>DNA</strong> polimerasi III che si aggancia<br />
all’estremità 3’-OH <strong>del</strong>l’innesco (primer primer) di RNA e<br />
sintetizza <strong>DNA</strong> in direzione 5’->3’, utilizzando<br />
come stampo la catena complementare.<br />
<strong>DNA</strong> preesistente<br />
<strong>DNA</strong> di nuova sintesi<br />
Innesco di RNA<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
5’<br />
3’<br />
<strong>DNA</strong> polimerasi<br />
3’
Dilemma<br />
• <strong>La</strong> <strong>DNA</strong> polimerasi funziona solo<br />
con polarità 5’->3’.<br />
• Su un filamento la sintesi è<br />
continua, sull’altro la sintesi è<br />
discontinua.<br />
• Come si arriva ad avere una<br />
molecola di <strong>DNA</strong> integra?
Proprietà <strong>del</strong>le <strong>DNA</strong> polimerasi dei procarioti<br />
Funzioni pol I pol II pol III<br />
Polimerizzazione 5’ -> 3’ + + +<br />
Esonucleasi 3’ -> 5’ + + +<br />
Esonucleasi 5’ -> 3’ + - -<br />
Dimensioni (kDa) 103 90 130<br />
Molecole/cellula 400 10 - 20 4<br />
Gene strutturale polA pol B pol C<br />
Velocità 45.000 nt/minuto<br />
Proprietà <strong>del</strong>le <strong>DNA</strong> polimerasi degli eucarioti<br />
pol α pol δ pol ε pol β pol γ<br />
Localizzazione nucleo nucleo nucleo nucleo mitocondri<br />
Funzione Inizio Riparazione riparazione riparazione Replicazione <strong>DNA</strong><br />
Replicazione mitocondriale<br />
Priming<br />
Nucleasi NO 3’ -> 5’ eso 3’ -> 5’ eso NO, 5’ fosfatasi 3’ -> 5’ eso
Esperimento di Okazaki. 1<br />
Allo scopo di indagare sul meccanismo di <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> e su alcuni degli enzimi coinvolti nella sua sintesi,<br />
Okazaki fece uso di un MUTANTE CONDIZIONALE difettivo per l’enzima ligasi. Un mutante condizionale è un<br />
organismo portatore di una mutazione che si esprime solo in determinate condizioni.<br />
Ad esempio, il ceppo batterico usato da Okazaki era un Escherichia coli incapace di crescere a 42°C a causa di una<br />
mutazione a carico <strong>del</strong>l’enzima ligasi che non è più attiva a questa temperatura. A 32°C, invece, i batteri crescono<br />
regolarmente in quanto l’enzima ligasi, anche se è mutato, funziona regolarmente a 32°C.<br />
Escherichia coli, ceppo selvatico Escherichia coli, ceppo ts per la ligasi<br />
Coltura a 42°C Coltura a 32°C<br />
Crescita, ligasi attiva Crescita, ligasi attiva<br />
Coltura a 42°C Coltura a 32°C<br />
Non cresce, ligasi inattiva<br />
Crescita, ligasi attiva
5’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
6. Degradazione dei primers e riempimento degli spazi<br />
con nuovo <strong>DNA</strong> ad opera <strong>del</strong>la <strong>DNA</strong> polimerasi I<br />
7. Chiusura dei “gap” ad opera <strong>del</strong>la <strong>DNA</strong> ligasi<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
8. Al termine <strong>del</strong> processo, sono state prodotte<br />
due molecole di <strong>DNA</strong>.<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’
Esperimento di Okazaki. 2.<br />
Ceppo ts<br />
Coltivazione a 32°C<br />
in presenza di 3 H-TdR<br />
per pochi minuti<br />
Coltivazione a 32°C<br />
in presenza di 3 H-TdR<br />
per pochi minuti<br />
Terreno contenente 3H-Tdr<br />
sostituito con timidina non<br />
radioattiva. Ulteriore coltivazione a 42°C con<br />
raccolta di aliquote <strong>del</strong>la coltura a<br />
tempi diversi, estrazione <strong>del</strong> <strong>DNA</strong><br />
e analisi in elettroforesi e<br />
autoradiografia<br />
Terreno contenente 3H-Tdr<br />
sostituito con timidina non<br />
radioattiva.<br />
<strong>DNA</strong> ad alto peso<br />
molecolare (sintesi<br />
continua)<br />
<strong>DNA</strong> a basso peso<br />
molecolare (sintesi<br />
per frammenti)<br />
<strong>DNA</strong> ad alto peso<br />
molecolare (sintesi<br />
continua)<br />
<strong>DNA</strong> a basso peso<br />
molecolare (sintesi<br />
per frammenti)<br />
Ulteriore coltivazione a 32°C con<br />
raccolta di aliquote <strong>del</strong>la coltura a<br />
tempi diversi, estrazione <strong>del</strong> <strong>DNA</strong><br />
e analisi in elettroforesi e<br />
autoradiografia<br />
0 5 10 15<br />
0 5 10 15
Conclusioni:<br />
Nei pochi minuti di esposizione alla timidina marcata, questa viene incorporata nel <strong>DNA</strong>, sia nel<br />
filamento anticipato, sia in quello ritardato. Se in seguito i batteri vengono ricoltivati in terreno non<br />
radioattivo, e ad una temperatura permissiva per l’attività <strong>del</strong>la ligasi, (32°C), la radioattività<br />
precedentemente associata ai frammenti viene a far parte di un <strong>DNA</strong> a peso molecolare sempre più<br />
elevato (gel superiore, la banda si sposta gradualmente verso l’alto).<br />
Se viceversa la ricoltivazione viene effettuata ad una temperatura di 42°C, quindi non permissiva per<br />
l’attività <strong>del</strong>la ligasi di questo ceppo particolare, la radioattività associata ai frammenti di Okazaki non<br />
potrà entrare a far parte <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> ad alto peso molecolare, quindi in autoradiografia si vedrà sempre<br />
sempre la radioattività associata a questi frammenti.<br />
Ciò dimostra che la ligasi è indispensabile nel processo di <strong>duplicazione</strong> <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> e che nel corso di<br />
questo processo si passa attraverso uno stadio nel quale esistono frammenti di <strong>DNA</strong> a basso peso<br />
molecolare.<br />
DOMANDA: Come fareste voi a selezionare dei ceppi batterici termosensibili ???<br />
Mandare eventualmente la risposta al mio indirizzo e-mail: Alberto.Clivio@unimi.it
Quadro sintetico <strong>del</strong> processo di <strong>duplicazione</strong>
5’<br />
3’<br />
5’<br />
origine <strong>del</strong>la replicazione<br />
1. Apertura <strong>del</strong>la doppia elica da parte <strong>del</strong>l’enzima elicasi.<br />
2. Sintesi degli inneschi di RNA (“primers”) ad opera<br />
<strong>del</strong>l’enzima primasi (in direzione 5’-->3’)<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
3. Intervento <strong>del</strong>la <strong>DNA</strong> polimerasi III che<br />
riconosce l’estremità 3’OH degli inneschi<br />
e sintetizza <strong>DNA</strong> in direzione 5’ -->3’<br />
subentrando alla primasi.<br />
Direzione di apertura <strong>del</strong>le forcelle replicative<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
5’<br />
3’<br />
4. Le molecole di <strong>DNA</strong> polimerasi orientate nella direzione<br />
di apertura <strong>del</strong>le forcelle replicative continuano la sintesi di<br />
<strong>DNA</strong>.<br />
Quelle che procedono in senso opposto necessitano di<br />
nuovi inneschi che forniscono estremità 3’OH disponibili.<br />
5’<br />
3’<br />
Direzione di apertura <strong>del</strong>le forcelle replicative<br />
sintesi discontinua<br />
(frammenti di Okazaki)<br />
3’<br />
5’<br />
sintesi continua<br />
5. Di conseguenza, in corrispondenza di ciascuna<br />
forcella replicativa, uno dei due filamenti <strong>del</strong> <strong>DNA</strong> viene<br />
sintetizzato sotto forma di un filamento continuo, mentre<br />
l’altro a frammenti che verranno in seguito legati tra loro<br />
dall’enzima ligasi, dopo che gli inneschi di RNA sono stati<br />
rimossi e sostituiti da <strong>DNA</strong> ad opera <strong>del</strong>la <strong>DNA</strong> polimerasi I.<br />
5’<br />
3’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’
In questo modo, tutto il <strong>DNA</strong> viene duplicato; i frammenti a basso<br />
peso molecolare vengono progressivamente incorporati in una<br />
molecola di grandi dimensioni.<br />
5’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
3’<br />
5’<br />
3’<br />
5’
DUPLICAZIONE NEGLI EUCARIOTI<br />
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
ORI
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
1. Formazione <strong>del</strong> complesso ORC in corrispondenza <strong>del</strong>le<br />
origini di replicazione<br />
ORI
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
2. Caricamento dei fattori di replicazione<br />
(<strong>DNA</strong>-binding factor replication protein A, RP-A)<br />
ORI
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
3. Destabilizzazione <strong>del</strong>la doppia elica
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
4. Apertura <strong>del</strong>la doppia elica<br />
e reclutamento <strong>del</strong>la topoisomerasi I<br />
Elicasi
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
5. Inizio <strong>del</strong>la sintesi <strong>del</strong> filamento anticipato<br />
per reclutamento di Pol α-primasi<br />
polα pol<br />
polα<br />
pol
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
6. Sintesi <strong>del</strong> filamento anticipato<br />
e <strong>del</strong> filamento ritardato<br />
per reclutamento di pol δ e pol ε<br />
ε<br />
δ<br />
α<br />
α δ<br />
ε
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
7. Commutazione <strong>del</strong>le polimerasi α sul filamento ritardato con<br />
l’apertura ulteriore <strong>del</strong>le forcelle replicative<br />
ε<br />
δ<br />
α<br />
α<br />
δ<br />
ε
Che cosa succede a livello <strong>del</strong>l’origine <strong>del</strong>la replicazione?<br />
8. Sintesi di nuovi primers da parte <strong>del</strong>la pol α e reclutamento di altre molecole di<br />
pol δ ed ε per la sintesi dei frammenti di Okazaki, che in seguito verranno<br />
saldati tra loro dalla ligasi dopo la degradazione dei primers ad RNA<br />
Direzione di apertura<br />
ε<br />
δ<br />
α<br />
ε<br />
δ<br />
ε<br />
δ<br />
α<br />
δ<br />
ε<br />
Direzione di apertura