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tipizzazione e caratterizzazione di varietà precoci di patata ... - PbgLab

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STUDIO DEI METABOLITI SECONDARI DI VARIETà PRECOCI DI SolANUm tUBeroSUm LEPORE<br />

Analisi HPlC-DAD<br />

Le analisi sono state realizzate usando un HPLC-<br />

DAD Agilent 1200 Series (Agilent Technologies, Palo<br />

Alto, CA, USA), costituito da una pompa binaria (G-<br />

1312A), un auto-campionatore (G-1329A), un degassatore<br />

(G-1322A) e un rivelatore a serie <strong>di</strong> <strong>di</strong>o<strong>di</strong><br />

(1315D). I solventi usati sono il metanolo (ottenuto<br />

da Romil, Cambridge, UK),) per la fase B e l’acqua<br />

milliQ (preparata usando un Millipore, Bedford, MA,<br />

USA). Gli standard sono stati acquistati da Extrasynthese<br />

(Lione, Francia), e Sigma Aldrich (Milano, Italia).<br />

Le analisi sono state effettuate utilizzando una<br />

colonna monolitica Onyx (50x2 mm C18, Phemomenex,<br />

Italia), velocità <strong>di</strong> flusso utilizzata 0,600 ml/min,<br />

lunghezza d’onda selezionata 280 nm. I campioni<br />

sono stati iniettati in triplicato.<br />

Il gra<strong>di</strong>ente utilizzato è stato: da 0 a 1 min, 100%<br />

<strong>di</strong> tampone A (H2O + 0,01% acido trifluoroacetico);<br />

da 1 a 6,7 min, 0-30% <strong>di</strong> tampone B (MeOH Merck);<br />

da 6,7 a 11,7 min, 30-70% <strong>di</strong> B; da 11,7 a 14,56, 70-<br />

90% <strong>di</strong> B; da 14,56 a 18, 90% <strong>di</strong> B, con un post-time<br />

<strong>di</strong> 4 minuti. L’identificazione dei picchi cromatografici<br />

è stata effettuata me<strong>di</strong>ante analisi <strong>di</strong> spettrometria<br />

<strong>di</strong> massa. Gli standard sono stati preparati alla<br />

concentrazione <strong>di</strong> 0,05 mg/ml. La quantificazione<br />

dei composti fenolici, aminoaci<strong>di</strong> e acido ascorbico,<br />

è stata effettuata nelle medesime con<strong>di</strong>zioni <strong>di</strong><br />

analisi dell’estratto. Sono state costruite le curve <strong>di</strong><br />

calibrazione degli standard acido ascorbico, tirosina,<br />

triptofano, acido ferulico, acido caffeico, acido clorogenico,<br />

rutina e quercetina. L’acido neoclorogenico è<br />

stata valutato come equivalente <strong>di</strong> acido clorogenico.<br />

I derivati dell’acido caffeico (caffeoil spermina, bis-<strong>di</strong>idrocaffeoil<br />

spermina, tris-<strong>di</strong>idro caffeoil spermi<strong>di</strong>na)<br />

sono stati stu<strong>di</strong>ati come equivalenti <strong>di</strong> acido caffeico.<br />

Gli standard sono stati preparati a una concentrazione<br />

stock <strong>di</strong> 10 mg/ml in metanolo, eccetto la tirosina<br />

e triptofano preparate ad una concentazione 10 mg/<br />

ml 0,1 N HCl 7. Sono state effettuate iniettate a <strong>di</strong>versi<br />

volumi <strong>di</strong> iniezione (da avere 0,1 µg, 0,5 µg, 1<br />

µg, 1,5 µg, 2 µg, 3 µg). Riportando in grafico le aree<br />

dei picchi cromatografici inn funzione delle rispettive<br />

concentrazioni, è stata ottenuta una curva <strong>di</strong> calibrazione<br />

con almeno 6 punti per ogni standard, utile per<br />

quantizzare i metaboliti.<br />

Analisi lC-mS<br />

Le analisi LC-MS/MS sono state eseguite con uno<br />

strumento <strong>di</strong> Q-TOF Premier (Waters, Milford, MA,<br />

USA), dotato <strong>di</strong> una sorgente electrospray, accoppiato<br />

ad un HPLC Alliance 2695 (Waters).<br />

Il tuning e la calibrazione dello strumento sono state<br />

effettuate utilizzando uno standard puro <strong>di</strong> Solanina<br />

([M+H] += m/z 869,07). I campioni sono stati sciolti in<br />

1,5 ml <strong>di</strong> acqua, agitati me<strong>di</strong>ante vortex per 1 minuto<br />

circa, e poi centrifugati per 2 min a 13 rpm. Dalla soluzione<br />

ottenuta, sono stati prelevati 1 ml a cui sono<br />

stati aggiunti 20 µl <strong>di</strong> angiotensina come standard interno.<br />

Lo standard è stato preparato partendo da una<br />

soluzione standard 8 mg/ml, successivamente <strong>di</strong>luito<br />

fino ad una concentrazione <strong>di</strong> 40,8 µg/ml. La separazione<br />

cromatografica è stata condotta iniettando 10 μl<br />

<strong>di</strong> ciascun campione su una colonna monolitica Onyx<br />

(Phenomenex) (50x2 mm, una velocità <strong>di</strong> flusso 0.4<br />

ml/min). Il gra<strong>di</strong>ente <strong>di</strong> eluizione è: 0-1 min buffer A<br />

al 100% (H2O + 10 mM <strong>di</strong> acido formico, pH 3,5, con<br />

NH4OH), 1-6,7 min 0-30% <strong>di</strong> buffer B (MeOH), 6,7-<br />

11,7 min 40-70% <strong>di</strong> buffer B, 11,7-14,56 min 70-100%<br />

<strong>di</strong> buffer B, 14,56-20 min 100% buffer B. Le analisi<br />

sono state condotte in polarità positiva. La temperatura<br />

della sorgente è stata fissata a 80 ºC, con temperatura<br />

<strong>di</strong> desolvatazione <strong>di</strong> 150 ºC. Il capillary voltage<br />

usato era pari a 3 kV e il sampling cone 30 eV. La<br />

collision energy pari a 2, la cell entrance 5, la cell exit<br />

-20. I metaboliti analizzati me<strong>di</strong>ante HPLC sono stati<br />

identificati me<strong>di</strong>ante analisi LC-ESI-MS sia dell’estratto<br />

che <strong>di</strong> una soluzione multi-standard, contenente<br />

i principali metaboliti caratterizzati. Il multi-standard<br />

è stato preparato a partire dai singoli analiti ad una<br />

concentrazione 100 mg/ml in MeOH. Successivamente<br />

tutte le soluzioni sono state <strong>di</strong>luite a 0,1 mg/ml. Di<br />

ogni standard <strong>di</strong>luito a 0,1 mg/ml sono stati prelevati<br />

5 µl e portato a 500 µl finali <strong>di</strong> acqua.<br />

Me<strong>di</strong>ante LC-MS sono stati identificati e quantizzati<br />

i glicoalcaloi<strong>di</strong> α-chaconina e α-solanina (metodo<br />

dell’aggiunta standard). I dati sono stati analizzati<br />

attraverso l’uso del software MassLynx 4.1 (Waters).<br />

La quantizzazione è stata ottenuta me<strong>di</strong>ante<br />

la curva <strong>di</strong> calibrazione, utilizzando come standard<br />

α-chaconina, α-solanina e apigenina. Gli esperimenti<br />

sono stati condotti in triplicato, sono stati iniettati <strong>di</strong>versi<br />

volumi in modo da ottenere per i glicoalcaloi<strong>di</strong><br />

25 ng, 50 ng, 75 ng, 100 ng, 150 ng e 250 ng e per<br />

l’apigenina 0,125 ng, 0,25 ng, 1 ng, 1,5 ng.<br />

Risultati e <strong>di</strong>scussione<br />

Lo stu<strong>di</strong>o dei metaboliti secondari <strong>di</strong> <strong>varietà</strong> <strong>precoci</strong><br />

<strong>di</strong> Solanum tuberosum L. (solanaceae) è stato<br />

Vol. 24 - Suppl. 1 al N. 1 MINERVA BIOTECNOLOGICA 45

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