GdL Micropropagazione - Newsletter n. 7 maggio ... - Fertirrigazione.it

Newsletter n. 7 – Maggio 2013
Società di Ortoflorofrutticoltura Italiana
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
In questo numero:
Premio Carmine Damiano: in ricordo di un Amico Pag. 2
Ricerca & Innovazione
Development of a new bioreactor for large scale
micropropagation and basic research: the Plantform
di Margareta Welander e Tatiana Kuznetsova Pag. 3
Laboratori di Ricerca e Commerciali
Il laboratorio di colture in vitro del CRA-FRU di Roma Pag. 5
Il laboratorio di tecnologie in vitro e crioconservazio-
ne del CNR-IVALSA di Sesto Fiorentino (Firenze) Pag. 6
Il laboratorio di BIANCHERI CREATIONS ® , tradizione
e ricerca nella floricoltura ligure Pag. 7
Incontri del Gruppo di Lavoro nel 2012
“Plant propagation in liquid culture”. Scuola di Studi
Universitari e Perf. Sant’Anna, Pisa, 12 aprile 2012 Pag. 8
Seminari di M. Jain (12.3.2012) e Q. Wang (4.7.2012) Pag. 9
“Summer School of Floriculture 2012”. Sanremo-
Pescia, 10-14 settembre 2012 Pag. 10
”Corso di Base di Micropropagazione (Propagazione In
Vitro): teoria e pratica”. Cesena, 22-26 ottobre 2012 Pag. 11
Programma 2013 del Gruppo di Lavoro Pag. 12
Simposi ISHS 2013 Pag. 13
Novità Editoriali Pag. 17
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 1

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Premio Carmine Damiano: in ricordo di un Amico
Carmine ci ha lasciati: con lui
se ne sono andati, non solo un
apprezzato studioso e
appassionato sperimentatore,
ma sopratutto un grande
Amico di tutti noi. Grazie a lui
e alla sua attività
professionale la coltura in
vitro e la micropropagazione
sono cresciute di importanza
nel tempo; grazie a lui la
ricerca italiana di settore ha
acquisito la considerazione del
mondo scientifico
internazionale, anche per la
sua attività di promozione
nell’ambito di importanti
Società, quali la SOI e
l’ISHS. Questo Premio a lui
dedicato vuole essere un
segno, modesto ma sincero,
del nostro affetto per lui.
Il bando con le informazioni per la
partecipazione può essere richiesto a:
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 2

Ricerca & Innovazione
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Development of a new bioreactor for large scale micropropagation
and basic research: the Plantform (www.plantform.se)
Background
The concept of plant micropropagation is well established and widely used in commercial plant
propagation. During the last 60 years, enormous amount of resources have been assigned to
research concerning basic micropropagation techniques for large scale plant production, to
accelerate time scale between the breeding line and marketing, production of healthier plants
through disease elimination and healthier growing environments. Conventional
micropropagation is expensive and labour intensive. Until now few laboratories have been
truly profitable. However with development of a new biological pathway using liquid culture
systems in bioreactors (TIS) it is now possible that micropropagation become cost-effective.
The RITA system developed by a French company was not suitable for us so decided to
develop a new container.
Description of the invention
The Plantform bioreactor for large scale in vitro plant production has been designed in a way
that is easy to handle, it has low weight, it is transparent, it is autoclavable, the gas exchange
including oxygen and carbon dioxide can be controlled using air pumps and a timer. Since the
in/out lets are placed on one side the units can be placed above each other saving place in the
climate chamber.
Fig. 1 shows the various parts of the bioreactor, consisting of a body made of
polycarbonate which is transparent and can stand heating 1200 C. The size is 180x150x150
mm. Gas exchange is controlled through three inlets/outlets anchored to the side by nuts and
clamps through holes in the body and sealed with heat resistant silicon o-rings. The gases are
passed through sterile filters connected by silicon tubes to the inlets. The middle filter is
connected to a plastic tube on the inner chamber and goes through the basket (1-2,E).
Fig. 1. 1, Bioreactor and its different parts numbered from A-F; 2, Outer container with 3 inlets/outlets
for gas exchange, E shows the middle filter connected to a plastic tube on the inner chamber; 3, filters,
plastic tubes, nuts, clamps and silicon rings to be connected to the 3 inlets/outlets on the outer
container; 4, inner chamber with 3 grooves on the long side and connection to the middle filter (A) and
basket with 3 rows of small holes (B); 6, frame with 4 legs; 7, lid with 4 flaps and an inner silicon ring.
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Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
An inner chamber with 3 grooves on the long side and 2 grooves on short side is placed at
the bottom of the bioreactor. It is designed in a way to allow nutrients to rise efficiently
when a pressure is applied (4,A). A basket containing the plant material is placed above
the inner chamber. The small holes in the basket is placed in three rows which allow the
nutrients to flow efficiently through the basket (5,B). A frame with four legs is placed at
the bottom of the basket to press down the basket when a pressure is applied. (6,C). The
body is closed by a lid which is air tight using silicon seal inside a groove of the lid. The lid
is a snap-on lid easy to put on and remove (7).
After sterilizing all parts the bioreactor is ready to use. The body is filled with generally
500ml of nutrient solution under the inner chamber. Then sterile plant material is placed
on the basket. The frame with the four legs is placed on the basket and the lid is secured
at the top of the body. The filters on the plastic tubes are connected to two air pumps and
two timers. When a pressure is applied to the middle filter the nutrient solution is forced
upwards and covers the plant material. When pressure is relieved the nutrients will drain
back through the holes in the basket. No liquid will be left on the basket which is important
to avoid hyperhydricity. The immersion time and frequency is set by one of the timers. The
duration and frequency of ventilation is set by the other timer connected to one of the
other filters (see Fig 2). Since the body has feet at the bottom several units can be placed
above each other.
Figure 2. Eight bioreactors connected
to two timers and 2 air pumps. One air
pump controls the level of the
nutrients and one controls ventilation.
The advantage of the Plantform bioreactor
The bioreactor will reduce production costs and
improve plant quality. In particular: (1) the use of
liquid nutrient solution will eliminate costs for agar,
the gelling agent, which is used in conventional in
vitro propagation; (2) the size of the bioreactor will
allow a larger amount of plants in each unit which
will reduce labour costs for transferring plants to
new containers; (3) the amount of nutrient supply
can be regulated due the different growth phases
(bigger plants require more nutrients than small
plants); (4) the gas phase in plant tissue culture is
important and with this system enrichment of
oxygen and other gases can be regulated. Several
plants produce ethylene especially during rooting after application of auxin. Deleterious
gases can be removed by this system; (5) rooting will take place in liquid medium which
facilitate planting in soil afterwards. Acclimation of in vitro plants when transferred to soil
condition generally cause great losses of plants. This is caused by sensitivity to low
humidity after in vitro production. With this system the stomata in the plants are functional
which means that acclimation in soil is improved.
Blueberry
Raspberry
Margareta Welander, Tatiana Kuznetsova
Silver Birch
Department of Plant Breeding and Biotechnology, Swedish University
of Agricultural sciences, Alnarp, Sweden -
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Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
I Laboratori di Ricerca e Commerciali
Segnalate le attività del vostro laboratorio in max 500 parole e 1-2 immagini a:
Il laboratorio di colture in vitro del CRA-FRU di Roma
Il laboratorio del CRA, Centro di ricerca per la Frutticoltura di Roma nasce nei primi anni ’70 in
quello che allora era l’Istituto Sperimentale per la Frutticoltura afferente al MAF. I primi approcci
di coltura in vitro vennero allora effettuati da Carlo Fideghelli che introdusse dagli Stati Uniti la
tecnica dell’embryo rescue al fine di permettere lo sviluppo di selezioni di pesco precoci. Il
successivo ampliamento del laboratorio fu dovuto al forte impegno di Carmine Damiano che
applicò ai fruttiferi la tecnica della micropropagazione al fine di ottenere efficienti protocolli che
fossero di supporto alla produzione commerciale vivaistica, in forte crescita in quel periodo, e
consentissero un’elevata produzione di qualità anche mediante le tecniche di risanamento. Le
specie studiate in quegli anni erano principalmente la fragola e vari portinnesti (Prunus e Malus
spp.). Successivamente, il costituito “gruppo vitro” ha svolto un’attività di ricerca e
sperimentazione nell’ambito di progetti nazionali ed europei, rivolta alla messa a punto e al
miglioramento dei protocolli di micropropagazione di cultivar e portinnesti di pesco, ciliegio,
pero, fragola, melo e actinidia. Negli ultimi anni l’interesse si è anche rivolto a fruttiferi minori
quali sorbo, azzeruolo, melograno e piccoli frutti. L’approccio per l’ottimizzazione ha riguardato
le varie fasi del processo di micropropagazione, dall’allestimento del materiale, generalmente
prelevato dalla collezione di germoplasma di cui il CRA-FRU è sede, all’ambientamento, con
particolare interesse nei confronti della rizogenesi in specie recalcitranti come mandorlo,
nocciolo e noce. L’esperienza maturata ha permesso negli anni di applicare la coltura in vitro
per studi di base ed applicativi sull’incidenza della variazione somaclonale, mediante approcci
dapprima enzimatici e poi molecolari, sugli effetti nelle condizioni di stress indotte, con
particolare riferimento alla valutazione della stabilità genetica degli espianti mediante marcatori
molecolari RAPDs e microsatelliti. Sono stati effettuati studi sull’espressione genica, mediante
qPCR durante i processi differenziativi da gemma ascellare in presenza di citochinine. Il gruppo
ha messo a punto anche protocolli di crioconservazione e crescita rallentata per varie specie
frutticole arboree, sia nell’ambito dei progetti europei “Crymcept” e “Cryoplanet” (COST 871),
sia del progetto nazionale RGV-FAO, finanziato dal MiPAAF. Nel settore dell’organogenesi
avventizia sono stati messi a punto protocolli di rigenerazione da foglia (actinidia, melo e pero e
Prunus spp.), da stipole (fragola) e da ipocotile (Prunus spp.). I sistemi rigenerativi sono stati
utlizzati per l’applicazione della transgenesi principalmente per la resistenza a Plum Pox Virus in
Prunus spp. e per lo sfruttamento delle variazione somaclonale indotta da agenti selettivi
abiotici (quali cloni di actinidia tolleranti a NaCl). Negli ultimi anni l’attività è stata rivolta anche
agli studi sull’utilizzo della coltura in vitro per la produzione di metaboliti secondari da specie
quali melograno e piccoli frutti e agli studi sulla compatibilità di innesto con approcci molecolari.
Attualmente il gruppo dispone di un laboratorio con 5 cappe a flusso laminare, un’area
autoclavi, un laboratorio per la preparazione dei terreni di coltura, un laboratorio per le analisi
Rigenerazione avventizia da fo-
glia di melo, portinnesto M9 Jork
molecolari, un laboratorio per le analisi biochimiche, due
serre di ambientamento e un ombraio. Collaborano all’attività
4 Ricercatori (Emilia Caboni, Simona Monticelli, M. Antonietta
Palombi, Simona Lucioli), un Tecnico laureato (Adele Gentile)
e 2 Operatori tecnici (Andrea Frattarelli, Marcella Agostinelli),
oltre che studenti e assegnisti. Il gruppo ha ospitato e ospita
studenti e colleghi dall’Italia e dall’estero per lo svolgimento
di tesi di laurea, Ph.D., master, tirocini, stage formativi;
numerose sono le collaborazioni con gruppi di ricerca
nazionali ed internazionali.
Emilia Caboni, Simona Monticelli
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Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Il laboratorio di tecnologie in vitro e
crioconservazione del CNR-IVALSA
di Sesto Fiorentino (Firenze)
Stanza preparazione substrati
tivar e portinnesti da frutto rappresenta ancora oggi uno dei settori trainanti dell’IVALSA. Vari
aspetti del processo di micropropagazione (quali l’introduzione e la stabilizzazione in vitro, la
proliferazione, la radicazione in vitro ed ex vitro, la variabilità somaclonale) sono stati nel
tempo indagati per numerose specie da frutto e da legno (quali olivo, susino, pioppo, kaki,
actinidia e vari portinnesti), con obiettivi finalizzati a contenere i costi di laboratorio e a
garantire l’elevata qualità e rispondenza genetica delle produzioni. Particolare attenzione è
posta oggi nel miglioramento sia della conservazione delle colture di germogli a bassa
temperatura, sia della proliferazione mediante coltura liquida in immersione temporanea,
impiegando i sistemi RITA e Plantform, in confronto con la coltura tradizionale in substrato
gelificato. Tali linee di ricerca sono state recentemente applicate anche a specie ornamentali,
nell’ambito del progetto VITROPLANT, finanziato dal MiPAAF.
Altre importanti linee di ricerca riguardano l’embriogenesi
somatica e la produzione di sostanze volatili utili in colture in
vitro. La grande esperienza maturata nel settore della
morfogenesi in vitro ha inoltre permesso di sviluppare una
linea innovativa di conservazione della biodiversità vegetale
in azoto liquido (crioconservazione), anche operando
nell’ambito dell’Azione COST 871 “CryoPlanet”. Varie tecniche
di vitrificazione e conservazione a -196 C di micro-gemme,
callo embriogenico, gemme dormienti, semi ed assi
embrionali sono state perfezionate per numerose specie
arboree da frutto, da legno ed ornamentali. Presso l’IVALSA è
oggi operante una criobanca per la conservazione sia di semi
poliembrionici provenienti da accessioni Medicee di agrumi,
sia di segmenti uni-nodali da antiche cultivar di melo del
Veneto, utilizzate in post-crioconservazione per la ricostituzio-
ne di piante mediante ‘chip-budding’. Nel complesso dei
laboratori di coltura in vitro, micropropagazione e crioconser-
vazione dell’IVALSA operano un totale di 4 Ricercatori (Carla
Benelli, Anna De Carlo, Maurizio Lambardi e Annarita Leva),
un Assegnista CNR (Aylin Ozudogru) e due Tecnici (Federico
Stefani e Laura Rinaldi). Numerosi studenti di M.Sc., Ph.D. e
post-Doc, italiani e stranieri, hanno soggiornato in questi anni
nel “Laboratorio di tecnologie in vitro e crioconservazione”:
l’ospitalità verso i giovani ricercatori è, infatti, un aspetto al
quale l’IVALSA dà grande importanza.
L’attività di coltura in vitro del CNR-IVALSA di Sesto
Fiorentino affonda le sue radici in tempi lontani, quando agli
inizi degli anni ‘80 venne creato, presso l’ex-Istituto per la
Propagazione delle Specie Legnose di Scandicci, uno dei
primi laboratori italiani di micropropagazione. Da allora il
laboratorio è sempre stato un punto di riferimento per la
micropropagazione, stabilendo numerosi contatti con
laboratori commerciali nazionali, mentre altre linee di
ricerca innovative, aventi come base la coltura in vitro, sono
state nel tempo intraprese, anche attraverso collaborazioni
e progetti con varie istituzioni nazionali e internazionali. Lo
sviluppo di efficienti protocolli di micropropagazione per cul-
Una delle nove celle climatiche
per la coltura e la conservazio-
ne in vitro a bassa temperatura
Maurizio Lambardi, La criobanca del CNR-IVALSA
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 6

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Il laboratorio di BIANCHERI CREATIONS ®
tradizione e ricerca nella floricoltura ligure
(www.bianchericreations.it)
La nascita nel 1982 dell’azienda di ricerca Biancheri Creations® ha radici
profonde che partono dagli inizi del secolo scorso quando l’attività della
famiglia Biancheri progressivamente evolveva dal commercio di petali di
rose, per la produzione di essenze profumate, alla commercializzazione
sempre più importante di anemoni “de Caen” sul mercato ligure. Mentre
si diffondevano nuove varietà di anemone, sostenuto dalla professionalità
e dalle risorse impiegate in un mercato in rapida espansione, il sogno di
divenire anche creatori di nuove varietà si è concretizzato oggi con
l’affermarsi della specie ranuncolo che, grazie ad una crescente attività di
breeding, è divenuta importante punto di riferimento per l’economia
floricola del Ponente Ligure. L’azienda ha raggiunto il suo obiettivo
incrementando il numero e l’estensione delle strutture produttive, ammodernando
quelle esistenti e, grazie al lavoro di un gruppo di qualificati ricercatori, oggi
vanta una creazione e commercializzazione a livello mondiale di varietà di ranuncoli ed
anemoni tra le più apprezzate. Inoltre la collaborazione con Enti di Ricerca locali ha
contribuito ad elevare il knowout del personale tecnico impiegato, permettendo di collocare
l’azienda all’avanguardia nel campo della ricerca floricola. Accanto al lungo e paziente
lavoro di ibridazione, fonte inesauribile di variabilità genetica, si sono sviluppate nuove
strutture volte ad accorciare i tempi per lo sviluppo commerciale delle nuove varietà
selezionate e ad una migliore qualificazione della produzione. Inizialmente la costruzione di
un piccolo laboratorio di diagnostica con annessa una serra ‘insect proof’ ha permesso con
tecniche di indagine sierologica ELISA di controllare lo stato virologico del materiale
prodotto. In seguito, l’importanza economica progressivamente crescente del ranuncolo e la
sua reattività alle tecniche di coltura in vitro, hanno convinto ad intraprendere una nuova
strada con la costituzione di un laboratorio di micropropagazione che, oramai da circa 8
anni, funziona in stretta sinergia con il reparto di miglioramento genetico e rappresenta un
fondamentale strumento per lo sviluppo delle nuove selezioni. L’attività spazia
dall’introduzione in vitro di nuove genotipi che assumeranno il ruolo di varietà commerciale
(linea da clone Success ® ) o di linee parentale per la produzione di varietà sementiere (linea
da seme Elegance ® ), alla produzione di nuclei di pre-moltiplicazione delle nuove varietà e
la costituzione di un germoplasma in vitro per la conservazione di tutte le varietà prodotte.
Il laboratorio conduce esperienze a supporto dell’impollinazione, come la conservazione del
polline, l’ ‘embryo rescue’ e le prove di germinabilità del seme, oltre ad un’attività di ricerca
per migliorare le metodiche utilizzate nelle diverse fasi di coltura asettica e i protocolli di
iniziazione al vitro di nuove specie di interesse floricolo, come ad esempio l’anemone e il
papavero. Si auspica che questo intenso lavoro porti, nei prossimi anni, l’ampliamento del
numero di varietà e specie prodotte con il supporto della micropropagazione e, con le nuove
tecnologie del DNA, anche un affinamento della diagnostica
fitopatologica. L’assodato vantaggio della micropropagazione
di poter produrre in tempi brevi materiale selezionato,
omogeneo e controllato, con un elevato standard qualitativo,
ha permesso alla linea da clone Success ® Breeding su
ranuncolo
, grazie anche alla
consolidata collaborazione con il laboratorio di ricerca di un
importante Ente nazionale, di raggiungere una produzione
annua di circa 2.000.000 di pezzi.
Mario Rabaglio
Anemone da vitro in coltivazione
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 7

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Incontri del Gruppo di Lavoro nel 2012
In occasione della visita della Prof. Margareta Welander, Professore
Emerito presso il Department Plant Breeding and Biotechnology della
Swedish University of Agricultural Sciences, il 12 Aprile 2012 si è svolto
nell’Aula Magna Storica della Scuola di Studi Universitari e Perfeziona
mento Sant’Anna l’incontro “Plant propagation in liquid culture”,
organizzato da Anna Mensuali, Mariella Lucchesini e Maurizio Lambardi,
in collaborazione con la Scuola di Dottorato di Scienze Agrarie e
Veterinarie dell’Università di Pisa e nell’ambito delle attività del Gruppo
di Lavoro. Questi sistemi colturali si basano sull’uso di mezzi di coltura
liquidi, somministrati periodicamente. Consentono il controllo dei fattori
macro- e micro-ambientali e promuovono la crescita e lo sviluppo degli
espianti, riducendo i disordini morfologici e fisiologici (quali iperidricità e
anomalie a livello di epicuticola), la perdita di piante dovute a
contaminazione e favorendo la crescita vigorosa delle plantule dopo
trasferimento ex vitro. Oltre al seminario della Welander sul tema
“Large scale micropropagation and applied physiology based on
temporary immersionn system” si è svolta una sessione di
comunicazioni scientifiche su tematiche di ricerca inerenti al tema
principale della giornata. Marco Savona ha presentato una
comunicazione dal titolo “Sistema ad immersione temporanea in
ornamentali: esperienze presso il CRA-FSO di Sanremo” durante la
quale ha illustrato i numerosi lavori svolti dal gruppo di lavoro costituito
da Barbara Ruffoni, Sara Barberini, Ermanno Sacco, Carlo Mascarello.
Valeria Cavallaro del CNR-ISAFOM di Catania, nella sua presentazione “Influenza della
coltivazione su mezzo liquido a immersione temporanea sulla propagazione su larga scala di
specie no food: il caso studio Arundo donax L., promettente specie da biomassa”, ha
evidenziato i problemi connessi soprattutto al mantenimento della sterilità nelle colture ad
immersione temporanea. Anna Mensuali (ISV, Scuola Sant’Anna) ha descritto la possibilità di
utilizzare i sistemi TIS per specie officinali e per specie idrofite approfondendo tematiche
relative a “Scambi gassosi e sviluppo di autotrofia in sistemi liquidi ad immersione
temporanea”. In conclusione, Aylin Elif Ozudogru ha mostrato i risultatati dell’ “Esperienza del
CNR-IVALSA di Firenze con i sistemi RITA e Plantform” che ha consentito di confrontare il già
collaudato sistema RITA con il nuovo bioreattore Plantform descritto dalla Welander. Al termine
della sezione di comunicazioni si è aperta una interessante discussione fra i numerosi
ricercatori ed esperti presenti alla giornata, stimolata dagli interventi di Maurizio Lambardi
dell’IVALSA di Firenze, di Mariella Lucchesini del DiSAAA di Pisa e di Romano Roncasaglia della
Vivai Piante Battistini di Cesena. Nell’ambito della discussione è emerso l’interesse, sia dei
ricercatori, sia dei rappresentanti delle realtà produttive, verso la sperimentazione di sistemi
innovativi ed alternativi alla classica micropropagazione. L’uso di questi protocolli può infatti
apportare miglioramenti significativi alla resa sia quantitativa che qualitativa di alcune specie
che presentano difficoltà o lentezza di propagazio
ne. L’applicabilità a livello commerciale richiede
comunque un approfondimento del rapporto
costi/benefici. A conclusione della giornata si è
svolta una dimostrazione pratica sull’uso del
nuovo bioreattore Plantform (vedi nota in
“Ricerca & Innovazione” di questa Newsletter)
che ha riscosso grande curiosità e interesse da
parte dei presenti.
Chi lo desidera, può richiedere l’invio delle
presentazioni, in formato PDF, ad Anna
Mensuali, all’email
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 8

Seminari di Qiaochun Wang
CRA-PAV, Centro di Ricerca per la
Patologia Vegetale
Roma, 4 Luglio 2012
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
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Il 4 Luglio 2012, con l’organizzazione di
Marina Barba del CRA-PAV di Roma,
Qiaochun Wang, docente e Vice-Rettore
presso il College of Horticulture della
Northwest Agriculture and Forestry
University di Yangling, Cina, ha tenuto due
seminari sulla criogenia applicata alle coltu
re in vitro. I seminari hanno visto la partecipazione di oltre 30 studiosi del settore delle colture
in vitro, provenienti dall’Italia e dall’estero. Nel primo seminario, dal titolo “Pathogen
eradication by cryotherapy of shoot tips: technique and mechanism”, il Prof. Wang ha
spiegato i principi d’azione del trattamento crioterapico sugli apici vegetativi per il risanamento
da virosi, fitoplasmi e batteri, evidenziando vantaggi e svantaggi di questa tecnica rispetto a
quelle convenzionali (termoterapia e coltura d’apice) in termini di costi, tempi, sopravvivenza,
rigenerazione e radicazione degli espianti. Molto interessante è stata la trattazione delle diverse
strategie e variabili che regolano la crioterapia; in particolare è stata evidenziata l’importanza di
un ridotto tasso di rigenerazione per garantire l’efficacia dell’eradicazione virale, al contrario di
quanto avviene in crioconservazione ove si mira sempre alla massima rigenerazione degli
espianti stoccati in azoto liquido. Il secondo seminario, intitolato “Novel and potential
application of cryopreservation to plant genetic transformation”, ha affrontato e
descritto la grande potenzialità applicativa della criogenia alla conservazione di linee
embriogeniche, protoplasti, colture di germogli transgenici e, in generale, di materiale vegetale
portatore di geni utili. E’ stata evidenziata inoltre la capacità di mantenere inalterate e, in alcuni
casi, di migliorare le caratteristiche rigenerative di tessuti embriogenici e protoplasti
provenienti da crioconservazione.
Anna Taglienti
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 9

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Summer School of Floriculture 2012
“Micropropagazione e tecniche avanzate di coltura in vitro”
Sanremo-Pescia, 10-14 settembre 2012
Dal 10 al 14 settembre 2012 si è svolta a
Sanremo (IM) e Pescia (PT) la seconda
edizione della Summer School of
Floriculture della Facoltà di Agraria di
Torino.
La Summer School of Floriculture, nata nel
2011 come nuovo strumento formativo
della Facoltà di Agraria dell’Università degli
Studi di Torino, è stata organizzata con il
patrocinio e il sostegno del Comune di
Sanremo e il contributo scientifico dell’
Istituto Regionale per la Floricoltura di
Sanremo (IRF), dell’Unità di Ricerca per la
Floricoltura e le Specie Ornamentali di
Sanremo (CRA-FSO ) e dell’Unità di ricerca
per il Vivaismo e la Gestione del Verde Ambientale ed Ornamentale di Pescia (CRA-VIV). La
Summer School of Floriculture 2012 ha inoltre ricevuto il patrocinio di SOI (Società di
Ortoflorofrutticoltura Italiana), SIGA (Società Italiana di Genetica Agraria), MIPAAF (Ministero
delle Politiche Agricole Alimentari e Forestali) e del Gruppo di Lavoro SOI “Micropropagazione e
tecnologie in vitro. Titolo e tema della edizione 2012: “Micropropagazione e tecniche avanzate
di coltura in vitro”.
Elaborato, nei contenuti, dal Comitato Scientifico costituito da Andrea Allavena (Direttore CRA-
FSO Sanremo), Margherita Beruto (Direttore IRF Sanremo), Marco Devecchi (Università degli
Studi di Torino), Aldo Ferrero (Università degli Studi di Torino), Antonio Grassotti (Già
Direttore CRA-VIV Pescia), Maurizio Lambardi (CNR-IVALSA), Sergio Lanteri (Università degli
Studi di Torino), Carlo Pasini (Già Direttore CRA-FSO Sanremo), Barbara Ruffoni (CRA-FSO
Sanremo) e Valentina Scariot (Università degli Studi di Torino), il corso ha avuto come
obiettivo quello di fornire una conoscenza dei principali approcci biotecnologici per la
propagazione, conservazione e miglioramento delle piante ornamentali. Le lezioni frontali,
suddivise in sette sessioni didattiche, sono state ospitate a Sanremo dall’IRF (dal 10 al 13
settembre) e a Pescia dal CRA-VIV (14 settembre) mentre il CRA-FSO di Sanremo è stato sede
delle visite ai laboratori sperimentali (12 settembre). Tra i temi trattati, il differenziamento, la
rizogenesi, la conservazione della biodiversità e la valutazione della qualità, la coltura in vitro
a supporto del miglioramento genetico e della produzione di metaboliti secondari, le varie
applicazioni tecnologiche e una panoramica sulle esperienze dal mondo della produzione nel
campo specifico delle ornamentali. Un programma ben articolato che ha visto la partecipazione
di relatori di altissimo livello provenienti dai migliori Atenei e Istituti di ricerca italiani ed
europei. Interessante ed eterogenea la pregressa esperienza formativa e professionale dei 29
iscritti, italiani e stranieri, che è stata alla base di stimolanti dibattiti alla fine di ogni sessione
didattica. A conclusione del corso la visita guidata al vivaio di Massimiliano Giusti di Montecarlo
(LU) e ai laboratori di micropropagazione della Azienda Agricola Meristema a Buti (PI).
Raccolti da subito pareri e opinioni di docenti e studenti, il bilancio della Summer School 2012
si è rivelato estremamente positivo. Al di là della qualità della didattica offerta, il Corso ha
rappresentato un’ottima occasione di confronto, aperto e dinamico, tra tutti i partecipanti che
si sono salutati con l’impegno di mantenere attivi i contatti nell’idea di possibili collaborazioni
future. La Summer School of Floriculture tornerà nel 2013 con la terza edizione con un nuovo
tema sarà reso pubblico all’inizio del nuovo anno.
Valentina Casabianca
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 10

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Il “Corso di Base di Micropropagazione (Propagazione
In Vitro): teoria e pratica” è stato organizzato dal CNR-
IVALSA di Firenze e dai Vivai Piante Battistini di Martorano di
Cesena, presso i quali si è svolto dal 22 al 26 ottobre. Il Corso
rientrava tra le iniziative del Gruppo di Lavoro SOI
“Micropropagazione e tecnologie in vitro” per l’anno 2012, è
stato patrocinato dalla SOI stessa e sponsorizzato da tre
operatori di settore, il portale fertirrigazione.it e le aziende
Micropoli e B&W “The Agar Company”. Così come negli intenti
degli organizzatori, trattandosi di un corso di base, la partecipa
zione (18 iscritti) è risultata assai diversificata, comprendendo
8 persone provenienti dal mondo della ricerca (Università, CRA
e CNR), 3 da laboratori commerciali di vitrocoltura, 3 dal
settore vivaistico, 4 da agenzie di servizo e cooperative. La
provenienza geografica degli iscritti, oltre che rappresentativa
di tutta l’Italia, ha avuto anche un tocco di internazionalità, con
tre partecipanti provenienti da Grecia, Serbia e Tunisia.
Sotto la direzione di Giuliano Dradi, Maurizio Lambardi e Alber-
to Previati e con il contributo di ricercatori del CNR-IVALSA
(Carla Benelli, Anna De Carlo, Aylin Ozudogru) e di personale della Vivai Piante Battistini
(Romano Roncasaglia, Andrea Vitale, Diego Bujazha e altri addetti di laboratorio), il corso si è
svolto attraverso lezioni frontali di base (dall’introduzione in vitro del materiale,
all’acclimatazione e commercializzazione del prodotto-pianta finito), esercitazioni pratiche in
laboratorio e in serra, 4 letture ad invito (di Barbara Ruffoni, Margherita Beruto, Rosario
Muleo e Giorgio De Paoli) e la visita finale ad un secondo laboratorio commerciale di
micropropagazione (Microplant di Cesena).
Il Corso ha ricevuto dai partecipanti espressioni di grande apprezzamento, gradimento
dell’iniziativa e sua rispondenza alle aspettative, con numerose richieste di organizzazione
in futuro di un secondo corso avanzato di tecnologie in vitro, opzione questa che verrà
tenuta nella dovuta considerazione. Un sincero e doveroso ringraziamento va ad Anna
Battistini, titolare della Vivai Piante Battistini, per aver permesso la realizzazione del Corso
negli ambienti e con il prezioso supporto del personale dell’azienda.
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 11

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Programma 2013 del Gruppo di Lavoro
26 giugno – ore 16.00-18.00, Aula 10 (Pentagono)
WORKSHOP
Il futuro della micropropagazione in Italia: quantità e/o qualità?
Coordinatori: Maurizio Lambardi, Giuliano Dradi, Rosario Muleo
16.00-16.25
Micropropagazione di specie ornamentali: aumento della produzione e garanzia della
qualità
Barbara Ruffoni, CRA-FSO, Sanremo (IM)
16.25-16.50
Innovazione e qualità: obiettivi della micropropagazione di piante e portinnesti da frutto
Roberto Di Primio, Apice Piante, Ripa Teatina (CH)
16.50-17.30
Discussione generale
17.30-17.45
Consegna Premio e breve ricordo di Carmine Damiano
17.45-18.00
Comunicazioni al Gruppo di Lavoro
* * * * * * * * * * * * *
In preparazione……
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 12

Simposi ISHS 2013
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Convener:
Jorge Canhoto
The 8 th International Symposium on In Vitro Culture and
Horticultural Breeding (IVCHB2013) will be held at the
Department of Life Sciences, University of Coimbra, Portugal, from 2-
7 June 2013, Portugal.
The main aim of the symposium is to bring together specialists and
stakeholders interested in different areas of plant tissue culture to
exchange ideas and information and to establish new lines of research
for the future. Main topics of the symposium will be: plant cloning,
plant conservation, somatic embryogenesis, rooting, haploid research,
genetic transformation and physiological, biochemical and molecular
aspects of in vitro culture. A technical tour and several cultural and
social events (dinner and a serenade of Fado included!) will take
place. The Convener of this Symposium (Prof. Jorge Canhoto) and his
team have the pleasure to invite all the colleagues working in this
field to join this meeting which will be held, for the first time, in
Portugal.
http://www.uc.pt/en/congressos/IVCHB2013
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 13

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
IVCHB2013 - Program
Sunday, June 2nd
14:30-18:00 Registration. Get together, Botanic Garden University of Coimbra
Monday, June 3rd
08:00-08:45 Registration
09:00-09:25 Opening session
09:30-10:15 Conference 1: Stress - the single most important determinant of
plant cell totipotency and morphogenesis in vitro. Arie Altman
(Hebrew University of Jerusalem, Israel)
10:15-10:45 Coffee break, posters
10:45-12:30 Session 1 – Micropropagation, rooting and acclimatization
(part 1)
12:30-14:00 Lunch, posters
14:00-14:45 Conference 2: New perspective in commercial micropropagation of
fruit trees and rootstocks. Maurizio Lambardi (CNR/National
Research Council of Italy)
14:45-16:00 Session 2 – Micropropagation, rooting and acclimatization
(part 2)
16:00-16:30 Coffee break, posters
16:30-18:00 Session 3 – Micropropagation, rooting and acclimatization
(part 3)
18:00-19:30 Drinks, posters and talks
Tuesday, June 4th
09:00-09:45 Conference 3: Breeding for conifer tree improvement capitalizing
on a biotechnological tool, somatic embryogenesis. Krystyna
Klimaszewska (Natural Resources Canada, Canadian Forest
Service, Quebec, QC, Canada)
09:45-10.30 Session 4 – Somatic embryogenesis
10:30-11:00 Coffee break, posters
11:00-12:30 Session 4 – Somatic embryogenesis (cont.)
12:30-14:00 Lunch, posters
14:00-14:45 Conference 4: Pollen embryogenesis and haploid technology in
barley. Jochen Kumlehn (Leibniz Institute of Plant Genetics and
Crop Plant Research, IPK, Gatersleben, Germany)
14:45-16:00 Session 5 – Haploids and Plant Breeding
16:00-16:30 Coffee break, posters
16:30-17:45 Session 5 – Haploids and Plant Breeding (cont.)
18:00-19:00 ISHS Business Meeting
20:00-22:30 FDM (Food, drinks & music)
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 14

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Wednesday, June 5th
09:00-09:45 Conference 5: Insights into seasonal cold acclimation and
ecodormancy break in a fruit tree species – almond. Margarida
Oliveira (Instituto de Tecnologia Química e Biológica, Universidade
Nova de Lisboa, Av. da República, 2780-157 Oeiras, Portugal)
09:45-10:30 Session 6 – Genetic transformation and molecular breeding
10:30-11:00 Coffee break, posters
11:00-12:30 Session 6 – Genetic transformation and molecular breeding (c.)
12:30-14:00 Lunch, posters
14:00-14:45 Conference 6: Can cryobiotechnology help ensure food security
required by rapidly increasing population of the world? Qiaoqun
Wang (Key Laboratory of Genetic Imp. of Hort. Plants, Northwest
A&F University, Yangling 712100, Shaanxi, China)
14:45-16:15 Session 7 – Cryopreservation and other conservation
approaches
16:30-18:00 Visit to the old part of the University of Coimbra
20:00-22:30 Symposium dinner and “Fados de Coimbra”
Thursday, June 6th
09:00-09:45 Conference 7: Plant Tissue culture and secondary metabolite
production. Cristina Figueiredo (Universidade de Lisboa, Fac. De
Ciências de Lisboa, Dep. de Biologia Vegetal, Lisboa, Portugal)
09:45-10:30 Session 8 – Chemistry and plant tissue culture
10:30-11:00 Coffee break, posters
11:00-11:45 Session 8 – Chemistry and plant tissue culture (cont.)
11:45-12:30 Conference 8: Chemical and genetic modulation of adventitious
root induction. Danny Geelen (Ghent University, Department of
Plant Production, Belgium)
12:30-14:00 Lunch
14:00-14:45 Conference 9: Future perspectives of in vitro culture and plant
breeding. Renate Müller (University of Copenhagen, Faculty of
Science, Plant and Environmental Sciences, Taastrup, Denmark)
14:45-15:15 Closing session
Friday, June 7th
07:30 Technical tour. Departure from Coimbra to Sever do Vouga (90 kms north
of Coimbra) to visit Mirtilusa, a blueberry producer company
09:00-11:30 Visit to Mirtilusa
12:30-13:45 Lunch
14:00-15:30 Visit to the cork producing company “Amorim Natural Cork”
15:00-17:00 Return to Coimbra
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 15

3 rd
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
http://col.st/RlEtRA
25-27 September 2013
PalaCongressi
Riva del Garda, Italy
http://eventi.fmach.it/Molecular-markers-2013/About-the-Conference
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 16

Novità Editoriali
Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Questa rubrica riporta le novità editoriali (articoli di riviste, libri, note tecniche) di
interesse per il settore della micopropagazione e delle tecnologie in vitro. Inviate le
vostre segnalazioni a .
PROTOCOLS FOR MICROPROPAGATION OF SELECTED
ECONOMICALLY-IMPORTANT HORTICULTURAL PLANTS
Maurizio Lambardi, Elif Aylin Ozudogru, S. Mohan Jain (Editors)
“Methods in Molecular Biology”, Springer-Humana Press, 2013, pp. 492
ISBN 978-1-62703-074-8
La micropropagazione delle specie coltivate ed economicamente
rilevanti è tuttora, dopo oltre mezzo secolo di studi, un settore della
ricerca applicata nel quale si alternano casi di grande successo a
situazioni quantomeno problematiche, inerenti una o più fasi della
propagazione in vitro. Ben venga quindi un'opera, curata da tre noti
esperti del settore e coadiuvati da ben 92 prestigiosi ricercatori di tutto
il mondo, che metta in evidenza quanto la micropropagazione,
considerata da molti una "operazione di routine", si sia evoluta in
termini di standardizzazione e quante siano le possibilità di ulteriore svi-
luppo della tecnica. In questo volume, non solo vengono descritti i più avanzati protocolli per la
micropropagazione di numerose specie di interesse agrario, ma questi vengono abilmente
inquadrati nelle problematiche insite dello stato dell'arte di ciascuna di esse e arricchiti da
opportune considerazioni di tipo tecnico-scientifico. Ciò consente al lettore (anche inesperto) di
focalizzare facilmente gli aspetti più critici delle diverse fasi operative della coltura di tessuti, dalla
raccolta e preparazione degli espianti e dei mezzi di coltura, fino al trapianto e acclimatazione
delle plantule. Suddiviso in quattro parti, di cui tre dedicate a raggruppamenti specifici (la prima
alle specie da frutto, tra cui pero, olivo, agrumi; la seconda a piante ornamentali e floricole, quali
acacia, idrangea e iris; la terza a importanti ortaggi tra cui cipolla, cavolfiore e aglio), nel volume
vengono anche esaminate importanti applicazioni della propagazione in vitro: si va dal
ringiovanimento di specie legnose, alla termo- e chemioterapia associata alla coltura di meristemi,
all’induzione del colore di fiori mediante la variazione somaclonale, alla crioterapia. Il disegno del
tomo risponde a elevati standard editoriali, con una piacevole impaginazione che consente una
chiara lettura anche di didascalie e note; grafici, figure a colori e tabelle incrementano la
gradevolezza visiva del volume.
Edgardo Giordani
REVIEW PAPER
Micropropagazione delle geofite ornamentali
di Pablo Marinangeli
Italus Hortus 19(1), 2012, pp. 65-76.
La micropropagazione è un importante strumento che può
permettere di superare le problematiche connesse con i metodi
tradizionali di propagazione delle specie geofite (Lilium, Tulipa,
Gladiolus, Alstroemia), caratterizzati da bassa efficienza
riproduttiva ed elevato rischio di trasmissione di patologie. In
questa eccellente review, Pablo Marinangeli descrive i metodi di
propagazione in vitro, anche basati sull’impiego di bioreattori e che
traggono origine da organi sotterranei (bulbetti), propagoli naturali
rustici che possono essere successivamente trasferiti in coltivazione
a terra senza necessità di acclimatazione.
Maurizio Lambardi
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 17

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
REVIEW PAPER
Factors affecting somatic embryogenesis in conifers
di Jaime A. Teixeira da Silva e Ravindra B. Malabadi.
Journal of Forestry Research, 23(4), 2012, pp. 503−515.
Questa interessante review tratta della possibilità di incrementare
l’efficacia dei sistemi di induzione dell’embriogenesi somatica in
conifere grazie all’azione di specifiche sostanze. Sono state infatti
individuate alcune molecole-segnale, la cui attività è stata
dimostrata anche in conifere; tra queste, è inizialmente descritta
l’azione di chitinasi e arabinogalattanoproteine (AGP); oligosaccaridi
endogeni, rilasciati dalle AGP in seguito ad idrolisi operata delle
chitinasi, agiscono come molecole-segnale che stimolano la
formazione di masse pro-embriogeniche. Viene passata in rassegna
anche l’attività induttiva dei diversi fitoregolatori, ma in particolare
si evidenzia l’associazione tra fattori di stress e alti livelli di fitorego
latori esogeni con la possibilità di indurre embriogenesi somatica in vitro. Si rimarca come non
tutte le cellule di un espianto sottoposte alle stesse condizioni siano capaci di sviluppare
embriogenesi, così come differenti espianti, genotipi, o specie, possano richiedere condizioni
diverse per ottenere questo fenomeno. In tutti i casi, comunque, risulta fondamentale il ruolo di
alcune molecole-segnale. Gli ioni calcio (Ca2+), ad esempio, funzionano nelle piante da
regolatori di diversi processi cellulari e fisiologici ed intervengono anche in quelli legati
all’embriogenesi somatica. Tra le varie azioni di queste molecole, è stato osservato come alte
concentrazioni di ioni calcio riescano a contrastare gli effetti inibitori del 2,4-D nella fase di
sviluppo degli embrioni somatici o, ancora, che bloccando l’apporto esogeno di ioni calcio
attraverso chelazione, si ha una drastica riduzione nella frequenza di formazione e sviluppo
degli embrioni somatici. Alcuni antiossidanti, che riducono l’incidenza dei fenomeni di
imbrunimento degli espianti, hanno evidenziato azioni contrastanti: combinazioni diverse di
alcuni prodotti, quali cisteina, ditiotreitolo, acidi ascorbico e citrico, in Pinus patula, hanno
ridotto la produzione di embrioni somatici rispetto al controllo trattato con acqua distillata;
viceversa, il solo ditiotreitolo allo 0.1% ha prodotto un aumento delle colture embriogeniche.
Anche l’aggiunta di cocktail di aminoacidi può favorire la produzione di embrioni somatici, come
osservato in P. patula e P. radiata, mentre effetti contrastanti sono stati osservati in P. strobus;
in Picea glauca, la maturazione degli embrioni somatici è stata ottenuta in presenza di
idrolizzato di caseina.
Altra sostanza sotto osservazione è l’acido salicilico che, come l’acido acetil-salicilico, ha
fatto osservare un aumento dell’embriogenesi somatica in Pinus roxburghii. Questa è
considerata una molecola molto mobile, che agisce come molecola-segnale capace di
amplificare la trasmissione di informazioni intercellulari, favorendo la programmazione cellulare
in direzione embriogenetica. Altra ipotesi interessante è che l’acido salicilico promuova lo
sviluppo embriogenico attraverso l’inibizione della sintesi di etilene e, ancora, che intervenga
nell’attività di superossidodismutasi, ascorbato perossidasi e catalasi.
Tra le altre sostanze, il triacontanolo è un alcool naturale a lunga catena di atomi di
carbonio, caratteristico componente delle cere epicuticolari delle piante, che ha dimostrato la
capacità di indurre embriogenesi somatica in alcuni pini. Il butenolide, prodotto dalla
combustione di materiale vegetale, ha ugualmente dimostrato la capacità di incrementare sia la
frequenza di induzione che quella di sviluppo di embrioni somatici. Brassinosteroidi (brassinolide
e suoi analoghi) hanno evidenziato effetti positivi nell’induzione e sviluppo di embrioni somatici
in P. wallichiana, P. taeda, Pseudotsuga menziesii e Picea abies.
La review evidenzia, infine, come molto sia ancora da indagare sulla conoscenza dei pattern
di espressione genica coinvolti nei fenomeni legati all’embriogenesi somatica; basti dire che solo
per un gene è stato finora riconosciuto un ruolo determinante nell’acquisizione della
competenza embriogenica nelle cellule vegetali.
Maurizio Capuana
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 18

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
REVIEW PAPER
Recent advances in the cryopreservation of shoot-derived
germplasm of economically important fruit trees of
Actinidia, Dyospiros, Malus, Olea, Prunus, Pyrus and Vitis
di Carla Benelli, Anna De Carlo e Florent Engelmann.
Biotechnology Advances, 31, 2013, pp. 175-185.
Il lavoro di review presentato dagli Autori passa in rassegna oltre un
decennio di ricerca nel campo della crioconservazione delle piante
arboree da frutto. In particolare sono trattate numerose specie
appartenenti a sette generi: Actinidia, Diospyros, Malus, Olea, Prunus,
Pyrus, Vitis, specie di grande importanza economica nei Paesi della
fascia temperata. Si tratta di un campo di studio che appartiene alle
moderne biotecnologie, di estrema importanza per la conservazione
della biodiversità vegetale, e anche fondamentale per il contenimento dei costi nel moderno
vivaismo. Dagli oltre 120 lavori esaminati emergono le tendenze metodologiche prevalentemente
adottate. I protocolli hanno utilizzato gemme dormienti prelevate in vivo e apici provenienti da
colture in vitro. Per ogni specie sono presentate le acquisizioni consolidate in protocolli e le
problematiche ancora esistenti. La ricerca scientifica e tecnologica nel campo specifico quindi non
si ferma ai risultati sinora raggiunti, peraltro inimmaginabili solo pochi lustri fa; al contrario, essa
continua per meglio comprendere i meccanismi coinvolti nella induzione della tolleranza alla
disidratazione e alla crioconservazione degli espianti. Da un punto di vista applicativo, non per
tutte le specie descritte la tecnica è adottata su larga scala, ma il numero di esempi pilota di
crioconservazione è in continua crescita, in un gran numero di paesi e per moltissime specie.
Come detto gli Autori, loro stessi da molti anni coinvolti nella ricerca sulla crioconservazione,
hanno passato in rassegna un gran numero di lavori sperimentali, che comunque rappresentano
solo una selezione rappresentativa della gran mole di lavoro di ricerca svolto su questa tecnica di
conservazione del germoplasma.
Andrea Fabbri
Atti del 2 Convegno Nazionale sulla Micropropagazione
A cura di Barbara Ruffoni, Marco Savona e Sara Barberini
ACTA ITALUS HORTUS, Numero 6, 2012, pp. 302.
Ad un anno esatto dal 2 Convegno Nazionale, tenutosi a Sanremo nel
novembre 2011, Barbara Ruffoni e i suoi collaboratori hanno prodotto
gli Atti di quell’importante evento. Ben 60 articoli, con abstract in
inglese, e 34 riassunti compongono questo curatissimo volume, ricco
di grafici, tabelle e illustrazioni. Tutti i lavori sono stati attentamente
revisionati da un Comitato Editoriale composto dai più importanti
esperti italiani del settore. Una “miniera” di informazioni sull’odierna
attività di ricerca dei laboratori nazionali di ricerca e di produzione. Il
volume può essere acquistato presso la segreteria SOI.
Micropropagazione in coltura liquida con sistema ad immersione
temporanea, di Maurizio Lambardi
FRUTTICOLTURA, Numero 12, 2012, pp. 32-38.
In questo articolo divulgativo, l’Autore descrive i tre sistemi di
micropropagazione mediante coltura liquida in immersione temporanea
(fiasche gemelle, RITA, Plantform) che, più di altri, si sono rivelati
promettenti anche per applicazioni in laboratori commerciali. Vengono
criticamente analizzati vantaggi e svantaggi di ciascun sistema ed
evidenziati tempi e frequenze di immersione che si sono rivelati più
appropriati nella sperimentazione fin qui condotta.
Aylin Ozudogru
Newsletter n. 7 – Maggio 2013 - 19

Gruppo di Lavoro
Micropropagazione e
tecnologie in vitro
Gruppo di Lavoro SOI “Micropropagazione e tecnologie in vitro”
Responsabile: Maurizio Lambardi, CNR-IVALSA,
Comitato di Redazione della Newsletter
Carla Benelli, CNR-IVALSA,
Maurizio Capuana, CNR-IGV,
Anna De Carlo, CNR-IVALSA,
Corrispondenti
Specie da frutto: Maurizio Micheli,
Claudia Piagnani,
Specie ornamentali: Margherita Beruto,
(fiore, interno, esterno) E. Aylin Ozudogru,
Arboree da legno e forestali: Maurizio Capuana,
Anna De Carlo,
Specie orticole e medicinali: Giorgio De Paoli,
Alberto Previati,
Agrumi e vite: M. Antonietta Germanà,
Ivana Gribaudo,
Fruttiferi minori: Edgardo Giordani,
Tecnologie in vitro: Carla Benelli,
Emilia Caboni,
Innovazione nei laboratori: Giuliano Dradi,
Barbara Ruffoni,
L’email della Newsletter è micropropagazionesoi@ivalsa.cnr.it
Le note tecnico-scientifiche della Newsletter
appaiono anche su www.fertirrigazione.it