Il controllo fitosanitario dell'olivo da mensa e da olio in Sicilia

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Monitoraggio dei voli e delle infestazioni Il controllo fitosanitario dell’olivo da mensa e da olio in Sicilia Molto importante è conoscere la dinamica della popolazione dell’insetto ed il grado di infestazione, per intervenire soltanto quando viene superata la soglia economica d’intervento. La popolazione dei maschi adulti può essere rilevata mediante l’uso di trappole chemiotropiche a feromone sessuale [(Z)-7-tetradecenale] a pagoda o trappola delta (due trappole per appezzamento omogeneo). Il monitoraggio con le trappole, permette di definire l’andamento dei voli della Tignola e di prevedere i periodi di ovideposizione (aiutano a stabilire quando effettuare i campionamenti delle drupe); tuttavia attraverso il rilievo settimanale è possibile individuare il picco di volo, utile assieme al monitoraggio dell’infestazione delle drupe per stabilire eventuali interventi fitoiatrici (fig. 58). È consigliabile effettuare il monitoraggio degli adulti della generazione antofaga (aprile/maggio), da cui prenderà origine quella carpofaga (che attacca l’olivina), collocando le trappole nell’oliveto nella seconda decade del mese di aprile ed effettuando i controlli settimanali fino ad individuare i picchi di sfarfallamento. Fino ad oggi non è stata dimostrata una correlazione diretta tra il numero di maschi catturati e l’intensità dell’infestazione. Per questo motivo è necessario anche verificare il grado d’infestazione delle drupe attraverso un campionamento di 100 frutti/pianta prelevati a caso da 10-20 piante rappresentative dell’appezzamento; il campione così preso dovrà essere esaminato con un binoculare stereomicroscopico o con una buona lente d’ingrandimento per rilevare la percentuale d’infestazione attiva (uova e larve in fase di penetrazione). Si effettuerà il trattamento quando il 70-80% delle drupe avrà raggiunto un diametro polare superiore a 7 mm, subito dopo il picco massimo di sfarfallamento (5-8 gg. dopo), quando si verificheranno elevati livelli di catture medie (> a 100 catture per trappole e per settimana) e si riscontrerà nelle olivine osservate allo stereomicroscopio, presenza di uova e di larvettine, superiore alla soglia d’intervento. Fig. 56 Possibili vie di penetrazione delle larvettine nelle giovani drupe Fig. 57 Larvettina nella fase di penetrazione nella drupa (gen. antofaga) pagina 69
Fig. 58 Catture di adulti maschi di Tignola per rilevare la dinamica della popolazione pagina 70 Fattori limitanti Temperatura Per gli adulti la temperatura minima per essere attivi è di 12-13° C, mentre quella ottimale va dai 25 a 30°C. Per le uova la temperatura ottimale di sviluppo è intorno ai 18°C, mentre quelli superiori ai 27 -30°C lo rallentano, causando molte volte un’alta mortalità nella generazione carpofaga. Le larve neonate sono uccise da temperature elevate, mentre le larve mature protette dal nocciolo non subiscono nessun danno. La mortalità invernale delle larve è elevata con inverni rigidi (temperatura minima uguale o inferiore allo zero per diversi giorni). Umidità Anche l’umidità relativa dell’aria rappresenta un fattore limitante sia per le uova che per le larve. Nelle uova la schiusura rallenta quando l’umidità è inferiore al 60% o superiore al 70% abbinata ad alte temperature. Per le larve mature e le crisalidi il 50% di umidità relativa dell’aria rappresenta il limite inferiore di sviluppo. Per gli adulti un’umidità relativa del 50% rappresenta il valore ottimale. stadio di di sviluppo Temperatura media ottimale Adulto 25-30°C Uovo e larva 18-22°C Nemici naturali Numerosi sono gli insetti predatori e parassitoidi della Tignola. Alcuni si sviluppano a spese delle uova (larve di Crisope ed Antocoridi), altri attaccano lo stadio larvale come gli Imenotteri Calcidoidei Ageniaspis fuscicollis var. praysincola ed Elasmus steffani e il Braconide Chelonus eleaphilus. Fra i nemici naturali del Prays oleae riscontrati negli oliveti siciliani monitorati con le trappole cromotropiche gialle nel corso degli anni sono stati: il Neurottero Crisopide Chrysoperla carnea, l’endoparassita Encirtide Ageniaspis fuscicollis e diversi Imenotteri fra cui i Braconidi Apanteles xanthostigma e Chelonus eleaphilus.
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