Brochure CYPMED - Arsia

More documents

Recommendations

Info

Scelta del materiale Le gemme apicali di rami laterali sono prelevate dalla parte inferiore della chioma di cloni resistenti al cancro, che hanno di conseguenza un’età compresa tra 9 e 12 anni. Il materiale scelto deve essere comunque in uno stadio fisiologico di piena crescita ed essere costituito da tessuti giovani (età inferiore ad un anno). Se si tratta di un cipresso in situ, occorre cercare di ringiovanire i tessuti sia per innesto (annotare le percentuali di attecchimento dell’innesto) che per talea radicata controllandone il tasso di rizogenesi spontanea (ovvero quella ottenuta senza trattamenti auxinici). Da prove effettuate dall’INRA ad Antibes, sembra che i valori elevati per questi due caratteri indichino una certa predisposizione del clone alla rizogenesi in vitro. Se si tratta, invece, di un clone allevato in vaso, è opportuno potare drasticamente la pianta a partire dalla base in modo da ottenere la formazione di vegetazione “primaria”, ossia rametti con foglie lanceolate ed appuntite come le foglie primarie. Messa in coltura del materiale Gli espianti, dopo essere stati lavati in acqua per 60 minuti, vengono sterilizzati con un trattamento a base di 70% di etanolo per 2 minuti, risciacquati in acqua sterile e poi immersi in una soluzione di ipoclorito di sodio all’1,5% per 20 minuti. Infine il materiale viene risciacquato 4 volte in acqua sterile deionizzata. La messa in coltura dell’espianto avviene su un mezzo minerale specifico (micro e macroelementi, carbonio in forma organica, vitamine) in cui l’equilibrio tra i regolatori di crescita (citochinine ed auxine) è calibrato in funzione dello stadio di sviluppo dell’espianto e dell’evento morfogenetico che si intende provocare. Le tappe della micropropagazione possono essere in breve così indicate: a) scelta e prelievo del materiale e sua sterilizzazione; b) messa in coltura. L’introduzione in vitro (in tubi o vasi di coltura di dimensioni appropriate) può essere fatta utilizzando una semplice soluzione agarizzata, con lo scopo di avere una conferma della sterilità del materiale. In seguito, questo viene trasferito su mezzo minerale in grado di favorire: - la crescita del tessuto aereo - la proliferazione delle gemme - la rizogenesi c) acclimatazione, che prevede il passaggio dal vitro (costituito da un ambiente sterile, controllato e con umidità ambientale vicina alla saturazione) all’esterno; d) piantagione e controllo: può essere utile, infatti, testare l’adattabilità ad ambienti diversi delle piante propagate ed eseguire prove comparative tra piante di uno stesso clone derivate da micropropagazione e quelle ottenute attraverso radicazione di talea o innesto. Germoglio di Cupressus sempervirens radicato in vitro. Risultati Il risultato più evidente scaturito da nostre prove e confermato dalla bibliografia, è l’evidente differenza nel comportamento di espianti da tessuti di giovani semenzali rispetto a quello da cipressi adulti. La capacità di organogenesi e di rigenerazione della pianta, in genere, diminuisce passando dalla fase giovanile vegetativa a quella adulta riproduttiva. Il tasso di proliferazione è risultato alto per il materiale giovane di cipresso, mentre solo pochissimi espianti da piante adulte hanno rigenerato. Inoltre gli espianti da piante giovani si allungano rapidamente, mentre quelli da piante adulte necessitano di numerose subcolture per raggiungere un adeguato sviluppo che consenta successive proliferazioni o il passaggio alla radicazione. L’uso di carbone attivo è risultato efficace nelle fasi di allungamento perché viene ridotto l’effetto negativo della BA (N6-benzyladenine) sullo sviluppo del germoglio e sulla successiva radicazione. 26
Sviluppo differenziato delle piantine in relazione al clone sottoposto a micropropagazione. a b c Conclusioni Altro risultato interessante è che la coltura in vitro sembra avere un effetto di rinvigorimento sul materiale adulto, promuovendo la comparsa di caratteri morfologicamente giovanili. Come per altre conifere, anche per il cipresso la radicazione di espianti da piante adulte è da considerare il punto critico della micropropagazione, fatto che limita l’uso di tale tecnica nel miglioramento genetico del cipresso. Occorre tuttavia ricordare che l’attitudine alla rizogenesi, come nel caso della propagazione per talea, è legata al genotipo e, soprattutto, fortemente correlata con l’età della pianta dalla quale si preleva il materiale da sottoporre alla micropropagazione. Sviluppo delle piante coetanee del clone F 318: a - innesto; b - talea radicata; c - pianta micropropagata. Le osservazioni sperimentali sulla propagazione in vitro, soprattutto a partire da cipressi adulti, indicano difficoltà reali per la formazione di radici. E’ presumibile che questo ostacolo possa essere superato con un approfondimento delle ricerche, dal momento che la radicazione di germogli proliferati da espianti adulti è stata già ottenuta, seppure in percentuali molto basse. E’ quindi necessario migliorare tale tecnica, perché la moltiplicazione in vitro da piante adulte selezionate aprirebbe anche la strada all’impiego dell’ingegneria genetica nel miglioramento genetico del cipresso per caratteri di particolare interesse. Altra difficoltà, non di poco conto, è che l’applicazione della micropropagazione richiede strutture appropriate e manodopera specializzata; di conseguenza, se le aziende vivaistiche intendessero indirizzarsi a laboratori di colture in vitro, il costo di produzione di piante a partire da cipressi adulti risulterebbe, al momento, piuttosto elevato. Per questo la micropropagazione del cipresso sembra avere un’immediata applicabilità solo se rivolta verso la moltiplicazione di esemplari di alto valore storico ed ornamentale e di quelli selezionati per caratteri validi; in generale, quindi, per la salvaguardia e conservazione di un germoplasma a forte rischio di estinzione e per la costituzione di una banca di geni, realizzabile anche su scala mondiale. Bibliografia Capuana M., Giannini R. 1997. Micropropagation of young and adult plants of cypress (Cupressus sempervirens L.) S. Hort. Sci., 72(3): 453-460. 27
Page 2 and 3: In copertina Plantule di cipresso (
Page 4 and 5: PRESENTAZIONE Il cipresso comune (C
Page 6 and 7: Il polline di C. sempervirens ha un
Page 8 and 9: A giugno, periodo nel quale avviene
Page 10 and 11: circa da 3000 a 4500 semi per m 2 p
Page 12 and 13: BASI FISIOLOGICHE DELLA PROPAGAZION
Page 14 and 15: Dal punto di vista anatomico, per c
Page 16 and 17: PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO PE
Page 18 and 19: un incastro a forma di “V” aper
Page 20 and 21: Piante di cipresso in vaso 18 a due
Page 22 and 23: approccio per evitare, usando mater
Page 24 and 25: tra quelli precedentemente indicati
Page 28 and 29: Introduzione LE MALATTIE DEL CIPRES
Page 30 and 31: immediatamente e si disperdono nell
Page 32 and 33: Il damping off, la cui sintomatolog
Page 34 and 35: piccole, poste in appezzamenti unif
Page 36 and 37: Fig. 15 - Feltro miceliale bianco a
Page 38 and 39: PANCONESI A., RADDI P., ANDREOLI C.
Page 40 and 41: - il minuscolo acaro eriofide Trise
Page 42 and 43: Figg. 5-6-7 - Esiti dell’infestaz
Page 44 and 45: devitalizzazione con formazione di
Page 46 and 47: ALTRI FITOFAGI DI IMPORTANZA SECOND
Page 48 and 49: sicurezza per l’operatore. A form

Brochure CYPMED - Arsia

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?