Brochure CYPMED - Arsia

In copertina
Plantule di cipresso (Cupressus sempervirens L.)
(Progetto ed elaborazione grafica di Marcello Intini/IPP)

SOMMARIO
PRESENTAZIONE 3
Paolo Raddi - Chef de File del CypMed
PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO DA MOLTIPLICAZIONE GAMICA 5
Paolo Raddi
Marcello Intini
Giovanni Torraca
Anna Romagnoli
Valerio Nembi
BASI FISIOLOGICHE DELLA PROPAGAZIONE VEGETATIVA 12
Maurizio Capuana
PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO PER INNESTO 16
Moreno Moraldi
Roberto Danti
Vincenzo Di Lonardo
PROPAGAZIONE DEL CIPRESSO PER TALEA 21
Giovanni Pacini
Santo Gozzo
Luciano Paggetti
Gianni Della Rocca
PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO ATTRAVERSO LA MICROPROPAGAZIONE 25
Claudine Andrèoli
Maurizio Capuana
LE MALATTIE DEL CIPRESSO IN VIVAIO 28
Alberto Panconesi
Roberto Danti
DANNOSITÀ DI INSETTI ED ACARI ALLA PRODUZIONE VIVAISTICA DEL CIPRESSO COMUNE 39
Carlo Parrini

PRESENTAZIONE
Il cipresso comune (Cupressus sempervirens) è una componente vitale nella storia dei paesi mediterranei e
costituisce un elemento insostituibile del loro paesaggio e della loro arte.
E’ bene ricordare che il cipresso costituisce anche una fonte di reddito non indifferente e presenta molteplici
funzioni: foreste naturali, piantagioni forestali, fasce frangivento, impianti protettivi per il recupero
ambientale e impianti ornamentali. Il cipresso ha una forte adattabilità alle condizioni edafiche e climatiche
mediterranee, vegeta bene su quasi tutti i tipi di terreno, tollera molto bene i lunghi periodi di siccità e
sopporta anche le basse temperature, ma non gli abbassamenti termici repentini durante il periodo vegetativo.
La Comunità Europea ha finanziato numerosi progetti a partire dal 1980: progetti Agrimed I, Agrimed II e
Camar orientati principalmente verso studi sul cancro del cipresso in modo da poter selezionare cloni
resistenti alla malattia, progetto Air per affrontare i principali problemi della coltivazione del cipresso,
un’Azione Concertata Fair per divulgare in modo capillare i risultati fino allora ottenuti.
L’Interreg IIIB MedOcc ha approvato il nostro progetto dal titolo “I cipressi nella loro polivalenza nel
recupero dell’ambiente e del paesaggio mediterraneo” (CypMed).
CypMed ha come obiettivi principali:
- dimostrare la superiorità dei cloni di cipresso selezionati nei precedenti progetti EU rispetto al materiale
commerciale;
- aggiornare con corsi e pubblicazioni i tecnici e gli utilizzatori del cipresso per gestire con successo le
varie fasi della coltivazione e della salvaguardia sanitaria del cipresso.
Nell’ambito del progetto Cypmed l’allestimento di parcelle sperimentali con oltre 50 cloni resistenti al
cancro in diverse regioni mediterranee potrà fornire indicazioni per ogni regione per la scelta di cloni
particolarmente adatti alle condizioni pedoclimatiche della zona e consentirà anche di stimare l’apporto ed il
ruolo del cipresso nell’economia rurale della regione stessa.
L’attività vivaistica relativa al cipresso è consistente nei paesi MedOcc. Le statistiche ufficiali indicano che
ogni anno sono venduti in Europa Occidentale circa 5 milioni di cipressi ottenuti per via vegetativa,
soprattutto per innesto. Tale attività commerciale costituisce una certa e consistente fonte di reddito.
CypMed ha inteso presentare un manuale per illustrare le tecniche operative principali per avere una
produzione di piante di cipresso per via gamica ed agamica, che possa soddisfare in modo quantitativo e
qualitativo le esigenze delle utenze sia pubbliche che private.
La produzione di piante di cipresso da talea radicata permette di effettuare studi sull’adattabilità di cloni già
selezionati per la resistenza al cancro a terreni difficili come, ad esempio, le crete senesi. Il vivaio “Il
Campino” dell’Amministrazione Provinciale di Siena, che ospita questo Meeting Cypmed, è specializzato
nella produzione di cipressi da talea radicata. Questo fatto permette al progetto Cypmed di costituire
parcelle sperimentali con materiale clonale da talea su argille plioceniche nel Senese e quindi di poter
selezionare una varietà multiclonale costituita da numerosi cloni resistenti al cancro e tolleranti alle argille,
in modo da recuperare molte terre brulle del Senese.
A nome dei partner del CypMed (vedere cartina allegata) ringrazio cordialmente gli autori delle relazioni e
gli Enti pubblici e privati che hanno dato la loro collaborazione per la stesura del Manuale.
Paolo Raddi
Chef de File del CypMed
PS – per ulteriori informazioni sul progetto CypMed, sulle brochure già pubblicate “Il bosco degli Zappini”,
“I cipressi di Bolgheri” e “O cipreste em Portugal” consultare www.cypmed.cupressus.org
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PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO DA MOLTIPLICAZIONE GAMICA
P. Raddi, M. Intini, G. Torraca, A. Romagnoli, V. Nembi
Istituto per la Protezione delle Piante, CNR, Firenze
Il cipresso comune (Cupressus sempervirens L.) è una specie monoica con microsporofilli (fiori “maschili”)
e macrosporofilli (fiori “femminili”) separati sulla stessa pianta. L’iniziazione delle gemme fiorali ha luogo
tra la tarda primavera e l’inizio dell’estate. I fiori maschili si differenziano in primavera mentre quelli
femminili in autunno sempre dell’anno avanti la fioritura.
I microsporofilli sono portati su amenti oblunghi, che appaiono in cima a dei brachiblasti, in numero molto
abbondante, già visibili in inverno ed in genere distribuiti nella parte più bassa della chioma. I
macrosporofilli sono di forma subglobosa, composti da 6 a 12 squame, ognuna delle quali porta da 6 a 20
ovuli. Le infiorescenze femminili sono in genere localizzate nella parte più alta della chioma. La fase
giovanile del cipresso comune è piuttosto breve: un cipresso derivato da seme produce per la prima volta
polline a 4-5 anni, mentre i coni femminili compaiono 1-2 anni prima di quelli maschili. E’ noto che l’inizio
e la durata della “fioritura” variano notevolmente e dipendono soprattutto dall’individuo e dalle condizioni
ambientali della località. La fioritura avviene generalmente tra la fine di gennaio e quella di febbraio, con
una variazione anche di oltre un mese tra gli individui e le località. La dispersione del polline da fine gennaio
a metà marzo (a seconda delle condizioni ambientali) richiede sempre una bassa umidità relativa dell’aria
(UR). Se l’UR è alta le squame si chiudono ed il polline non può fuoriuscire.
Fiori femminili (A-C) e fiori maschili (B-D) da disegno e visti al microscopio elettronico a scansione.
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Il polline di C. sempervirens ha un colore simile a quello di C. dupreziana, ovvero salmone chiaro, e si
differenzia dal colore del polline dei cipressi del gruppo del C. arizonica (giallo) o di altre specie asiatiche
con polline color biancastro (C. funebris, C. duclouxiana , C. torulosa e C. cashmeriana). Le dimensioni del
polline del cipresso comune, come diametro massimo, sono di 22,8 µm, inferiori a quelle del C. dupreziana
(media 27,7 µm).
Giovani coni maschili
durante l’emissione del
polline.
ANTESI
DISPERSIONE
FIORITURA
APERTURA FIORI
ESTENSIONE ANTERE
APERTURA ANTERE
RILASCIO DEL POLLINE
impollinazione
umidità relativa
temperatura
luce
DEIESCENZA Evaporazione
perdita germinabilità
L’impollinazione del cipresso è anemofila. In gennaiofebbraio
sugli ovuli eretti ed esposti appare la goccia
pollinica, che indica la recettività del megagametofito. Il
granello pollinico germina rapidamente quando è
arrivato sull’apertura micropilare dopo essere stato
catturato dalla goccia pollinica che, disidratandosi,
permette l’ingresso del granulo nel micropilo stesso.
Colore del polline di C. sempervirens (a sinistra)
e di C. arizonica (a destra).
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perdita per intercettazione
Ovuli visti al microscopio
elettronico a scansione.

Macrosporofillo al momento della recettività: le aperture micropilari degli ovuli mostrano la goccia pollinica che serve a catturare il
polline.
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A giugno, periodo nel quale avviene la fertilizzazione, le infiorescenze femminili fecondate sono già ben
visibili (circa 1 cm) e sono di colore verde. A novembre il loro colore diventa giallo chiaro. Il seme
raggiunge la maturazione nel secondo anno (autunno, ovvero dopo 18-20 mesi). A maturità i coni assumono
una colorazione grigio-argentea e le squame tendono ad aprirsi e a rilasciare il seme. Ciascuna delle 9-12
squame contiene circa 8-15 semi di diversa grandezza (media: 5-6 mm di lunghezza e 3-4 mm di larghezza),
di colore rossastro-bruno e mucronati. Il peso di 1000 semi nel cipresso comune varia da 6 a 8 grammi.
È chiaro che la dispersione del polline, l’impollinazione e lo sviluppo embrionale sono fasi fortemente
influenzate da fattori biotici ed abiotici di disturbo, fattori che possono incidere sulle percentuali di semi
“completi” e sulla germinazione di questi.
Raccolta dei coni e semi
Generalmente il cipresso produce coni in abbondanza tutti gli anni. A Novembre-Gennaio (in località con
estati aride e calde, i coni si aprono anche prima di ottobre, ad es. Fontegreca, isole greche ecc.) vengono
raccolti coni “maturi” (età circa 20 mesi dall’impollinazione), evitando di raccogliere quelli più vecchi
(serotini) e quelli attaccati da insetti (Pseudococcyx tessulatana, Trisetacus juniperinus), anche se quelli
danneggiati nella maggior parte cadono al suolo prima della raccolta.
I coni raccolti a mano devono essere messi in sacchi di juta e conservati in ambienti ben ventilati. Evitare
sacchetti in plastica (se non per brevi periodi) e contenitori ermetici.
L’essiccazione dei coni avviene al sole o meglio in essiccatori a 35°-40°C. Quando i coni sono aperti, si
opera la raccolta dei semi e la loro setacciatura per eliminare quelli più piccoli, spesso vuoti.
Nel cipresso non è possibile separare meccanicamente i semi pieni da quelli vani, come nel pino, i cui semi
vani galleggiano immediatamente in acqua.
La ridotta germinazione dei semi delle specie del genere Cupressus sembra dovuta soprattutto alla ridotta
percentuale di semi pieni (FS = filled seeds) mentre molti semi, pur presentando una forma normale dovuta
alla presenza di un tessuto spugnoso del gametofito, sono senza embrione. L’assenza di un’adeguata
impollinazione o la degenerazione post-zigotica furono avanzate come spiegazione della scarsa presenza di
FS (Owens, 1990; Ceccherini et al., 1998). Da prove ai raggi X, diversi semi risultano attaccati da insetti
(calcide Megastigmus wachtli, cimici del genere Orsillus) (Roques e Battisti, 1999).
Molti parametri sono stati messi a punto per
valutare la “bontà del seme”. Tra questi i più
usati sono:
- la frequenza di semi pieni (FS) misurata su
200 semi di aspetto e forma normali, tagliati
per vedere se l’endosperma è bianco e ben
sviluppato (FS varia da 15 a 25% dei semi
totali);
- la capacità germinativa dei semi pieni
(GFC), che varia da 75 a 90%;
- la capacità geminativa sul totale dei semi
(GCT), che oscilla da 12 a 18%.
I trattamenti di pregerminazione del seme non
sono richiesti per il cipresso comune, anche se i
semi sono in pratica tenuti per 2-3 giorni in
acqua. Con semine
in serra su letto
riscaldato e con
irrorazione “mist”
tale pretrattamento
Cono immaturo (a sinistra) e cono con semi maturi (a destra). Cono dopo l’essiccazione e semi.
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in acqua non è risultato necessario. La stratificazione al freddo umido per 21 giorni a 2-3°C non è richiesta
per il cipresso comune, come invece lo è per il C. macnabiana e C. dupreziana (Ceccherini et al., 1998).
Tuttavia la stratificazione dei semi a 1-2°C e 100% di UR per 30 giorni incrementa la percentuale di
germinazione rispetto a quella dei semi non stratificati e garantisce una più rapida e migliore germinazione.
Semina
La semina di norma in vivaio all’aperto viene effettuata da marzo a maggio in Italia, ma in serra può essere
anticipata. Nei letti di semina si consiglia una densità di 300-600 semenzali per metro quadrato. Tenendo
conto della percentuale di semi pieni (FS circa 18%) e della GFC (da 75 a 90% dei semi pieni) occorrono
Semenzali di 3 mesi.
Cipressi al secondo anno.
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circa da 3000 a 4500 semi per m 2 per ottenere almeno 300-600 semenzali. Dopo la semina i semi vanno
coperti con uno strato di sabbia e torba (spessore dello strato 1,5 volte la lunghezza del seme) e riparati con
rete ombreggiante quale protezione contro l’essiccamento del suolo, il dilavamento da pioggia, i danni da
uccelli e da erbe infestanti. Dopo la germinazione la rete viene sollevata sui semenzali e lasciata fino al
termine dell’estate.
Un parametro importante per valutare la bontà della semina e la sua gestione è la sopravvivenza dei
semenzali ad 8-10 mesi dalla germinazione.
In serra le semine vengono effettuate senza pretrattamento in letti con riscaldamento basale ed umidità
relativa regolata con irrigatori a pioggia. La data della semina può essere notevolmente anticipata rispetto
all’esterno, ma in questo caso occorre una maggiore attenzione sanitaria (prevedere eventuali trattamenti).
In alcuni vivai è preferito l’impiego di seme stratificato e pregerminato per la semina diretta in contenitori di
piccole dimensioni (3-4 semi per contenitore).
I semenzali, a seconda dell’uso, vengono rimossi dal letto di semina e trapiantati in contenitori di varie
dimensioni riempiti con substrato costituito da torba, terriccio e pomice (3:1:1 in volume) o in aiuole di
vivaio. Le cure colturali sono quelle tradizionali in vivaio: irrigazioni, scerbature, controlli sanitari.
La produzione diretta di piante in contenitore deve prevedere l’eventuale diradamento di semenzali,
lasciandone solo uno per vasetto. Al termine del primo anno i semenzali sono in media alti 20-30 cm e
possono essere trapiantati in contenitori di maggior volume o in campo a seconda della destinazione.
Per l’impianto dei cipressi in foresta, come frangivento e per piantagioni ornamentali occorre
precedentemente togliere il contenitore o la fitocella in plastica, mentre le piante in fertil pot (vasetto in torba
pressata) possono essere piantate con il vasetto fertil pot ma con l’accortezza di interrare bene il vasetto in
torba per evitare il disseccamento delle radici.
Produzione di cipressi per rimboschimenti
Per la legge italiana il materiale per la costituzione di impianti forestali deve derivare da seme raccolto nei
boschi di cipresso iscritti nel Libro Nazionale Boschi da Seme (LNBS). Le galbule di cipresso vengono
raccolte da personale specializzato degli essiccatori di Stato. Il seme viene estratto, setacciato ed inviato ai
vivai forestali. Questi seminano in aiuole il seme e le piantine vengono trapiantate in contenitori o in campo.
Una certificazione segue la piantina a garanzia della provenienza.
Da alcuni anni sarebbe possibile costituire un arboreto clonale per la produzione di seme con cipressi
selezionati per la resistenza al cancro e per la loro attitudine a produrre semi e da questi semenzali in alta
percentuale resistenti al cancro. Tuttavia questo materiale non può essere finora utilizzabile per impianti
forestali, in quanto la legge autorizza tali impianti solo con semenzali derivati da seme prelevato nei Boschi
da Seme iscritti al LNBS.
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Chiave per l’identificazione dei danni ai
semi basata su immagini a raggi X.
1-2 - Seme con endosperma bianco ben
sviluppato (seme pieno, pronto per la
germinazione).
3-4 - Seme con endosperma sviluppato ma
bruno (seme pieno bruno, incapace di
germinare; motivi dell’imbrunimento
sconosciuti).
5-6 - Seme vuoto, non fecondato.
7-10 - Semi con endosperma raggrinzito,
danneggiati dalle cimici Orsillus spp.:
7-8 - endosperma bianco; 9-10 –
endosperma giallo.
11-12 – Semi attaccati dal calcidide
Megastigmus wachtli: larva matura e foro
di uscita.

Alcuni vantaggi e svantaggi della produzione di piante da seme
Vantaggi
maggior variabilità tra semenzali per i caratteri
di crescita, sopravvivenza e adattabilità;
maggiore tolleranza e resistenza di tipo
“orizzontale” del popolamento ai diversi fattori
biotici ed abiotici;
minori costi per la produzione di piante
rispetto alla moltiplicazione vegetativa;
costituzione di portainnesti franchi con alta
variabilità di adattamento ai diversi terreni.
Bibliografia
Svantaggi
il semenzale derivato da incrocio gamico non
garantisce i pregi dei singoli genitori (crescita,
resistenza, ecc.);
disomogeneità nella forma della chioma tra le
piante singole e dell’impianto;
produzione assolutamente improponibile per
impianti ornamentali;
minore protezione frangivento in barriere con
semenzali rispetto a barriere con varietà multiclonali
appositamente selezionate;
per certi terreni (argille plioceniche) è più
economico utilizzare varietà multiclonali innestate
su portainnesti clonali tolleranti a questi
terreni che impiegare materiale da seme, eterogeneo
nella risposta;
l’eccessiva consanguineità dei semenzali da seme
erroneamente raccolto da poche e vicine piante in
arboreto può causare una riduzione della crescita
e sopravvivenza (“inbreeding depression”) nelle
generazioni successive.
GIANNINI R., CAPUANA M., GIOVANNELLI A., 1999. “Produzione di piante”. In “Il Cipresso. Manuale
Tecnico” Ed. E. Tessier du Cros, 44-53.
CECCHERINI L., RADDI S., ANDREOLI C., 1998. “The effect of seed stratification on germination of 14
Cupressus species”. Seed Sci. Technol., 26:159-168.
JOHNSON L.C., 1974. “Cupressus L. Cypress”. In “Seeds of woody plants in United States.” Agr. Hand.,
450:363-369.
RADDI P., MORICCA S., ANDREOLI C., 2000. “Cypress pollen: botanical aspects in fourteen cypress
species and prospect for research”. Allergie et Immunologie, XXXI, 3:125-127.
ROQUES A., BATTISTI A., 1999. Cypress pests. In “Il Cipresso. Manuale Tecnico” Ed. E. Tessier du Cros,
75-95.
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BASI FISIOLOGICHE DELLA PROPAGAZIONE VEGETATIVA
M. Capuana
Istituto di Genetica Vegetale – Sezione di Firenze
La produzione di massa di alberi selezionati può essere realizzata unicamente per via vegetativa in
quanto solo la propagazione vegetativa (o agamica) realizza l’esatta replicazione del genotipo di partenza,
attuandosi esclusivamente attraverso la divisione di cellule mitotiche, mentre sono escluse la meiosi e la
conseguente ricombinazione del patrimonio genico. Con la propagazione vegetativa si effettua la cosiddetta
‘clonazione’, cioè la costituzione di un CLONE, che è una copia esatta della pianta originaria.
Dal punto di vista fisiologico, la propagazione vegetativa si fonda sulla TOTIPOTENZA delle
cellule vegetative, che è la proprietà di queste cellule di contenere le informazioni genetiche necessarie alla
costituzione in copia di un organismo completo. Nonostante questa premessa, nella pratica si possono
incontrare diversi ostacoli alla realizzazione della propagazione vegetativa, soprattutto tra le specie arboree.
In sintesi, questa totipotenza cellulare può subire, in determinate circostanze, delle interferenze da fattori
esterni o interni alla pianta, che ne limitano l’espressione. Tra questi fattori, il principale è senza dubbio l’età,
con la pratica conseguenza che, per numerose specie, è possibile realizzare la propagazione vegetativa
principalmente o addirittura esclusivamente da esemplari giovani.
Con l’invecchiamento, nella pianta si osservano, oltre ad una riduzione del tasso di crescita, la
diminuzione o la perdita dell’attitudine rizogena ed eventi diversi legati alla topofisi. Nel passaggio dalla
fase giovanile a quella adulta, infatti, la totipotenza dei meristemi giovanili fa posto ad una specializzazione
più o meno marcata, propria dei tessuti adulti. Per spiegare meglio tale meccanismo è utile ricordare che
all’età della pianta sono direttamente connessi i fenomeni di topofisi e ciclofisi.
Per TOPOFISI si intende il fenomeno per cui gemme, germogli e talee mantengono, per un periodo
più o meno lungo dopo l’innesto o il taleaggio, la fase vegetativa e la forma di sviluppo che avevano sulla
pianta da cui sono stati prelevati; per CICLOFISI, il complesso processo di maturazione degli apici
meristematici e quanto ne consegue (Olesen, 1978).
TOPOFISI: questo fenomeno è espresso con intensità diversa a seconda della specie. Ad esempio,
l’accrescimento plagiotropico, cioè il permanere di un
accrescimento orizzontale quando la talea consiste in un
ramo laterale, è facilmente osservabile in alcuni generi
quali Abies, Larix, Cedrus, Pseudotsuga, Sequoia
(Fig.1). È estremamente accentuato nel genere
Araucaria, per cui le talee mantengono una crescita
orizzontale anche per oltre 50 anni, mentre si verifica
più raramente nei generi Pinus, Cupressus e nelle
Fig. 1 – Esempio di topofisi in Cedrus atlantica: pianta innestata
in cui la plagiotropia causa una forte asimmetria della chioma
(foto A.M. Proietti).
latifoglie.
CICLOFISI: la maturazione degli apici
meristematici in senso lato è attribuibile a cause diverse;
per meglio definirla, si distingue una MATURAZIONE
ONTOGENETICA, che consiste nel passaggio attraverso
le differenti fasi dello sviluppo, dalla germinazione alla
senescenza, secondo un determinismo cellulare a livello
meristematico geneticamente programmato e quindi
difficile da interrompere o invertire, ed una
MATURAZIONE FISIOLOGICA, consistente in tutti
quei cambiamenti legati all’invecchiamento, che
provocano, in sintesi, perdita di vigore e che vengono
spiegati con il rallentamento dei processi fisiologici
causato dall’aumento della complessità strutturale della
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pianta, come primo risultato della sua crescita (Fortanier e Jonkers, 1976; Hackett, 1985)
Una spiegazione ai fenomeni legati alla maturazione ontogenetica è stata offerta dalla teoria secondo
cui l’età ontogenetica di un meristema apicale è in effetti correlata al numero di divisioni cellulari che sono
state necessarie per formare quel meristema a partire dall’embrione (Passecker, 1947). La maturazione
fisiologica è invece spiegata dall’osservazione che le potenzialità giovanili dei meristemi apicali, che si
esprimono più evidentemente nel corso di ogni germogliamento, diventano più circoscritte via via che, con lo
sviluppo, l’architettura generale della pianta diventa più complessa (Franclet, 1981; Monteuuis, 1989) (Fig.
2).
Queste teorie portano a concludere che nelle piante arboree, ammettendo che le cellule
meristematiche formate prima siano ontogeneticamente le più giovani, è osservabile una sorta di ‘gradiente
di invecchiamento’ per cui la pianta invecchia più intensivamente andando dalla base all’apice e dall’interno
all’esterno. Ciò spiega perché le caratteristiche giovanili sono più facilmente conservate alla loro base, nella
zona, cioè, del colletto, consentendo l’applicazione di alcune tecniche di propagazione, quali l’isolamento di
polloni, la propagazione da talee radicali, il radicamento di succhioni e, nel caso del cipresso, l’osservazione
che le talee di ramo prelevate dalla parte inferiore della chioma radicano generalmente meglio di quelle della
parte superiore.
È in qualche modo possibile interferire sui fenomeni legati all’invecchiamento (“ageing”),
realizzando il cosiddetto ‘ringiovanimento’, più correttamente definibile ‘rinvigorimento’ della pianta. Tra
gli strumenti adoperabili abbiamo: - l’uso di trattamenti ormonali, realizzabile, ad esempio, tramite
aspersioni con soluzioni di BA, risultate efficaci in Pseudotsuga (Reynoird, 1983) e ibridi di Castanea
(Ballester et al., 1990); - l’eziolamento, cioè la temporanea copertura dei rami destinati alla propagazione,
effettuato in castagno (Ballester et al., 1989) e in quercia (Vieitez et al., 1985); - il taleaggio reiterato
(Platanus acerifolia, Franclet, 1983; Hackett, 1985); - l’innesto a cascata (Franclet et al., 1987); - una
drastica potatura o la capitozzatura (Bolstad e Libby, 1982; St Clair et al., 1985).
Oltre alla totipotenza, l’altro fenomeno legato alla possibilità di
rigenerare la pianta per via vegetativa è la DEDIFFERENZIAZIONE,
che consiste nella capacità delle cellule mature di ritornare alle
condizioni meristematiche, sviluppando un nuovo centro di
accrescimento nella pianta.
Nel cipresso, come nella maggior parte delle specie arboree, la
propagazione per talea avviene grazie all’emissione di radici avventizie,
che sono in effetti radici da ferita, cioè radici che sviluppano come
risposta all’effetto-ferita procurata alla talea quando questa è staccata
dalla pianta-madre: il taglio produce inizialmente un processo di
cicatrizzazione per il quale le cellule superficiali muoiono e la ferita si
ricopre di una placca necrotica costituita da materiale suberoso
(suberina) che protegge l’organo dal disseccamento; al disotto di questa
zona, le cellule vitali iniziano quindi a formare uno strato di callo,
costituito da cellule parenchimatiche, prodotte appunto grazie al
fenomeno della dedifferenziazione; nella successiva fase di
rigenerazione, alcune cellule situate nella zona del cambio vascolare e
del floema iniziano a formare le radici avventizie.
Fig. 2 – Sintesi e schematizzazione delle teorie sulla ciclofisi (Krenke, 1940; Passecker,1947; Franclet, 1981; Monteuuis, 1989), secondo le
quali si individuano diverse zone di maturazione a partire da quella centrale, che conserva i caratteri più giovanili e, all’interno di
ciascuna, dei centri di maggiore reattività, in corrispondenza delle zone di accrescimento annuale.
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Dal punto di vista anatomico, per convenzione, si distinguono quattro fasi:
1) Dedifferenziazione delle cellule mature, 2) Formazione delle iniziali radicali, 3) Sviluppo dei primordi
radicali, 4) Connessione dei primordi con i tessuti vascolari ed emergenza delle radici neoformate (Fig. 3).
È da sottolineare che nei periodi compresi tra il prelievo
della talea, i primi eventi anatomici ed il completamento della
rizogenesi possono intercorrere tempi molto variabili, in
relazione essenzialmente alla specie, ma anche a tutte le
condizioni che influiscono su tale operazione.
Nel determinismo di questi fenomeni, intervengono vari
processi fisiologici, legati, a loro volta, all’azione di sostanze
endogene, gli ormoni, che agiscono a diversi livelli sul
radicamento. È quindi possibile intervenire sugli equilibri
ormonali della talea con applicazioni esogene di sostanze
ormonali, complessivamente indicate come REGOLATORI DI
CRESCITA, e che possono essere sia le stesse molecole naturali,
Fig. 3 – Sezione trasversale di fusto di una giovane
pianta legnosa che mostra l’area di origine delle
radici avventizie (da Hartmann e Kester, 1990).
sia prodotti di sintesi che sono stati creati sul modello delle
sostanze endogene e che hanno dimostrato un’attività rizogena
comparabile o addirittura superiore a queste.
Nel processo della rizogenesi, le sostanze più
marcatamente coinvolte appartengono al gruppo delle AUXINE,
ma va altresì sottolineato che enzimi e cofattori, quali i fenoli, svolgono un ruolo ugualmente determinante e
che di grande importanza appaiono i fenomeni ossidativi legati a questi composti (Haissig, 1974, 1986).
L’acido indol-acetico (IAA) è stata la prima auxina naturale ad essere individuata e ad avere evidenziato
attività rizogena (Kraus et al., 1936), mentre due sostanze simili, ma artificiali, hanno manifestato, in questa
utilizzazione, un’efficacia ancora superiore: l’acido indol-butirrico (IBA) e l’acido naftalenacetico (NAA)
(review di Torrey, 1965, 1976).
Miscele di diversi regolatori di crescita possono avere efficacia superiore a quella delle singole
sostanze, così come i diversi metodi di somministrazione possono agire in modo differente. I regolatori di
crescita sotto forma acida, infatti, sono poco solubili in acqua e quindi vanno sciolti con altre sostanze,
mentre i sali di questi prodotti hanno una buona solubilità in acqua. Concentrazioni e durata del trattamento
presentano un’ampia variabilità e andrebbero testate preventivamente per ogni specie interessata. Oltre al
trattamento rizogeno, comunque, sono numerosi i fattori endogeni ed esogeni che influenzano la possibilità
di radicare una talea, ad iniziare dalla diversa attitudine alla clonazione, carattere che appare fortemente
legato al genotipo e che può presentare un’ampia variabilità individuale (Durzan, 1984; Morgenstern et al.,
1984). Sommariamente, possono essere elencati come segue:
Pianta madre: Genotipo
Stadio ontogenetico (età)
Stato fisiologico (nutrizionale)
Stato sanitario
Epoca del prelievo
Tipo di prelievo (tipo di talea e posizione nella chioma)
Trattamenti: Fitoregolatori
Nutrienti minerali
Anticrittogamici
Interventi meccanici (intaccature, asportazione delle foglie)
Ambiente: Condizioni idriche
Tipo di substrato
Luce
Temperatura
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Un’appropriata scelta nell’ambito di ciascuno di questi fattori può facilitare la realizzazione della
propagazione attraverso radicamento di talee, mentre anche un solo errore nella calibrazione dei fattori
descritti può risultare fortemente inibente.
Bibliografia
Ballester A., Sánchez M.C., Vieitez A.M. (1989) Etiolation as a pretreatment for in vitro establishment and
multiplication of mature chestnut. Physiol. Plant., 77: 395-400.
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15

PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO PER INNESTO
M. Moraldi
Azienda Vivaistica Regionale UMBRAFLOR
R. Danti, V. Di Lonardo
Istituto per la Protezione delle Piante, CNR, Firenze
Come ha già indicato Capuana in questo manuale, la produzione massale di cipressi selezionati può avvenire
solo per via vegetativa, assicurando l’esatta replicazione del genotipo, e garantendo anche l’omogeneità del
fenotipo in un dato ambiente.
Il metodo più impiegato nella produzione commerciale del cipresso comune (Cupressus sempervirens) per
via vegetativa è senza dubbio la moltiplicazione per innesto. Questo metodo risulta finora il più redditizio per
l’azienda vivaistica, perché richiede un minore impegno di lavoro e investimenti relativamente inferiori
rispetto a quelli richiesti da altri metodi di moltiplicazione vegetativa.
Nel cipresso comune finora non è stata descritta, né verificata mai nelle nostre prove, incompatibilità tra il
clone innestato ed il portainnesto da seme. In qualche caso si è assistito però ad un lento e stentato
accrescimento della marza probabilmente dovuto ad una imperfetta esecuzione dell’innesto. Tuttavia
l’effetto del portainnesto, ovvero dei semenzali impiegati, su alcuni caratteri quali il ritmo di crescita, la
forma ed il colore della chioma, il livello di resistenza al cancro (da ricerche presso l’IPP) non è risultato
significativo. Questo fatto ci autorizza a proseguire con l’uso di portainnesti costituiti da semenzali, anche se
negli ultimi anni l’INRA di Antibes ha selezionato portainnesti a rapido accrescimento e con ottimo potere
rizogeno per talea. Dal lavoro del Vivaio “Il Campino” risulta anche evidente che la ricerca debba essere
orientata verso l’individuazione di cloni di cipresso tolleranti a certi terreni difficili e che, nello stesso tempo,
abbiano anche altre caratteristiche economicamente importanti (rapido accrescimento, forma della chioma,
resistenza al cancro, etc.). Queste valutazioni si basano sulla moltiplicazione dei candidati per talea radicata.
Nel caso in cui non sia possibile individuare un numero sufficientemente ampio di cloni tolleranti a questi
terreni e resistenti al cancro, potremo, tra quelli tolleranti, selezionarne alcuni come portainnesti e su questi,
moltiplicati a loro volta per talea radicata, innestarvi i cloni con i caratteri desiderati.
Un rischio della moltiplicazione vegetativa e dell’innesto, soprattutto in considerazione dell’elevato numero
di piante innestate vendute, è quello di diffondere a livello regionale e/o nazionale su larga scala solo uno o
pochissimi cloni “superiori”, ad es., per la resistenza al cancro, determinando un’impressionante e pericolosa
omogeneità genetica, che potrebbe costituire un problema se altri parassiti, oltre il S. cardinale, arrivassero e
si diffondessero, ed un’alterazione della componente paesaggistica. A questo proposito, l’IPP ed altre Unità
Operative del progetto CypMed (Interreg III B MedOcc) stanno costituendo in varie località mediterranee
una serie di parcelle sperimentali impiegando numerosi cloni di cipresso resistenti al cancro per valutare
sperimentalmente il valore delle “varietà multiclonali” adatte per impianti forestali e frangivento nel
garantire sia la risposta positiva all’attacco del S. cardinale che una più elevata variabilità genetica e quindi
una maggiore resistenza e/o tolleranza ad altri aggressori esterni.
Dopo questa premessa sui pregi (molti) e sugli svantaggi (pochi) della moltiplicazione per innesto effettuata
in modo ecologicamente valido, vengono descritte le principali fasi della propagazione per innesto del
cipresso, rinviando al lavoro di Capuana per eventuali approfondimenti teorici.
Preparazione del portainnesto
Il portainnesto è costituito da semenzali di C. sempervirens (Fig. 1). E’ opportuno rifornirsi di seme di ottima
qualità che, in base alla legge 269 del 22.5.1973 ed alla direttiva CE 1999/105 deve essere di provenienza
certificata e possibilmente derivante per l’Italia da boschi iscritti al LNBS.
In genere la semina viene effettuata in serra riscaldata, dotata di impianto mist, in alveoli o cassette nel mese
di Gennaio. Particolare attenzione va riservata alla fase di emergenza della plantula a causa della sua estrema
suscettibilità al mal del colletto con interventi preventivi (uso di substrato particolarmente drenante, ovvero
16

Fig. 1 - Semenzali di due mesi in alveolo.
che si asciughi rapidamente in superficie a livello del
colletto della plantula, e con buona capacità di ritenzione
idrica per garantire una sufficiente umidità alle radici) ed
interventi curativi con trattamenti anticrittogamici mirati.
Alla fine della primavera (giugno dello stesso anno della
semina) i semenzali vengono trapiantati in vasetti. È
opportuno effettuare una serie di trapianti in vasetti di
dimensioni crescenti (volume tra 500 e 1000 cc). In
commercio sono disponibili vasetti di forma particolare
per ridurre la malformazione degli apparati radicali
(radici a spirale sul fondo del contenitore, ad es.).
Tali deformazioni radicali, che incidono poi sullo sviluppo
della pianta nel tempo, possono essere ridotte evitando
sia di utilizzare substrati di coltivazione troppo compatti
sia di sottoporre la pianta a stress idrici (alternanza tra eccessiva o troppo scarsa disponibilità di acqua a
disposizione). L’allevamento in contenitore delle piante destinate a servire come portainnesto può durare uno
o due anni. Durante questo periodo occorre mantenere le piante nel miglior stato sanitario, anche con
interventi antiparassitari. Al momento dell’innesto il portainnesto deve essere esente da attacchi parassitari
ed in pieno sviluppo.
Raccolta e preparazione delle marze
Le marze devono essere prelevate da piante madri sane e vigorose, avendo particolare cura nel raccogliere
esclusivamente getti apicali “di luce” possibilmente nella parte più alta della pianta. Le marze non devono
essere di consistenza troppo legnosa e devono essere raccolte in concomitanza con le operazioni di innesto.
Nel caso che il prelievo delle marze debba essere effettuato in anticipo rispetto al momento dell’innesto, le
marze devono essere conservate per alcuni, ma non molti, giorni in contenitori impermeabili in frigo a 4-5°C.
Il materiale così scelto proveniente dalle Piante madri deve essere ulteriormente revisionato in un secondo
tempo a tavolino eliminando le marze o parti di esse non sane e la vegetazione superflua. Alla fine
dell’operazione si ottiene una marza di 10-15 cm pronta per l’innesto. Le marze così preparate vengono
trattate immergendo la zona dei tagli in una soluzione con un fungicida ad azione sistemica.
Prevedendo decine di migliaia di innesti, un’azienda vivaistica deve preoccuparsi di allestire un arboreto
costituito da numerosi ramet (per “ramet” si intendono le copie
vegetative di una pianta madre, detta “ortet”, ottenute per
moltiplicazione agamica) delle piante madri, che l’azienda intende
moltiplicare in modo da garantirsi ogni anno il materiale idoneo e
sufficiente (marze) per gli innesti programmati.
Fig. 2 - I tagli dell’innesto
Metodo di innesto
Nel cipresso comune il metodo di innesto più praticato è quello per
approssimazione laterale da eseguirsi pochi centimetri sopra il livello
del colletto.
a) preparazione per l’innesto del portainnesto
Sul portainnesto, scelto in relazione alle dimensioni della marza o
viceversa, vengono asportati tutti i rametti presenti per circa 5-10 cm in
altezza sopra il colletto per agevolare l’esecuzione dei tagli necessari
per l’innesto. Il taglio viene praticato dall’alto verso il basso in modo da
asportare un tratto di corteccia e di legno per una lunghezza di circa 2,5-
3 cm e per una larghezza pari a circa ¼ della circonferenza del fusto. La
parte in alto della zona asportata deve iniziare con taglio a scivolo
dall’esterno verso l’interno, mentre quella in basso deve terminare con
17

un incastro a forma di “V” aperta, capace di trattenere e bloccare la marza (Fig. 2).
b) preparazione per l’innesto della marza
La marza deve essere approntata con le medesime misure e con le caratteristiche di taglio identiche a quelle
descritte per il portainnesto. La parte terminale in basso della marza deve avere una forma “a cuneo” e quella
in alto “a scivolo” per aderire perfettamente sia all’incastro a “V” prima descritto che a tutte le altre parti
tagliate del portainnesto.
AVVERTENZE:
1. Come tutti gli innesti, in genere, i tagli devono presentare superfici lisce mentre i tessuti dei bionti
non devono essere lesionati od intaccati a più riprese. Per questo, è importante curare l’affilatura del
coltello ed operare con decisione in modo da asportare corteccia e legno su tutta la lunghezza
desiderata con un unico taglio.
2. Occorre scegliere il portainnesto (pianta di uno o due anni) in relazione alle dimensioni della marza
(o viceversa) in modo da far combaciare al meglio le loro zone cambiali.
Epoca di esecuzione degli innesti
Per motivi economici dalle aziende vivaistiche è stato pressoché eliminato l’innesto in piena aria. In vivaio,
per favorire l’organizzazione del lavoro e per disporre di un più lungo periodo favorevole all’innesto del
cipresso, si opera in serra riscaldata. Al suo interno le piante in contenitore (portainnesti) vengono poste in
“forzatura” con largo anticipo rispetto al periodo programmato per l’innesto. La moltiplicazione per innesto
comincia così a Gennaio e si può protrarre fino in primavera.
I due bionti (portainnesto e marza) vengono posti a contatto tra loro curando che la zona cambiale dell’uno
collimi con quella dell’altro (Fig. 3). Si procede allora alla legatura su tutta la lunghezza con elastici
fotodegradabili (Fig. 4) ed alla tamponatura con mastici specifici di tutti gli spazi e delle aperture che
possono mettere a contatto le zone sottoposte al taglio con l’esterno (vedi Tavola 1).
In questa fase la pianta portainnesto si presenta pressoché integra ma con una marza del clone inne-
stato inserita lateralmente.
Dopo l’innesto è importante che le piante innestate siano allevate in ambiente controllato (in genere sotto tunnel di
plastica) per la temperatura (intorno a 22°C) e per l’umidità dell’aria circostante la talea (circa 100%).
All’inizio dell’attività vegetativa, viene asportata la cima del cipresso portainnesto, conferendo così maggior
spinta all’accrescimento della marza. La riduzione della chioma del portainnesto è continua ed in relazione
sempre all’accrescimento della marza. La pianta innestata viene man
mano posta in condizione di meglio adattarsi all’ambiente esterno e a
fine primavera viene trasferita in un contenitore più grande (max. 4-5
litri) dove potrà stare per almeno altri 2 anni, ovvero fino a raggiungere
in vaso un’altezza di 100-150 cm.
Ad un anno dall’innesto è già difficile evidenziare il punto di unione tra i
due bionti e a due anni solo
un esperto può individuarlo.
Questo a dimostrazione
ulteriore della forte affinità
di innesto nell’ambito del C.
sempervirens e, da nostre
ricerche, anche tra portainnesti
di cipresso comune ed
altre numerose specie di
cipresso.
Fig. 3 - Approssimazione dei
due bionti.
18
Fig. 4 - Legatura del punto d’innesto
con elastico fotodegradabile.

Cipressi in ambiente controllato dopo
Tavola 1 - Sequenza delle operazioni d’innesto - Figg. 1-2-3: preparazione del portainnesto; figg. 4-5-6: preparazione della marza; figg. 7-8-9:
approssimazione dei due bionti (portainnesto e marza) e legatura con elastico del punto d’innesto: figg. 10-11-12: copertura del punto d’innesto con
paraffina.
19

Piante di cipresso in vaso 18 a due anni
dall’innesto, messe in commercio.
Innesto attecchito: eliminazione della parte aerea del portainnesto
Conclusioni
Le aziende vivaistiche europee producono diversi milioni di piante
di cipresso innestate e ne vendono annualmente circa 5 milioni. Le
piante di cipresso innestate vengono messe in commercio con
diverse dimensioni, a prezzi variabili in relazione all’altezza della
pianta stessa e allo standard qualitativo. Ha suscitato interesse
l’utilizzo di cloni di cipresso resistenti al cancro di oltre 8 m di
altezza per il risanamento dello storico viale di Bolgheri
nell’ambito sempre del Progetto CypMed. Recentemente alcuni
cloni sono stati brevettati dal CNR-IPP per la loro resistenza al
cancro e posti in commercio con un’etichetta di garanzia. Nel 2004
verranno brevettati altri 4 cloni per impianti ornamentali e se la
sperimentazione promossa dal progetto CypMed darà i risultati
attesi potrà essere possibile brevettare due “varietà multiclonali”,
costituite ciascuna da molti cloni resistenti al cancro, adatte per la
realizzazione di impianti forestali clonali e per barriere frangivento.
Si stima quindi che il mercato vada incontro a un ulteriore
incremento di vendite (circa 30%) di cipressi innestati nei prossimi
anni per i risultati scientifici finora ottenuti sulla resistenza al
cancro e per quelli sull’adattamento a differenti condizioni
pedoclimatiche previsti con il progetto CypMed.
20

PROPAGAZIONE DEL CIPRESSO PER TALEA
G. Pacini, S. Gozzo, L. Paggetti
Amministrazione Provinciale di Siena, Servizio Attività Agricole e Forestali.
G. Della Rocca
Istituto per Protezione delle Piante, CNR, Firenze
Presentazione del Vivaio “Il Campino”, Provincia di Siena
Nel 1932 il Vivaio “Il Campino” fu costituito come supporto ai cantieri forestali sotto la direzione del corpo
Forestale dello Stato (CFS) che operava nei bacini montani della provincia. Il Vivaio provvedeva
esclusivamente alla produzione di piantine forestali da mettere a dimora nei rimboschimenti producendo
annualmente dalle 150 alle 200 mila piante di varie essenze destinate soprattutto alla difesa del suolo. Una
superficie di circa 1100 ettari fu interessata allora da tali opere. Le sistemazioni a “gradoni” sono ancora
conservate ed efficienti, portate ad esempio e meta di visite di tecnici. Negli anni ’80 il Vivaio “Il Campino”
fu trasferito alla Provincia di Siena (L.R. di delega 15/81). L’Amministrazione Provinciale ha indirizzato
l’attività del Vivaio verso la sperimentazione, divulgazione ed innovazione tecnologica (progetti su piante
officinali, sull’olivo, sul tartufo, sul cipresso, ecc.).
Nel 1985, a seguito della gelata che distrusse il 70% del patrimonio olivicolo provinciale, il Vivaio iniziò la
propagazione dell’olivo per talea a partire da piante che avevano mostrato tolleranza al freddo, ottenendo
ottimi risultati. Anche il cancro del cipresso, causato da Seiridium cardinale, aveva decimato le piante di
cipresso, simbolo insostituibile del paesaggio senese. Questa epidemia richiese una bonifica consistente con
l’abbattimento ed il taglio di risanamento di cipressi, opere finanziate dalla Regione Toscana. Le attrezzature
impiegate nella moltiplicazione dell’olivo per talea radicata e le competenze acquisite dal personale del
Vivaio “Il Campino” furono estremamente strategiche ed utili per la moltiplicazione per talea radicata del
cipresso. Questa necessità di produrre in modo massale piante di cipresso a partire da piante scelte nel
territorio provinciale incrementò l’attività di ricerca del Vivaio per mettere a punto metodi di moltiplicazione
del cipresso per talea radicata economicamente validi. In diverse località della provincia di Siena di
particolare pregio paesaggistico-ambientale, quale la Val d’Orcia, esemplari monumentali di cipresso sono
stati identificati, catalogati e moltiplicati per talea radicata, piantati e quindi sottoposti ad inoculazione
artificiale con micelio di S. cardinale per valutarne il grado di resistenza. Tra queste piante madri, 7 sono
state registrate presso l’Ufficio Italiano Brevetti (Cipresso Val di Paglia, Cipresso Monte Cetona, Cipresso
Monticchiello, Cipresso di Pienza, Cipresso di Siena, Cipresso Val d’Orcia, Cipresso Castiglioncello del
Trinoro).
Moltiplicazione vegetativa del cipresso per talea: note tecniche
Perché moltiplicare il cipresso per talea?
La propagazione per radicazione di talea nel cipresso comune (Cupressus sempervirens) è pratica più
problematica e costosa dell’innesto. Infatti la permanenza delle talee in bancali di radicazione posti in serra
con mist dura vari mesi e richiede anche spese per il controllo sanitario. Anche le altre fasi di indurimento e
di trasferimento in serra e all’aperto sono in genere più lunghe, incerte e complesse di quelle legate
all’innesto. Le talee radicate dello stesso clone offrono però il grande vantaggio di costituire un materiale
geneticamente omogeneo, che favorisce enormemente certe indagini e studi. I risultati di tali studi possono
poi essere utilizzati con certezza nel settore applicativo.
Due esempi possono illustrare meglio l’importanza di poter disporre di materiale da talea radicata.
Il primo è dato dalla necessità di recuperare terreni particolarmente difficili con il cipresso. Ad es., nei terreni
argillosi del Senese sono stati identificati e moltiplicati per talea radicata i cipressi che si sono bene adattati a
questi terreni, sceglendo quelli con caratteristiche morfologiche migliori. Tale materiale è stato poi piantato
nelle parcelle di studio, valutandone la reale tolleranza al tipo particolare di terreno. È questo l’unico
21

approccio per evitare, usando materiale geneticamente omogeneo, le interferenze del portainnesto sulla
risposta del clone a quel terreno. In questo modo è anche possibile selezionare individui da usare
eventualmente come portainnesti tolleranti alle particolari condizioni edafiche e su questi innestare tutti i
cloni precedentemente selezionati per altre caratteristiche utili (tolleranza a fattori abiotici, resistenza al
cancro e ad insetti, ecc.). L’impianto di una varietà multiclonale innestata su portainnesto tollerante terreni
difficili garantisce, ad es., la resistenza al cancro e, nello stesso tempo, conserva nella zona una variabilità
genetica sufficientemente ampia.
Un secondo esempio è l’uso di piante derivate da talea radicata per scopi scientifici, ovvero per valutare
l’effetto del portainnesto su altri caratteri di importanza economica (ritmo di crescita, livello di resistenza a
malattie ed insetti, produzione di polline, ecc.). In questo caso l’impiego di talee radicate di un clone
eliminando il portainnesto, permette di misurare con precisione e ripetibilità il valore “reale” di adattamento
del clone a quel dato ambiente ed, operando con numerose piante per clone, avere informazioni sul genotipo
(Vg) utilizzando misure fenotipiche (Vp) dei caratteri (Vp=Vg+Ve, dove Ve è la variabilità ambientale, che,
assumendo valori positivi e negativi, in media con un campione numeroso tende a zero e quindi Vp=Vg).
Tecnica di moltiplicazione del cipresso per talea
Raccolta di talee da una pianta madre.
a) Scelta delle piante madri
La scelta della pianta madre (si intende per “pianta madre”
l’individuo che fornisce il materiale di propagazione, sia esso seme o
talee per l’innesto o per la radicazione) dipende soprattutto dal
carattere che si intende utilizzare. Ad es., se tale carattere è la
resistenza al cancro da S. cardinale, le piante madri dovranno essere
scelte tra i cipressi precedentemente selezionati per il loro elevato
grado di resistenza al cancro. Se invece tale carattere è la tolleranza a
terreni fortemente argillosi, come le crete senesi, le piante madri
dovranno essere scelte tra quelle che hanno mostrato una migliore
adattabilità, misurata come funzionalità della pianta negli anni,
rispetto ad altre.
b) Raccolta delle talee
Le talee semilegnose vanno raccolte dalla parte inferiore della
chioma delle piante madri integre. Le piante madri non devono
essere in piena vegetazione e non aver subito un repentino
abbassamento della temperatura. Secondo alcuni ricercatori (Pacini,
com. pers.) il miglior periodo di raccolta delle talee è Novembre,
mentre Giannini et al. (1999) suggeriscono di prelevare le talee
all’inizio della ripresa vegetativa del cipresso, che in Toscana è verso
Marzo-Aprile. Va comunque ricordato che ogni individuo (genotipo)
possiede un suo periodo ottimale per la raccolta di talee per la
radicazione, durante il quale le talee rispondono meglio ai
trattamenti ormonali.
Le talee vanno preparate e poste a radicare prima possibile, ma nel caso che ciò non possa avvenire, possono
essere conservate per qualche giorno in sacchetti di plastica a 2-3°C.
c) Preparazione e trattamento delle talee
Le dimensioni delle talee possono essere molto variabili, dai 3-4 cm di lunghezza fino a 15-20 cm in
relazione alla crescita, che ha avuto la pianta nell’ultimo anno, ed alla sua età. Le talee prelevate dalla parte
più bassa di piante giovani hanno una capacità rizogena superiore a quelle raccolte sempre dalla parte più
bassa della chioma di piante adulte dello stesso clone. Sono comunque da evitare talee succulenti, dette di
“luce”, che sono più sensibili e dipendenti dalle condizioni ambientali durante la fase di radicazione.
Dopo aver rimosso le foglie dalla parte basale, le talee vanno trattate con uno stimolatore della rizogenesi,
immergendone la base per alcuni minuti in una soluzione allo 0,5% del sale potassico dell’acido indol-
22

Talee poste a radicare in bancale riscaldato.
butirrico (IBA). Per il controllo dei funghi parassiti sono
consigliati trattamenti a base di benlate (1%). I risultati
ottenuti da Stankova e Panetsos (1997) mostrano che il
trattamento ormonale influenza significativamente la
risposta rizogena di alcuni cloni più che di altri. Va
ricordato che ogni genotipo esprime un differente
potenziale rizogeno e, in genere, in cloni a basso
potenziale rizogeno naturale il trattamento auxinico non
riesce ad aumentare il livello di radicazione fino a quello
dei cloni a potenziale naturale già elevato.
Le talee vengono messe in bancali con riscaldamento
basale (22-24°C) in serra dotata di mist, inserendole nel
substrato per circa 1/3, ovvero 4 cm. Il processo di
formazione delle radici avviene in tempi relativamente
lunghi e variabili a causa di
molti fattori (tra i quali l’età
della pianta madre, il periodo
di raccolta delle marze, il
genotipo della pianta madre,
la gestione della serra, ecc.).
Infatti alcune talee dopo
circa un mese formano abbondante
callo, altre neces-
sitano di 2-3 mesi.
Una così lunga permanenza
delle talee nel substrato può
facilitare attacchi di funghi
patogeni, che devono essere
tenuti sotto controllo con
Formazione delle radici dalle talee.
trattamenti anticrittogamici
idonei. Il substrato ed i
contenitori, già impiegati in precedenti prove di radicazione, devono essere comunque completamente
sottoposti a sterilizzazione con vapore prima di procedere alla collocazione di nuove talee.
d) Indurimento
Le talee radicate vengono invasate (è usato comunemente un vasetto, meglio se di torba, di 5cm (100cc), con
torba, sabbia e perlite nel rapporto 3:1:1) ed acclimatate in bancale in serra con impianto mist a 22°C per 4
settimane. Quindi vengono reinvasate in un contenitore da 1,5 - 2,5 l con terriccio, torba e terreno sabbioso
nel rapporto 2:2:1 e messe in ombrario per circa un anno in modo da sviluppare un apparato radicale tale da
garantire la riuscita del trapianto in pieno campo.
In genere la sopravvivenza delle talee radicate dopo il secondo trapianto è molto alta, circa il 100%,
indicando chiaramente che il sistema radicale di queste piante è fisiologicamente funzionante.
Dopo 2 anni le piante autoradicate raggiungono un’altezza media di 38-42 cm, senza differenze consistenti
tra cloni o tra talee prelevate dalla parte più bassa o più alta della chioma (Capuana e Lambardi,1995).
Conclusioni
La percentuale di radicazione delle talee di cipresso oscilla di anno in anno e dipende dal genotipo delle
diverse piante madri caratterizzato da diverso potere rizogeno. Nel Vivaio Campino la percentuale di
radicazione di talee di cipresso varia dall’80% al 30%. L’impiego di tale tecnica di moltiplicazione del
cipresso è soprattutto necessario per riuscire ad individuare i candidati tolleranti le argille senesi scegliendoli
23

tra quelli precedentemente indicati come resistenti al cancro da S. cardinale o selezionando tra quelli
tolleranti terreni altamente argillosi quelli resistenti anche al cancro. Nel caso che non sia possibile ottenere
selezioni tolleranti e resistenti contemporaneamente, l’interesse sarà rivolto verso l’individuazione di
candidati tolleranti le argille, la loro moltiplicazione per talea radicata e su questi, impiegati come
portainnesto, l’innesto di cloni resistenti al cancro.
Gli obiettivi indicati sono quelli del progetto CypMed dell’Interreg III B Med.Occ assegnati alla Provincia di
Siena, che intende soddisfarli con la collaborazione fattiva del Vivaio Campino e di altre Unità Operative del
CypMed.
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24

PRODUZIONE DI PIANTE DI CIPRESSO ATTRAVERSO LA MICROPROPAGAZIONE
1
Claudine Andréoli - URIH Pathologie Appliquée, Antibes, Francia
M. Capuana - CNR Istituto di Genetica Vegetale – Sezione di Firenze
2
3 4
Figg. 1-2-3-4-5 Micropropagazione di Cupressus sempervirens.
Proliferazione, accrescimento dei germogli e rizogenesi.
5
25
La micropropagazione ha gli stessi obiettivi della
radicazione per talea e dell’innesto, ovvero la
produzione di piante per via vegetativa,
garantendone l’identità e la ripetibilità genetica.
Negli ultimi decenni il cancro del cipresso da
Seiridium cardinale ha decimato le piantagioni di
questa specie (Cupressus sempervirens) nei paesi
del bacino mediterraneo (soprattutto Italia, Grecia e
Francia). Questo fatto ha indirizzato gli studi,
finanziati dalla EU, verso la selezione di cipressi
resistenti al cancro (Panconesi et al., 1999).
L’impiego della coltura in vitro può rappresentare
un metodo utile per la produzione massale di
genotipi già selezionati per caratteri quali, ad es., la
resistenza al cancro, l’accrescimento e l’adattamento
a condizioni avverse.
Relativamente alla micropropagazione del cipresso
comune, vi sono pochissimi lavori pubblicati e la
maggior parte di questi si riferiscono alla micropropagazione
di plantule molto giovani (fino a 4-6
settimane d’età). Negli anni ’90 fu intrapresa una
prova per valutare la capacità rigenerativa di tessuti
prelevati da cipressi di diversa età (semenzali di 5
settimane, alberi di 15 e 150 anni) riguardante
l’induzione di proliferazione di gemme ascellari, il
conseguente sviluppo dei germogli (allungamento) e
la loro radicazione (Capuana e Giannini, 1997).
Il vantaggio indiscusso della propagazione in vitro è
che si possono moltiplicare i cloni selezionati per le
caratteristiche desiderate in modo massale (come
avviene per altre specie forestali arboree), in tempi
relativamente brevi e, se la micropropagazione ha
successo, anche a costi economicamente validi. Ci
sono però alcune difficoltà. Infatti, poiché la
selezione di un clone “superiore” di cipresso
richiede almeno 8-9 anni, è logico che sia necessario
indirizzare gli sforzi della ricerca nel tentativo di
rendere possibile ed economica la micropropagazione
a partire da espianti prelevati da cipressi di
9-12 anni.

Scelta del materiale
Le gemme apicali di rami laterali sono prelevate dalla parte inferiore della chioma di cloni resistenti al
cancro, che hanno di conseguenza un’età compresa tra 9 e 12 anni. Il materiale scelto deve essere comunque
in uno stadio fisiologico di piena crescita ed essere costituito da tessuti giovani (età inferiore ad un anno). Se
si tratta di un cipresso in situ, occorre cercare di ringiovanire i tessuti sia per innesto (annotare le percentuali
di attecchimento dell’innesto) che per talea radicata controllandone il tasso di rizogenesi spontanea (ovvero
quella ottenuta senza trattamenti auxinici). Da prove effettuate dall’INRA ad Antibes, sembra che i valori
elevati per questi due caratteri indichino una certa predisposizione del clone alla rizogenesi in vitro. Se si
tratta, invece, di un clone allevato in vaso, è opportuno potare drasticamente la pianta a partire dalla base in
modo da ottenere la formazione di vegetazione “primaria”, ossia rametti con foglie lanceolate ed appuntite
come le foglie primarie.
Messa in coltura del materiale
Gli espianti, dopo essere stati lavati in acqua per 60 minuti, vengono sterilizzati con un trattamento a base di
70% di etanolo per 2 minuti, risciacquati in acqua sterile e poi immersi in una soluzione di ipoclorito di sodio
all’1,5% per 20 minuti. Infine il materiale viene risciacquato 4 volte in acqua sterile deionizzata.
La messa in coltura dell’espianto avviene su un mezzo minerale specifico (micro e macroelementi, carbonio
in forma organica, vitamine) in cui l’equilibrio tra i regolatori di crescita (citochinine ed auxine) è calibrato
in funzione dello stadio di sviluppo dell’espianto e dell’evento morfogenetico che si intende provocare.
Le tappe della micropropagazione possono essere in breve così indicate:
a) scelta e prelievo del materiale e sua sterilizzazione;
b) messa in coltura. L’introduzione in vitro (in tubi o vasi di coltura di dimensioni appropriate) può
essere fatta utilizzando una semplice soluzione agarizzata, con lo scopo di avere una conferma della
sterilità del materiale. In seguito, questo viene trasferito su mezzo minerale in grado di favorire:
- la crescita del tessuto aereo
- la proliferazione delle gemme
- la rizogenesi
c) acclimatazione, che prevede il passaggio dal vitro (costituito da un ambiente sterile, controllato e con
umidità ambientale vicina alla saturazione) all’esterno;
d) piantagione e controllo: può essere utile, infatti, testare l’adattabilità ad ambienti diversi delle piante
propagate ed eseguire prove comparative tra piante di uno stesso clone derivate da
micropropagazione e quelle ottenute attraverso radicazione di talea o innesto.
Germoglio di Cupressus sempervirens radicato in
vitro.
Risultati
Il risultato più evidente scaturito da nostre prove e confermato
dalla bibliografia, è l’evidente differenza nel comportamento di
espianti da tessuti di giovani semenzali rispetto a quello da
cipressi adulti. La capacità di organogenesi e di rigenerazione
della pianta, in genere, diminuisce passando dalla fase giovanile
vegetativa a quella adulta riproduttiva. Il tasso di proliferazione
è risultato alto per il materiale giovane di cipresso, mentre solo
pochissimi espianti da piante adulte hanno rigenerato. Inoltre gli
espianti da piante giovani si allungano rapidamente, mentre
quelli da piante adulte necessitano di numerose subcolture per
raggiungere un adeguato sviluppo che consenta successive
proliferazioni o il passaggio alla radicazione. L’uso di carbone
attivo è risultato efficace nelle fasi di allungamento perché viene
ridotto l’effetto negativo della BA (N6-benzyladenine) sullo
sviluppo del germoglio e sulla successiva radicazione.
26

Sviluppo differenziato delle piantine in relazione al clone sottoposto
a micropropagazione.
a b c
Conclusioni
Altro risultato interessante è che la coltura in vitro
sembra avere un effetto di rinvigorimento sul
materiale adulto, promuovendo la comparsa di
caratteri morfologicamente giovanili. Come per
altre conifere, anche per il cipresso la radicazione di
espianti da piante adulte è da considerare il punto
critico della micropropagazione, fatto che limita
l’uso di tale tecnica nel miglioramento genetico del
cipresso. Occorre tuttavia ricordare che l’attitudine
alla rizogenesi, come nel caso della propagazione
per talea, è legata al genotipo e, soprattutto,
fortemente correlata con l’età della pianta dalla
quale si preleva il materiale da sottoporre alla
micropropagazione.
Sviluppo delle piante coetanee del clone F 318: a - innesto; b - talea radicata; c - pianta micropropagata.
Le osservazioni sperimentali sulla propagazione in vitro, soprattutto a partire da cipressi adulti, indicano difficoltà reali
per la formazione di radici. E’ presumibile che questo ostacolo possa essere superato con un approfondimento delle
ricerche, dal momento che la radicazione di germogli proliferati da espianti adulti è stata già ottenuta, seppure in
percentuali molto basse. E’ quindi necessario migliorare tale tecnica, perché la moltiplicazione in vitro da piante adulte
selezionate aprirebbe anche la strada all’impiego dell’ingegneria genetica nel miglioramento genetico del cipresso per
caratteri di particolare interesse. Altra difficoltà, non di poco conto, è che l’applicazione della micropropagazione
richiede strutture appropriate e manodopera specializzata; di conseguenza, se le aziende vivaistiche intendessero
indirizzarsi a laboratori di colture in vitro, il costo di produzione di piante a partire da cipressi adulti risulterebbe, al
momento, piuttosto elevato. Per questo la micropropagazione del cipresso sembra avere un’immediata applicabilità solo
se rivolta verso la moltiplicazione di esemplari di alto valore storico ed ornamentale e di quelli selezionati per caratteri
validi; in generale, quindi, per la salvaguardia e conservazione di un germoplasma a forte rischio di estinzione e per la
costituzione di una banca di geni, realizzabile anche su scala mondiale.
Bibliografia
Capuana M., Giannini R. 1997. Micropropagation of young and adult plants of cypress (Cupressus sempervirens L.) S.
Hort. Sci., 72(3): 453-460.
27

Introduzione
LE MALATTIE DEL CIPRESSO IN VIVAIO
dal frutto al seme, dalla plantula alla commercializzazione
A. Panconesi, R. Danti
Istituto per la Protezione delle Piante del CNR, Firenze
Molto si è parlato in questi ultimi anni del cipresso, delle sue malattie e delle enormi difficoltà che si
incontrano nel loro controllo. Mi riferisco in modo particolare al Seiridium cardinale, agente patogeno del
cancro corticale del cipresso (Cupressus sempervirens), la malattia più importante e distruttiva che abbia mai
colpito questa specie, i cui devastanti effetti si possono riscontrare in gran parte dei paesi che si affacciano
sul bacino mediterraneo (Grasso e Raddi, 1979; Ponchet, 1990; Panconesi, 1991; Teissier du Cros, 1999;
ARSIA, 2003).
Numerosi studi sono stati effettuati sulle malattie delle piante adulte, ma molto poco si conosce sui parassiti
dei coni 1 , dei semi e delle giovani piantine in vivaio, dalla germinazione al momento della loro
commercializzazione. In questo lavoro vorremmo contribuire a descrivere brevemente quali sono questi
patogeni, come sono coinvolti nel processo riproduttivo e vegetativo del cipresso e quali sono le possibilità
di controllo.
MALATTIE DELLE GALBULE
Seiridium cardinale
All’inizio della primavera e in autunno, non è difficile osservare, anche ad occhio nudo, sulle galbule del
cipresso, delle piccole pustole nere, delle dimensioni di 0,5-1,5 mm, erompenti
dall’epidermide (Fig. 1). Queste pustole, dette acervuli, contengono migliaia di
conidi che sono gli organi di riproduzione del parassita. Questi conidi sono
costituiti da 6 cellule, 2 ialine apicali senza
appendici e 4 centrali più scure (Fig. 2). Gli
acervuli si sviluppano singolarmente, non sono
molto fitti e appaiono disposti irregolarmente
sulle squame. La loro presenza può interessare
Fig. 1 – Galbule con acervuli
di S. cardinale.
Fig. 3 – Squama con acervuli di S.
cardinale e foro di uscita (a sinistra
in basso) del Mega-stigmus wachtli.
una singola squama o l’intera superficie della
galbula. Galbule infette possono essere
osservate sia su rami infetti che su rami sani;
galbule sane possono trovarsi anche su rami
Fig. 2 – Conidi di S. cardinale.
infetti. Se l’infezione è precoce, ovvero avviene quando le galbule sono
molto piccole, da alcuni mm fino ad 1 cm di diametro circa, queste si
disseccano e cadono anticipatamente, in modo simile a quanto si verifica in
seguito ad attacchi del Lepidottero tortricide Pseudococcyx tessulatana. Se
l’infezione è più tardiva, alcune squame o l’intera galbula possono essere
interessate dalla malattia per cui tutta la galbula o parte di essa può aprirsi
anticipatamente mostrando i semi ancora immaturi (di colore giallo
paglierino) avviluppati da un intreccio di ife di colore biancastro. Molto
spesso si verifica che su una galbula adulta possa essere colpita una singola
squama (Fig. 3), in questi casi l’infezione può essere trasmessa da alcuni
insetti frequentatori o infeudati con i coni o con i semi del cipresso quali il
Megastigmus wachtli e l’Orsillus maculatus. Le squame colpite da S.
cardinale imbruniscono e necrotizzano, si disidratano e riducendosi di
1 I coni sono i frutti delle conifere, nel cipresso sono detti anche galbule.
28

volume si separano da quelle sane adiacenti, dando la sensazione di un’apertura anticipata. Questo loro
aspetto le rende facilmente riconoscibili da quelle sane sulle quali deve orientarsi la raccolta.
Sebbene la malattia non riesca a passare dal picciolo della galbula infetta al rametto, durante le tempeste i
coni infetti possono urtare, ferire e contaminare i rami ed i coni della stesa pianta o delle piante circostanti,
qualora le chiome siano in contatto tra di loro.
Gli acervuli del S. cardinale si sviluppano sia sulla superficie esterna che sulla superficie interna delle
squame, ciò favorisce la contaminazione dei semi e la produzione di enormi quantità di inoculo (conidi), che
può essere diffuso nell’ambiente da vari agenti meteorici (vento, pioggia, grandine, ecc.) e da altri vettori
animali (insetti, uccelli, piccoli mammiferi roditori, ecc.). Le galbule, anche quelle infette, dopo la loro
maturazione e apertura, possono rimanere a lungo (anche più di un anno) attaccate al rametto sul quale sono
state prodotte. Durante il periodo di permanenza sulla pianta, fino alla completa disidratazione dei tessuti, le
galbule infette continuano a produrre e diffondere inoculo nell’ambiente. Spesso delle nuove serie di
fruttificazioni si formano nei crateri acervulari ormai vuoti dell’anno precedente. Le galbule infette possono
essere inoltre visitate da numerosi insetti vettori, più o meno opportunisti, che possono favorire ulteriormente
la diffusione del patogeno.
Diplodia pinea f. sp. cupressi (sin. Sphaeropsis sapinea f. sp. cupressi, Diplodia mutila [Stanosz et al.,
1998]; teleomorfo: Botryosphaeria stewensii 2 ).
I picnidi del fungo sono stati ritrovati, oltre che sui cancri del fusto e delle branche, come riferiremo in
seguito, anche sulle galbule e sui semi (Frisullo et al., 1997). Le galbule infette si presentano corrugate e
ridotte in volume, di colore bruno nerastro, specialmente le più giovani. Da alcuni cretti presenti sulla
superficie si sviluppano, abbondanti picnidi nerastri con il collo brevemente emergente. I conidi, che a
maturità fuoriescono dal collo del picnidio e si accumulano come una massa bruno nerastra sulla superficie
della galbula, sono ovoidali, ialini ed hanno la parete liscia. A maturità i conidi assumono una colorazione
bruna e frequentemente originano un setto trasversale mediano.
È stato accertato che questi conidi possano essere veicolati da una pianta all’altra da alcuni insetti Psocotteri
(Porcelle et al., 1996). Poiché la malattia può passare dalla galbula ai semi, questa può determinare una forte
riduzione della germinabilità. Le galbule infette fanno aumentare notevolmente la quantità di inoculo, ciò
comporta una maggiore possibilità di diffusione della malattia a tutti gli altri organi della pianta, rami,
branche, ecc. con produzione di nuovi cancri e disseccamenti che vanno ad aggravare il quadro patologico
del cipresso.
Phomopsis occulta (teleomorfo: Diaporthe eres)
Causa , come vedremo in seguito, il disseccamento dei getti in piante adulte e la morte di giovani piantine in
vivaio. In passato, la forma di riproduzione agamica (asessuata) è stata ritrovata, a livello saprofitario, anche
su rami e coni morti di cipresso e di altre conifere (Ghillini, 1939). Non sono state fatte indagini per accertare
se la patogenicità dei ceppi provenienti dai coni fosse diversa da quella dei ceppi provenienti dai rametti o
dalle giovani piantine.
Pestalotiopsis funerea
Fig. 4 – Acervuli di Pestalotiopsis
funerea.
Gli acervuli prodotti da questa specie fungina (Melanconiales) sulle galbule di
cipresso, sono molto simili a quelli descritti per il S. cardinale dal quale possono
essere distinti solo con un attenta osservazione o con l’ausilio di un microscopio. Gli
acervuli di P. funerea (Fig. 4) sono brunastri, piuttosto piccoli e addensati e
prorompono dall’epidermide della galbula formando un’apertura di forma triangolare
sui cui bordi si osserva per breve tempo il colore bianco dei tessuti stromatici. A
maturità, dalla sommità del cono acervulare, lacerato dalla pressione esercitata dalla
continua produzione di conidi, fuoriesce un cirro di colore nerastro costituito dalla
massa dei conidi che in assenza di umidità si rapprende facilmente assumendo una
consistenza quasi cornea. Con la pioggia queste masse conidiche si liberano
2 Teleomorfo e anamorfo sono rispettivamente la forma di riproduzione sessuata ed asessuata di un fungo.
29

immediatamente e si disperdono nell’ambiente circostante.
Microscopicamente i conidi della P. funerea hanno solo 5 cellule (tre mediane più scure e due, quella basale
e quella apicale, ialine) (Fig. 5). La cellula ialina apicale possiede 3-4 sete lunghe e ben visibili che la
differenziano inequivocabilmente dal S. cardinale.
Questo Melanconiale si comporta come un debole parassita od un saprofita.
Alcuni ritengono che possa vivere anche a livello endofitico per svilupparsi
sulle galbule in via di maturazione sulle foglie e sui giovani rametti stressati
per cause ambientali avverse (ad es. abbassamenti repentini di temperatura).
Molto spesso le sue fruttificazioni possono svilupparsi insieme a quelle del
S. cardinale. Benché caratterizzata da debole attività parassitaria, la
presenza di P. funerea sui coni può ad attirare vari tipi di insetti che
Fig. 5 – Conidi di P. funerea. possono trasportare anche i conidi di S. cardinale.
Altri miceti
Altri funghi più o meno opportunisti o dotati di debole attitudine parassitaria possono svilupparsi sulle
galbule specialmente quando queste sono giovani e danneggiate da squilibri fisiologici o da attacchi
parassitari di varia natura (funghi, insetti, danni da freddo, ecc.). I miceti che più comunemente vengono
reperiti sui coni di cipresso colonizzati da S. cardinale sono: Pestalotiopsis funerea, Botrytis cinerea,
Alternaria sp., Trichotecium roseum, Aureobasidium sp., Gliocladium sp., Trichoderma viride., ecc. Talvolta
alcuni di questi miceti, ad esempio il T. viride, possono essere utilizzati nella lotta biologica, ovvero per
ostacolare od impedire lo sviluppo del processo infettivo e/o riproduttivo di S. cardinale (Marchetti et al.,
1986).
MALATTIE DEI SEMI
Seiridium cardinale
Tutte le malattie fungine che si sviluppano sui coni possono contaminare il tegumento esterno dei semi con
le loro forme riproduttive o con il micelio. Qualora questi semi contaminati vengano posti in commercio
possono divenire un mezzo di diffusione della malattia anche a grandi distanze. Talvolta la contaminazione
può riguardare non solo la parete esterna ma anche l’interno dei semi, sui quali, peraltro si possono
sviluppare gli organi di riproduzione di alcuni parassiti fungini. In questi casi, oltre alla possibilità di
trasporto passivo dell’agente patogeno, il seme può essere danneggiato nella sua vitalità, ovvero può perdere
Fig. 6 – Acervuli di
S.cardinale su semi di C.
sempervirens.
gran parte del suo potere germinativo che è naturalmente già basso, 20-40%.
Come abbiamo già visto, gli acervuli di S. cardinale si sviluppano sia sulla
parte esterna che interna delle squame della galbula. Per questo motivo, quando
le galbule si infettano, anche i semi possono essere completamente invasi dal
fungo (conidi e micelio) ed anche su di essi si possono differenziare le
fruttificazioni acervulari (Fig. 6). Talvolta è stato osservato che anche su semi
apparentemente sani e provenienti da galbule sane, dopo alcuni giorni di
incubazione in camera umida, possono svilupparsi gli acervuli del fungo
(Saponaro e Motta, 1981). Alcuni di questi semi, sebbene coperti da acervuli,
sono comunque in grado di germinare. Ciò conferma ulteriormente che
l’infezione può essere solo superficiale (semi contaminati) oppure interessare
anche l’endosperma (semi infetti). Nel primo caso i semi riescono a germinare
e probabilmente il contatto con il parassita è avvenuto tardivamente e si è
limitato ad uno sviluppo superficiale, nel secondo caso l’infezione è avvenuta anticipatamente ed il micelio
del parassita ha avuto modo di uccidere o danneggiare l’endosperma impedendo così la germinazione.
Premettiamo che una corretta raccolta e conservazione del seme di cipresso, come degli altri semi, deve
seguire delle regole particolari conosciute da tempo e dalle quali non si può prescindere (ANPA, 2001;
APAT, 2003).
Poiché anche il seme raccolto da galbule sane può essere contaminato con i conidi del S. cardinale, onde
poter eliminare ogni possibilità di contagio, alcuni autori hanno suggerito di intervenire chimicamente con la
30

concia (Motta, 1984). La disinfezione del seme è molto importante specialmente quando questo deve essere
importato od esportato. Si ricorda che probabilmente i conidi del S. cardinale sono stati introdotti in Europa
con la commercializzazione di seme infetto. La concia dovrà essere effettuata anche quando si tratta di
salvaguardare una produzione di pregio come quella che deriva dalle piante plus selezionate nei boschi
iscritti al LNBS, situati in Toscana, in zone notoriamente sottoposte ad intensi attacchi di S. cardinale. Il
trattamento con prodotti sistemici (Tiofanate-metil; Benomyl) ha mostrato di ridurre considerevolmente la
presenza del patogeno sia dai semi infetti che da quelli contaminati esternamente. Oggi il Benomyl, non più
in commercio, pensiamo possa essere egregiamente sostituito con Carbendazim anche se non ci sono prove
sperimentali che lo abbiano confermato. In definitiva la disinfezione consente un uso più sicuro del seme,
favorendo, in parte, anche la sopravvivenza delle piantine nate da semi contaminati.
Pestalotiopsis funerea
Molto spesso abbiamo potuto riscontrare come le fruttificazioni acervulari di questo micete non siano
presenti solo sulle galbule ma anche sui semi del cipresso, in particolare del C. sempervirens. La sua debole
azione parassitaria può conpromettere solo marginalmente la germinabilità dei semi. Solo quando l’apertura
della galbula avviene prima della maturazione dei semi questi possono essere colonizzati e danneggiati dal
micelio. Sebbene la P. funerea sia stata ritrovata più volte fra gli agente di damping off dei semenzali, non
sappiamo ancora quale influenza possa aver avuto la contaminazione del seme sui processi di germinazione e
sullo sviluppo delle giovani plantule.
Diplodia pinea f. sp. cupressi (sin. Sphaeropsis sapinea f. sp. cupressi, Diplodia mutila; teleomorfo:
Botryosphaeria stewensii).
Recentemente i picnidi con relativi picnoconidi di questo pericoloso parassita, oltre che sulle zone cancerose
e sulle galbule, sono stati ritrovati anche su semi imbruniti di cipresso (C. sempervirens). Occorre evitare di
raccogliere semi dalle zone nelle quali è stata segnalata la malattia, della quale peraltro non conosciamo
esattamente la diffusione anche se sembra relegata alle zone centro meridionali della penisola. Poiché non
sono state fatte prove di concia dei semi, suggeriamo di eseguire gli stessi interventi consigliati contro S.
cardinale.
Phoma sp. e Cytospora sp.
Anche questi due fungilli sono ricordati come facenti parte della flora fungina dei semi del cipresso. Di essi
poco si conosce se non la capacità di causare danni su altre piante (Graniti, 1979).
Altri generi di funghi ubiquitari sono stati riscontrati sulla superficie dei semi di cipresso, ne citiamo solo
alcuni: Seimatosporium, Penicillium, Aspergillus, Alternaria, Epicoccum, Botrytis, ecc.
Malattie dei semenzali
Occorre premettere che gli habitat naturali del cipresso non favoriscono lo sviluppo delle malattie dei
semenzali. Queste malattie compaiono e divengono estremamente dannose solo quando i semenzali vengono
coltivati in vivaio (Turchetti e Panconesi, 2001). Questa è una regola valida non solo per il cipresso ma
anche per tutte le altre specie forestali, conifere e latifoglie. Ne deriva che occorre ricreare artificialmente, e
per ogni specie, le condizioni naturali ottimali sin dalla raccolta e germinazione del seme per assicurare alle
plantule un normale sviluppo.
Damping off
La moria dei semenzali o damping-off (Fig. 7), è causata da numerosi
agenti eziologici, per lo più di origine fungina, che sono comuni anche
ad altre specie forestali, sia latifoglie che conifere. Queste specie fungine
agiscono dove equilibrio e competizione risultano falsati e
contribuiscono a determinare un quadro patologico che appare
fortemente influenzato dalle condizioni Fig. 7 – Letto di semina con piantine
di C. sempervirens danneggiate da
microbiche e colturali che possono
damping off.
costituire un’aggravante di notevole rilievo.
31

Il damping off, la cui sintomatologia è inequivocabile, appare essere di gran lunga la “malattia” più dannosa
e complessa che possa colpire i giovani semenzali. Ciò è dovuto sia ai numerosi agenti eziologici che ne
entrano a far parte e che determinano il quadro patologico, sia alle interazioni che si possono instaurare fra i
vari fattori coinvolti. Non è compito nostro indagare in questa direzione, ma pensiamo sia essenziale riferire
che per ogni singola specie occorre ricreare, artificialmente, le condizioni naturali ottimali fino dalla raccolta,
conservazione e germinazione del seme per assicurare a questo e alle plantule uno sviluppo normale.
La moria può avvenire in pre-emergenza, prima che l’epicotile sia riuscito ad emergere dal terreno. In questo
caso gli attacchi parassitari sono favoriti da una cattiva raccolta e/o conservazione del seme. Talvolta può
essere una concia non ben eseguita che non è riuscita ad eliminare alcuni pericolosi patogeni presenti sui
tegumenti esterni del seme. Nello stadio erbaceo di post-emergenza, fase fenologica molto sensibile, la cui
durata varia da specie a specie, le piantine subiscono le perdite più gravi, succubi di agenti patogeni presenti
nel terreno e/o provenienti dal seme. Una volta che il fusticino della plantula lignifica le morie gradatamente
diminuiscono fino a cessare del tutto.
Alle conifere appartengono gran parte delle specie forestali che sono più sensibili al damping off o caduta dei
semenzali. Questa caduta è dovuta alla necrosi e collasso dei tessuti del colletto. Fra le conifere, le
cupressacee e fra queste il C. sempervirens sembrano possedere un maggiore grado di resistenza (Vaarta &
Crem; 1961, Magnani, 1975; Frisullo et al., 1984; Perrin & Sampangi, 1986; Troiani & Anselmi, 1997;
Turchetti e Panconesi, 2001).
Fra gli agenti eziologici che sono la causa di damping off sono stati individuati numerosi patogeni primari
quali Phytium sp., Fusarium sp., Rhizoctonia sp., Phytophthora sp. ecc. che in genere causano il marciume
delle radici e del colletto. Sono tuttavia presenti, a completare il quadro sintomatologico complessivo, anche
se in misura minore, funghi appartenenti ai generi Cylindrocarpon, Pestalotiopsis, Alternaria, Diplodia,
Botrytis, ecc. che conducono una eminente vita saprofitaria sui tessuti danneggiati o uccisi dagli agenti
primari.
Per ridurre al minimo i danni dovuti ai vari microrganismi che attaccano in vivaio, oltre ad una buona
raccolta e conservazione del seme, occorre che i semenzali siano situati su terreno di semina ben appropriato
in ambienti spaziosi e ben ventilati e che l’apporto idrico sia tenuto al minimo indispensabile e attentamente
regolato. Per limitare lo sviluppo di eventuali marciumi radicali, prima delle semine, oltre alla concia del
seme potrebbe essere necessaria una sterilizzazione del suolo che si ottiene fumigandolo o trattandolo con
una soluzione fungicida.
MALATTIE DELLE GIOVANI PIANTE
Vengono descritte in questo capitolo le principali malattie del cipresso (C. sempervirens), con riferimento a
quelle che si manifestano in vivaio dal momento in cui il fusto delle piantine ha raggiunto uno stadio legnoso
fino alla commercializzazione.
Phomopsis occulta (teleomorfo: Diaporthe eres)
La malattia colpisce le piante di tutte le età sulle quali causa il disseccamento degli apici vegetativi. Si
sviluppa e si diffonde in forma epidemica soprattutto quando la stagione primaverile risulta fredda, umida e
nebbiosa (Panconesi et al., 1999).
Le piante adulte subiscono disseccamenti diffusi degli apici vegetativi che talvolta
possono riguardare l’intera chioma. In primavera inoltrata e nella successiva estate
i processi infettivi in corso vengono bloccati dalla reazione della pianta e
solitamente non proseguono. Sui fusti delle piante adulte il processo infettivo non
completamente bloccato dalla reazione della pianta può dar luogo a cancri a
bersaglio (tipo Nectria sp.) che possono costituire un punto di debolezza
suscettibile di eventuali rotture.
Fig. 8 – Semenzali di C. sempervirens
gravemente danneggiati da attacchi
di P. occulta.
Sulle giovani piantine di vivaio, il processo necrotico circonda velocemente i
tessuti corticali del fusto determinando la morte e il disseccamento della parte
soprastante. Durante particolari annate la pericolosità del patogeno è tale che solo
alcune piantine possono sopravvivere in un letto di semina di migliaia di
individui (Fig. 8).
32

Fig. 9 – Conidi α e β di P. occulta.
In primavera, dalla superficie disseccata l’anno precedente emergono gli
organi di riproduzione agamica del parassita, i picnidi. Quesi emettono una
massa di picnoconidi ialini, che esposti all’aria si disidratano e assumono
una consistenza cornea. La massa delle picnospore è costituita da due tipi di
conidi (Fig. 9): la forma alfa (α) con spore ellissoidali, ialine, unicellulari,
biguttulate e leggermente appuntite di 8-10 µm di lunghezza, e la forma beta
(β) con spore unicellulari ialine molto allungate (filiformi), ricurve ad uncino
da un lato di 20-30 µm di lunghezza. I conidi α causano le infezioni primarie
da cui si origina una nuova e più numerosa serie di conidi che vanno a
causare le infezioni secondarie le quali determinano i danni più gravi.
La lotta consiste nell’eliminare tutti i rametti secchi dalle piante infette,
specialmente da quelle situate nei dintorni dei vivai; ciò deve essere fatto in
primavera quando i sintomi delle infezioni sono ben manifesti. Nelle zone con caratteristiche favorevoli allo
sviluppo della malattia, le piccole piante possono essere trattate preventivamente con prodotti chimici a base
di Carbendazim, questi risultano utili anche contro altre malattie dei semenzali o delle giovani piantine quali
S. cardinale, Diplodia pinea f.sp. cupressi, ecc.
Comunque, la composizione del letto di semina, l’esposizione, la densità, l’aereazione, l’insolazione,
l’irrigazione, concimazione, ecc. sono tutte caratteristiche che se ben regolate consentono di limitare al
massimo la diffusione della malattia e ridurre l’entità del danno economico.
Seiridium cardinale
Come le galbule e il seme anche le giovani piantine possono essere colpite dal S. cardinale (Fig. 10). Dal
momento della lignificazione, gli attacchi si possono manifestare su individui di
tutte le età, sia allevate in pieno campo che in contenitore e pronte per la
commercializzazione. I conidi del parassita penetrano nei tessuti corticali delle
piante attraverso delle piccole ferite, che possono essere causate da repentini
abbassamenti di temperatura, insetti, eccesso di crescita, ecc.. La diffusione
della malattia è dovuta principalmente a semine troppo fitte, scarsa
ventilazione, eccesso di umidità, eccesso di concimazioni (in particolare quelle
azotate). Il fusto o i rametti delle giovani piantine vengono velocemente
circondati dallo sviluppo del processo necrotico e portati a morte. Sui tessuti
uccisi dal patogeno si sviluppano gli acervuli che producono gli organi di
diffusione del fungo (conidi). Mentre in natura gli acervuli si formano solo in
primavera e talvolta anche in autunno, in vivaio le continue irrigazioni e
concimazioni consentono una maggiore e più prolungata produzione, ciò
comporta uno sviluppo epidemico della malattia molto accentuato.
Particolarmente attivi in questo contesto, data la relativa consistenza dei tessuti,
Fig. 10 – Giovane fusto di cipresso
con cancro di S. cardinale
decorticato per evidenziare lo
sviluppo del processo necrotico.
sono i coleotteri scolitidi del genere Phloeosinus che sono capaci di trasmettere
la malattia trasferendosi dalle piante ammalate a quelle sane. (Covassi et al.,
1975). Nel contesto vivaistico, dato il notevole flusso di esportazione del C.
sempervirens, la presenza di piante malate è particolarmente pericolosa in
quanto consente la diffusione della malattia in altre zone del territorio.
La produzione vivaistica deve essere salvaguardata per cui occorre mettere in
atto tutti gli accorgimenti di lotta che si ritengono necessari per assicurare lo stato sanitario dei cipressi. Per
prima cosa occorre individuare e distruggere con il fuoco tutte le piantine infette. Durante il loro soggiorno
in vivaio le piante devono essere trattate con prodotti benzimidazolici (Carbendazim, Tiofanate-metil); si
consigliano tre irrorazioni annue, due in primavera e una in autunno. All’epoca della commercializzazione
deve essere eseguito un attento controllo, pianta per pianta, per accertare la presenza di individui infetti,
successivamente si esegue un trattamento chimico per bloccare eventuali infezioni incipienti. Questo regime
di trattamenti durante la permanenza in vivaio dovrebbe garantire l’esportazione di cipressi quasi
sicuramente sani. E’ ovvio che questo tipo di intervento è possibile solo nei vivai in quanto le piante sono
33

piccole, poste in appezzamenti uniformi e c’è disponibilità di mezzi e mano d’opera per cui i costi incidono
in modo relativo sulla produzione.
Botryodiplodia theobromae
Oltre ai disseccamenti sulla chioma ed al cancro sui rami delle piante adulte, questo parassita può causare
gravi danni e la morte dei semenzali di un anno le cui radici appaiono imbrunite. Con l’appassimento ed il
disseccamento le piantine assumono un colore marrone (tannico) mentre l’apice si ripiega ed assume una
forma ad uncino. Nella corteccia uccisa dal patogeno si sviluppano dei tessuti stromatici contenenti le
fruttificazioni picnidiche del parassita che a maturità producono dei conidi bruni ovoidali e bicellulari molto
simili a quelli della Diplodia pinea f. sp. cupressi. I conidi che spesso fuoriescono dal picnidio sono
immaturi, ovoidali, ialini ed unicellulari. La malattia segnalata in Israele (Bruck et al., 1990), va ad
aggravare la situazione sanitaria del cipresso già prostrato dagli attacchi di altri pericolosi parassiti fungini.
Non siamo a conoscenza di mezzi specifici di lotta per cui pensiamo sia utile suggerire l’eliminazione delle
piante infette ed un trattamento preventivo con benzimidazolici.
Diplodia pinea f. sp. cupressi (sin. Sphaeropsis sapinea f. sp. cupressi, Diplodia mutila; teleomorfo:
Botryosphaeria stewensii).
Questa malattia, già presente in Israele, Marocco ed in Grecia (Solel et al., 1987; Frisullo e Graniti, 1990;
Xenopoulos e Tsopelas, 2000), è stata segnalata per la prima volta in Italia nel 1997 su piante giovani e
adulte di C. sempervirens e C. arizonica (Frisullo et al,. 1997). Il patogeno, anche se non segnalato
ufficialmente, è presente anche in altre regioni dell’Italia centrale e, probabilmente, meridionale.
Il parassita si presenta con cancri corticali molto stretti ed allungati, lunghi da pochi cm ad un metro, con
evidenti bordi cicatriziali che dalla fessurazione fanno intravedere il sottostante legno. Talvolta l’evoluzione
del processo infettivo, accompagnato dalla fuoriuscita di resina, porta al disseccamento dei rami e della
pianta. I sintomi esterni sono simili al S. cardinale per cui occorre una buona conoscenza delle due malattie
per poterli distinguere. Talvolta i due parassiti si possono riscontrare sulla
stessa pianta o addirittura sullo stesso cancro e ciò può complicare, non
poco, la diagnosi. Uno dei caratteri distintivi fra i due patogeni si osserva
tagliando trasversalmente un ramo all’altezza del cancro. Nella S. sapinea, il
settore triangolare di cilindro legnoso posto sotto la corteccia infetta appare
leggermente imbrunito. Un altro carattere distintivo è che lungo il tronco i
cancri causati da D. pinea f. sp. cupressi hanno una progressione
eminentemente di tipo verticale dovuto alla forte reazione della pianta; per
questo motivo occorre molto tempo e la somma di più infezioni per
conseguire il disseccamento. I giovani rami, di minor diametro, possono
Fig. 11 - Picnidi di Diplodia pinea f. sp.
cupressi visti in sezione al microscopio
ottico.
essere aggirati e uccisi molto rapidamente.
Sopra la superficie esterna della corteccia,
nella zona interessata dal cancro, sono ben
visibili i picnidi (350-400 mµ), organi di
riproduzione agamica (anamorfa) del
parassita il cui corto collo fuoriesce
leggermente dall’epidermide scaricando
all’esterno la massa conidica (Fig. 11). I
picnoconidi prodotti sono oblunghi, ialini e unicellulari quando immaturi,
marroni, bicellulari e con parete spessa a maturazione raggiunta (Fig. 12).
Un’altra delle caratteristiche di questo parassita e quella di incrementare il
suo sviluppo nelle piante stressate, questa è una caratteristica
particolarmente pericolosa, specialmente nei vivai dove le piante più grandi
fortemente indebolite dai trapianti in contenitore possono subire gravissimi
danni.
34
Fig. 12 – Conidi maturi (settati) e
immaturi di Diplodia pinea f. sp.
cupressi.

Per quanto riguarda la lotta si consiglia l’eliminazione di tutte le piante infette e l’esecuzione di un trattamento
con benzimidazolici prima di procedere al trapianto.
La presenza di questa malattia comporta l’esecuzione di una ulteriore selezione fra i cloni di cipresso già
selezionati per la resistenza al S. cardinale. Secondo alcune prove eseguite da ricercatori greci, sembra che i
cloni di cipresso (C. sempervirens) resistenti al S. cardinale, siano, in qualche misura, più resistenti anche
alla D. pinea f. sp. cupressi.
Phytophthora cinnamomi
È una malattia che non si sviluppa quasi mai sulle piante adulte impiegate a scopo ornamentale ed ancor
meno nei boschi (cipressete). In vivaio, le giovani piante di cipresso allevate in contenitore o in piena terra
possono andare soggette a questo temibile parassita fungino (Oomicete, Peronosporales). I primi sintomi
della malattia si avvertono nei mesi primaverili e subiscono una rapida
evoluzione durante la tarda primavera-estate. Inizialmente si osserva una
progressiva attenuazione della colorazione verde scura del fogliame,
spesso localizzata in un lato della
chioma che successivamente ingiallisce
fino al completo disseccamento al quale
fa seguito la morte della pianta (Fig.13).
Nelle piante con tale tipo di
Fig. 13. – Piante di C. sempervirens in vaso
uccise da Phytophthora cinnamomi.
sintomatologia l’apparato radicale si
presenta fortemente ridotto e in gran
parte necrotizzato (Fig. 14). Un’analisi
effettuata nella zona del colletto
evidenzia dei marcati imbrunimenti
della corteccia che si estendono in profondità fino a penetrare nei tessuti
legnosi sottostanti.
In un vivaio del pistoiese, dove alcuni anni or sono si sviluppò un focolaio
epidemico della malattia, abbiamo potuto osservare che maggiori danni
furono riportati su specie di Chamaecyparis, mentre il cipresso, contaminato
solo successivamente, subì danni notevolmente inferiori.
Per quanto riguarda la lotta, solo i trattamenti chimici hanno dimostrato di
avere una certa efficacia. Questi devono essere opportunamente cadenzati
durante il periodo primaverile-estivo. I prodotti più efficaci si sono
dimostrati essere: etridiazole, fosetyl-Al, furalaxyl e metalaxyl. Questi
Fig. 14 – Necrosi dell’apparato radicale
di un cipresso per attacchi di P.
cinnamomi.
prodotti vanno distribuiti in soluzione acquosa al contenitore o alla base della pianta. Per un miglior esito
della lotta occorre che i principi attivi usati in questi trattamenti siano alternati, ciò per evitare l’insorgenza di
ceppi resistenti e/o mutageni. I trattamenti devono essere accompagnati da una serie di misure di ordine
preventivo come eliminare le piante infette, evitare l’uso dei terricciati di risulta, regimare e controllare le
acque di scorrimento e di irrigazione che potrebbero contenere i propaguli del parassita (zoospore). Ciò è
particolarmente importante quando si fa uso di acque reflue e quando la vasetteria è posta su nylon.
Armillaria mellea
Questo Basidiomicete è uno dei funghi più distruttivi e polifagi che si conoscono e fra le specie colpite si
annovera anche il C. sempervirens. Gli attacchi più frequenti a questa conifera si manifestano sulle piante
adulte, specialmente quelle delle siepi e dei giardini (prati) che sono sottoposte a regimi idrici intollerabili
per il cipresso. In questi contesti dove le piante vivono a stretto contatto fra di loro (siepi, filari) risulta più
facile la contaminazione e la propagazione della malattia che avviene per mezzo delle rizomorfe. Le
rizomorfe sono dei cordoni di ife, simili a delle radicicole, che si sviluppano nel terreno passando da un
apparato radicale ad un altro. Sebbene la presenza di Armillaria sulle giovani piante sia piuttosto rara, alcuni
anni or sono, nel vivaio “Il Campino” (Siena), è stato osservato che la chioma di alcune piante di cipresso
dell’altezza di circa 2 m, poste in vaso in attesa di piantagione, ingialliva improvvisamente. All’ingiallimento
35

Fig. 15 - Feltro miceliale
bianco alla base e sulle radici
di una pianta infetta da A.
mellea.
della chioma faceva
seguito il disseccamento
e la morte delle piante.
Da un’analisi del
colletto e dell’apparato
radicale risultava evidente la presenza di un feltro
miceliale biancastro sottocorticale dal piacevole
odore di fungo, riferibile ad Armillaria mellea
(Fig. 15 e 16). Probabilmente il parassita si è
insediato sui tessuti radicali della pianta
Fig. 16 – Carpofori di A. mellea.
indebolita in seguito alle operazioni di trapianto. Ovviamente il parassita era già
presente a livello saprofitario sui residui legnosi del terriccio usato per l’invasatura.
Ciò ci suggerisce, come per la Phytophthora, di evitare il riciclaggio dei terricciati
senza averli prima sterilizzati.
È regola fondamentale che tutte le piante con i primi sintomi di ingiallimento della chioma siano
immediatamente allontanate e distrutte insieme al terriccio infetto.
Pestalotiopsis funerea
Generalmente questa specie fungina si comporta come saprofita o debole parassita attaccando le foglie o i
rametti erbacei del cipresso dove può causare danni molto limitati o piccoli disseccamenti di organi ancora
allo stato erbaceo (Fig. 17). In alcuni casi, abbiamo trovato come questa specie possa convivere a margine o
sui tessuti uccisi dal S. cardinale o altri parassiti fungini del cipresso. Talvolta
sembra che alcuni ceppi di questa specie siano dotati di una maggiore aggressività
per cui possono incrementare la loro dannosità su piante stressate da avverse
condizioni ambientali o dai trapianti (come accade spesso in vivaio). Sono le Thuje
e talvolta anche il cipresso (C. sempervirens) a risentire con maggiore frequenza e
dannosità dei suoi attacchi (Panconesi et al., 1995). Alcuni autori ritengono che
questo micete possa causare dei veri e propri cancri, altri pensano che abbia la
possibilità di vivere a livello endofitico nei tessuti del cipresso per poi uscire
quando le condizioni fisiologiche della pianta lo consentono. In effetti è stato
osservato come lo sviluppo dei cancri sia fortemente incrementato nelle piante
sottoposte a stress idrico (Madar et al., 1991).
L’eliminazione dei rametti secchi e delle piante ammalate, sui quali si sviluppano
gli organi di riproduzione del parassita, acervuli e conidi, (vedi sopra, galbule), è
una prassi necessaria e consolidata per migliorare la situazione sanitaria
Fig. 17 - Foglie e giovani rametti
disseccati e con fruttificazioni di P.
funerea.
nell’ambito del vivaio. Comunque, per non mettere a rischio la produzione
vivaistica si consiglia, prima dei trapianti in vaso o in pieno campo, di eseguire dei
trattamenti con ossicloruro di rame che può essere usato in miscela con dei
benzimidazolici per poter intervenire contemporaneamente anche contro altri e più
pericolosi patogeni quali S. cardinale e Diplodia sp., ecc.
Botrytis cinerea (teleomorfo = Botryotinia fuckeliana)
È un fungo molto comune e si trova con una certa frequenza anche sulle foglie e sui rametti erbacei dei
cipressi, specialmente se stressati o danneggiati dalle basse temperature. Sopra i tessuti uccisi si possono
riscontrare con una certa frequenza le fruttificazioni (conidiofori e conidi) di questo debole parassita. La sua
presenza, non eccessivamente dannosa, può incrementarsi sui getti erbacei delle piantine situate nelle zone
più umide ed ombreggiate del vivaio. Sono sufficienti misure agronomiche di carattere generale per tenere
sotto controllo la presenza di questa specie fungina.
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Fusarium compactum
È stato segnalato per la prima volta in Israele alcuni anni or sono quale causa della morte di giovani piante di
C. sempervirens in vivaio (Madar et al., 1996). Il fungo causa cancri allungati e depressi sulla corteccia delle
piante che appare imbrunita. L’infezione ha uno sviluppo maggiore sui cipressi indeboliti dalle operazioni di
trapianto o dallo stress idrico. Si consiglia di eliminare immediatamente le piante infette.
Caliciopsis nigra
Colpisce le giovani piantine di ginepro e di cipresso (C. sempervirens) sulle quali causa la comparsa di
piccoli tumori (0,5-6,0 cm di diametro) con la supercie screpolata sulla quale si formano le strutture
riproduttive del fungo (peritece e picnidi). Non è una malattia pericolosa ma può causare il disseccamento di
giovani rametti (Intini, 1980). Se le infezioni si verificano in fase giovanile possono alterare la struttura del
fusto diminuendo il valore commerciale della pianta.
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PREMESSA
DANNOSITÀ DI INSETTI ED ACARI ALLA PRODUZIONE VIVAISTICA
DEL CIPRESSO COMUNE
C. Parrini
Collaboratore esterno dell’Istituto per la Protezione delle Piante
Negli ultimi decenni le preoccupazioni per le sorti del cipresso comune (Cupressus sempervirens)
suscitate dal cancro corticale, patologia fungina altamente distruttiva, hanno inevitabilmente relegato in
secondo piano altre avversità cui la preziosa resinosa da qualche tempo deve far fronte, quelle sostenute da
parassiti animali. Occasioni per constatare la accresciuta vulnerabilità del cipresso comune anche a
fitoparassiti del regno animale non sono comunque mancate. Basti pensare all’afide del cipresso che è
riuscito a proporsi all’attenzione generale in virtù delle sue vistose e diffuse manifestazioni di danno alle
chiome, più volte lamentate.
In un recente studio (Roques e Battisti, 1999) si riferisce di 60 diverse specie di artropodi
fitoparassiti in grado di procurare danni al cipresso, a vario livello. Vi sono compresi i parassiti animali dei
coni (galbule) e dei semi, i fillofagi che si evolvono a spese del fogliame, gli xilofagi corticicoli o corticolignicoli
che si nutrono della corteccia o del legno del cipresso, i succhiatori di linfa o liquidi cellulari
(fitomizi). Nel novero anche le entità reperibili su legno di cipresso morto o in opera. Distinti altresì fra
quanti sono in grado di parassitizzare piante in possesso di normale vigore vegetativo e quanti sono soliti
attendere una attenuata reattività dei cipressi a fisiologia depressa per portare a compimento i propri cicli
vitali, altrimenti negato. Opportunamente evidenziati inoltre quei parassiti animali capaci anche di dannosità
indiretta, ancor più temibile, quando si rivelino atti a veicolare pericolosi patogeni del cipresso, in primis il
già ricordato Seiridium cardinale, il temuto agente del cancro corticale.
Sono oggetto della presente nota le problematiche fitosanitarie legate a sviluppi di insetti ed acari sul
cipresso comune nel corso della sua permanenza in vivaio, precedute da un rapido cenno a quanto, per effetto
degli stessi parassiti, può ostacolare il buon esito delle semine.
Nella produzione vivaistica si assottiglia sensibilmente lo stuolo dei parassiti animali censiti quali
nemici del cipresso. Vengono, fra l’altro, a non essere rappresentati – o a rarefarsi alquanto – i numerosi
fitofagi a comportamento secondario, reperibili sugli esemplari adulti o vetusti dei popolamenti ornamentali
o forestali del cipresso debilitati da cause avverse, biotiche o abiotiche, o in fase di avanzato deperimento. Di
norma non sono queste le condizioni vegetative proprie della produzione vivaistica, soggetta ad attenzioni
colturali che più spesso si rivelano eccessive, al punto da esaltare l’aggressività di alcuni fitofagi, quelli che –
segnatamente i fitomizi- sanno incrementare il proprio potenziale biotico su piante in esubero vegetativo.
Per quanto ridotti in numero, fra i parassiti animali che sono soliti fare la loro comparsa negli
impianti vivaistici del cipresso comune se ne individuano alcuni che richiedono un costante controllo da
parte del produttore. Il loro incontrastato sviluppo può essere causa di arresti vegetativi, rivelarsi
pregiudizievole per la vitalità dei cipressi in coltivazione o produrre comunque danni alle chiome a tal punto
vistosi da decretarne, in pratica, la incommerciabilità.
Quanto di seguito riportato riflette le esperienze maturate nel vasto comprensorio pistoiese ove le
cupressacee si ritagliano una importante fetta della locale produzione vivaistica (Figg. 1-4).
FITOFAGI DANNOSI A CONI E SEMI DI CIPRESSO
È noto come anche i coni (galbule) e i semi di cipresso vadano soggetti agli attacchi di parassiti
animali e vegetali. In altra parte del manuale si elencano i patogeni che possono svilupparsi sulle galbule. In
questa nota ci limitiamo alla citazione di alcuni artropodi fitofagi (insetti ed acari) che esercitano la loro
attività trofica a spese di coni e semi del cipresso comune. I più importanti vengono considerati (Roques e
Battisti, 1999):
- il Lepidottero tortricide Pseudococcyx tessulatana, responsabile allo stadio larvale, nel corso delle sue
2-3 generazioni annuali, di profondi guasti ai coni (fino a provocarne la caduta) e ai semi che subiscono
gravi erosioni;
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- il minuscolo acaro eriofide Trisetacus juniperinus, in grado con le sue punture di alimentazione di
pregiudicare la maturazione dei coni. Responsabile altresì di vistose manifestazioni di danno anche a
carico della vegetazione dei giovani cipressi in crescita, come avremo modo di esplicitare più avanti.
Figg. 1-2-3-4 – Aspetti della produzione vivaistica di Cupressus sempervirens.
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A questi si affiancano altri parassiti animali di più limitata importanza: Orsillus maculatus e O. depressus,
impegnati, su coni ancora verdi, ad impedire la maturazione dei semi; l’Imenottero torymide Megastigmus
watchli capace, tramite il suo ovopositore, di deporre uova nei semi di cui si nutriranno le larve, ecc..
Maggiori dettagli su morfologia, biologia e dannosità degli artropodi sopraelencati (e di altri) sono
state resi in recenti pubblicazioni (Guido et al., 1995; Roques e Battisti, 1999) e a queste si rimanda.
L’attività dei predetti fitofagi impedisce la maturazione dei coni o danneggia i semi annullandone o
deprimendone la capacità germinativa e mancate e stentate nascite fanno inevitabilmente seguito a semine
effettuate con materiale deteriorato.
FITOFAGI DANNOSI AL CIPRESSO IN CRESCITA IN VIVAIO
In ordine decrescente di importanza vengono presentati gli insetti ed acari che procurano i più
frequenti danni al cipresso comune in vivaio, radicato in piena terra o allevato in contenitore, capaci di
ostacolare gli attesi sviluppi delle piante, di azzerarne i pregi ornamentali, di pregiudicarne la vitalità. Sarà
fatto cenno anche ad altri parassiti del cipresso che rivestono comunque importanza secondaria, per
dannosità modesta e/o saltuarietà della loro comparsa. Compresi fra questi anche fitofagi che, temibili in
passato, hanno ai nostri giorni drasticamente ridotto la loro pericolosità.
Afide del cipresso
L’afide corticicolo Cinara cupressi si è posto all’attenzione dei vivaisti toscani nell’ultimo scorcio
degli anni ’70 allorquando una sua eccezionale e imprevista pullulazione nel triennio 1976-78 apportò gravi
distruzioni sulle chiome dei popolamenti ornamentali del cipresso comune e di altre specie esotiche
dell’intera penisola, a partire dalle nostre regioni meridionali. L’afide descritto sin dagli inizi del secolo
scorso, per più decenni mai si era proposto come seria avversità del cipresso.
La produzione vivaistica, come del resto prevedibile, non riuscì a sottrarsi alle conseguenze di questa
abnorme esplosione delle popolazioni della C. cipressi e gravi danni si registrarono in Toscana anche sui
giovani cipressi accolti sulle superfici a vivaio, sotto forma di diffusi seccumi di foglie e rametti, associati a
vistosa fumaggine, che intristivano ampi settori delle chiome sempreverdi del cipresso comune e quelle
argentate dei cipressi dell’Arizona. Anche su varietà ornamentali di C. macrocarpa non fu difficile accertare
la malefatte del parassita. Il tutto in risposta a sviluppi della Cinara in folte colonie avvolgenti a manicotto i
rametti dei cipressi, sottoposti a cospicua sottrazione di linfa e all’azione tossica di sostanze salivari immesse
nei tessuti vegetali nel corso della alimentazione dell’afide tramite il suo apparato boccale pungente-
succhiante. Risale a quel periodo (Parrini, 1979) l’invito rivolto ai produttori vivaisti a voler considerare
l’afide del cipresso avversità che si poneva su livelli di pericolosità identici a quelli espressi dall’agente
fungino del cancro corticale, patologia che in quegli anni mortificava la rinomata produzione vivaistica
toscana della resinosa.
Il fitomizo sin da quando si è reso responsabile di vistosa dannosità ai popolamenti del cipresso
comune sul territorio è stato oggetto in Toscana di approfondite ricerche sulla sua biologia ed etologia
(Binazzi 1978, 1997). Sono state chiarite le sue modalità di svernamento, è stato definito il numero di
generazioni (10-11) svolte annualmente delle virginopare attere e dalle alate, sono stati individuati i periodi
di sua più affollata presenza nell’arco dell’anno (quello primaverile e autunnale) inframezzati da una stasi
estiva dopo la comparsa delle forme alate e la dispersione delle colonie. Individuati anche come fattori di
mortalità naturale le minime termiche invernali e gli eccessi termici estivi.
Sui cipressi in vivaio C. cipressi è ormai solita fare frequenti comparse, pur con diversa densità di
popolazione e oggigiorno costituisce una costante minaccia (Figg. 5-6-7-8-9). Di tanto il produttore vivaista
sembra averne piena consapevolezza. Peraltro le presenza dell’afide in ambiente vivaistico viene assicurata
dalla consistente produzione di cipressi esotici che costituiscono le sue matrici vegetali preferite. Al loro
sempre più diffuso impiego ornamentale sul territorio è stata dagli entomologi attribuita responsabilità certa
nelle esplosioni delle popolazioni della Cinara.
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Figg. 5-6-7 - Esiti dell’infestazione dell’afide Cinara cupressi su cipresso comune in vivaio.
Fig. 8 - Colonia di Cinara cupressi
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Fig. 9 – Chioma di cipresso con disseccamenti vegetativi
e fumaggine provocati dall’afide.

Temibili sono in particolare gli sviluppi primaverili dell’infestazione che possono preannunciarsi già
in fine inverno quando andamenti climatici del periodo invernale si rivelino idonei a una pronta ripresa della
biologia dell’afide. Non sono tuttavia mancate, in questi anni occasioni per accertare anche una dannosità in
vivaio delle generazioni autunnali della Cinara (Parrini, 2000) che riesce, in detto periodo, ad incrementare la
sua popolazione stimolata dai ritmi delle ripresa vegetativa del cipresso dopo la stasi estiva. Gli esiti degli
sviluppi autunnali dell’infestazione si renderanno visibili, in forma di scolorimenti fogliari seguiti da
disseccamenti, nell’ultimo scorcio invernale, talvolta all’inizio della primavera, trascorso il periodo più
freddo che ritarda il manifestarsi dei danni sulle chiome.
Acaro eriofide
Una importanza sempre maggiore è riuscito ad assumere in questi ultimi anni l’acaro eriofide
Trisetacus juniperinus. La sua crescente aggressività verso i giovani cipressi lo colloca attualmente, a buon
diritto, fra le principali avversità della resinosa che cresce in vivaio e dei giovani impianti ornamentali e
giovani cipressete. I cipressi in vivaio, di norma sottoposti a forzatura colturale, si rivelano particolarmente
idonei a ospitare consistenti popolazioni dell’ acaro.
Segnalato per la prima volta in Italia pochi decenni orsono in un rimboschimento di C. sempervirens
in area pugliese (Nuzzaci e Monaco, 1977) non ha tardato a farsi notare anche nella vivaistica toscana. Negli
anni ’80 già si facevano frequenti i rinvenimenti dell’eriofide sui giovani cipressi dei vivai della Toscana e
dell’Umbria (Castagnoli e Simoni, 1998).
Gli eriofidi, dal corpo vermiforme di colore chiaro, provvisti di due paia di zampe e di minute
dimensioni (non visibili ad occhio nudo), tramite i loro apparati boccali si nutrono dei contenuti cellulari e
provocano sui diversi ospiti vegetali manifestazioni di danno differenziate: ipertrofia di gemme o loro
Figg. 10-11 – Alterazioni vegetative provocate dall’eriofide del cipresso (Trisetacus juniperinus).
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devitalizzazione con formazione di germogli soprannumerari, aborto e caduta di fiori, rugginosità di foglie e
frutti, bollosità, distorsioni e arricciamenti fogliari, ecc..
T. juniperinus, che è capace di colonizzare anche Juniperus spp., Cedrus spp. Chamaecyparis spp.,
evidenzia il suo attacco prevalentemente nelle parti superiori delle chiome del cipresso comune, provocando
alterazioni vegetative quali ingrossamento, imbrunimento o disseccamento di gemme, vistose deformazioni
di apici vegetativi o loro disseccamento, proliferazione di gemme e conseguenti accestimenti vegetativi. È
stata accertata una notevole differenza di suscettibilità all’attacco dell’eriofide fra cloni diversi di cipresso.
Come già ricordato anche i coni subiscono deformazioni e disseccamenti e non giungono a maturare i semi.I
giovani cipressi che devono sopportare una folta popolazione dell’eiofide accusano marcati arresti vegetativi
ed esibiscono chiome vistosamente alterate nelle loro parti superiori, di aspetto cespuglioso, disordinato,
affastellato (Figg.10-11). Il valore estetico dei cipressi pesantemente parassitizzati si riduce notevolmente.
Sfuggono alla dannosità dell’eriofide i cipressi adulti sui quali il fitofago non è più capace di prodursi in
manifestazioni di danno di una qualche entità.
Sono stati definitivamente chiariti importanti aspetti della biologia e modalità di infestazione dell’eriofide
(Castagnoli e Simoni, 1998). In sintesi: lo svernamento è sostenuto da tutti gli stadi di sviluppo (uovo, ninfa e
adulto), a conferma che neppure in detto periodo viene ad interrompersi la sua attività riproduttiva; la popolazione
dell’eriofide si fa più folta in due distinti periodi dell’anno (aprile-maggio e autunno), un sua minore presenza si
registra in piena estate ed inverno e comunque in ogni periodo dell’anno sono reperibili tutti gli stadi evolutivi del
fitofago (uova, ninfe e adulti maschi e femmine); vive pressoché esclusivamente all’interno delle gemme,
preferibilmente quelle apicali come dimostra una sempre più ridotta presenza dell’eriofide quanto più ci si
allontana dall’apice dei rametti.
Cocciniglie
Sul cipresso si evolvono anche alcune cocciniglie. Il Diaspidide Carulaspis carueli, a distribuzione
geografica circummediterranea, è ritenuta la principale cocciniglia del cipresso comune ed è stata oggetto, in
Toscana, di approfonditi studi morfo-biologici (Baccetti,1960). Si rende visibile sul fogliame e galbule di
cipresso e forti infestazioni riescono a deprimere visibilmente lo sviluppo vegetativo delle piante ospiti. Si
rinviene anche su altre specie di cipresso e su cupressacee dei generi Juniperus, Chamaecyparis, Thuja, ecc.
Le femmine adulte presentano follicoli biancastri e subrotondeggianti con esuvie eccentriche di
colore giallastro, delle dimensioni di 1-2 mm e nei microclimi più caldi può svolgere sino a due generazioni
annuali, con presenza di neanidi in maggio e agosto-settembre. Lo svernamento è sostenuto da femmine
adulte fecondate. È conosciuto anche il maschio. Ha efficaci nemici naturali: predatori (Coleotteri
coccinellidi e acari fitoscidi) e parassitoidi (Imenotteri afelinidi). A questi si riconoscono concrete capacità di
contenimento della dannosità del Diaspino.
La cocciniglia è capace di colonizzare giovani cipressi così come esemplari adulti e vetusti. In
passato sono stati segnalati suoi dannosi sviluppi anche nelle coltivazioni di cipresso in vivaio (Baccetti,
1960). In realtà nell’ambiente vivaistico da noi frequentato abbiamo avuto rare occasioni di rilevare piante di
cipresso comune pesantemente attaccate da C. carueli. La breve permanenza della resinosa in vivaio
impedisce, di norma, alla cocciniglia di prodursi in manifestazioni di attacco vistose e intense,
verosimilmente in virtù anche dell’azione di freno svolta dai suoi nemici naturali. Più spesso la sua rarefatta
presenza sulla giovane produzione in vivaio si svela solo ad occhi particolarmente attenti e di solito sfugge
ad interventi anticoccidici. Occasionalmente il cipresso può ospitare anche la congenere C. juniperi che è
solita volgere la sua attenzione, preferibilmente, verso Juniperus spp. Morfologicamente affine alla prima se
ne distingue per presentare un’unica generazione annuale.
Riteniamo che maggiori attenzioni debbano prestarsi a prevenire sviluppi indesiderati sui giovani
cipressi che sostano in vivaio di altra cocciniglia, lo pseudococcide Planococcus vovae. La sua prima
segnalazione in Italia – sotto altra denominazione – risale al 1981, reperito in Puglia su C. macrocarpa
(Roberti e Tranfaglia, 1981). Da noi è stata occasionalmente rinvenuto nel 1986 su cipressi comuni di
provenienza estera, introdotti nel pistoiese dopo le eccezionali minime termiche del gennaio 1985 che in
pratica avevano azzerato la locale produzione cipressicola. In seguito, nello stesso ambiente, non si sono fatti
rari i rinvenimenti di giovani cipressi infestati dallo pseudococcide.
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P. vovae vive a spese di specie diverse di Juniperus (preferibilmente), di Cupressus, di Thuja e su
Chamaecyparis lawsoniana e Cupressocyparis leylandii. Notizie bioecologiche della cocciniglia, a seguito di
indagini svolte in Toscana, sono state fornite nel recente passato (Francardi e Covassi, 1992), di seguito
sintetizzarte. La femmina adulta ha corpo ovale ( mm 2,4×1,3) di colore rossastro, ricoperto da un sottile
strato di candida pruina cerosa (il maschio ha forma diversa e dimensioni più ridotte). Le femmine ovigere si
provvedono di un candido ovisacco cotonoso lungo fino ad oltre 4 mm. La cocciniglia sverna allo stadio di
neanide e completa due generazioni nel corso dell’anno, con prima comparsa di neanidi in fine giugno-luglio
e in settembre quelle che sverneranno.
Grazie all’elevato numero di uova deposte (mediamente 280, fino ad oltre 400) la cocciniglia è
capace di esibirsi in cospicue colonie su fogliame e rametti delle piante nutrici. Non si sono mostrati capaci
di efficace azione di contenimento i nemici naturali della cocciniglia individuati. Sebbene in vivaio P. vovae
si faccia notare solo su singole piante e mai diffusa a interi lotti di cipresso, pur tuttavia i giovani soggetti sui
quali lo pseudococcide ha potuto svilupparsi indisturbato finiscono per esibire danni irrimediabili, estesi a
settori della chioma diversamente ampi, indelebilmente deturpati da vistosi e inamovibili ammassi di
Fig. 12 – Gli sviluppi di Planococcus vovae sulle chiome del
cipresso comune lasciano tracce indelebili.
Fig. 13 – Rametto di cipresso comune con forme
giovanili della cocciniglia.
cocciniglie in vari stadi di sviluppo, loro residui (sostanze cerose e ovisacchi), cementati da melata e fumaggine
(Figg. 12-13). Al punto che i cipressi pesantemente colpiti hanno unica destinazione nella discarica aziendale.
Di altre cocciniglie segnalate sul cipresso non riteniamo opportuna la citazione, preso atto della
inconsistente dannosità da loro manifestata in vivaio.
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ALTRI FITOFAGI DI IMPORTANZA SECONDARIA
È dato osservare, talvolta, anche sulle chiome dei cipressi in vivaio sporadici disseccamenti di
rametti (Fig. 14) provocati dai punteruoli del cipresso (Phloeosinus aubei e, meno frequentemente, P.
thujae). Il minuscolo Coleottero scolitide in una precisa
fase del suo ciclo biologico, quella della maturazione
sessuale, è solito erodere piccoli rametti di Cupressus
spp. e di altre cupressacee ben vegetanti, dopo essere
sciamato da cipressi deperienti e seccaginosi ove, come
impostogli dalla sua natura di fitofago secondario, ha
luogo la fase di riproduzione. La dannosità diretta dello
scolitide appare alquanto modesta sui cipressi in vivaio,
considerata anche la saltuarietà delle sue comparse,
legate comunque alla presenza, in prossimità del vivaio
o al suo interno, di cipressi adulti con chiome devastate
da perdite legnose, idonee a richiamare il punteruolo alla
riproduzione. Più temibile una sua dannosità indiretta,
Fig.14 - Rametti di cipresso disseccati a seguito di erosioni
provocate dal Fleosino in fase di maturazione sessuale.
essendo state da tempo accertate sue responsabilità nella
trasmissione dell’agente fungino del cancro corticale
(Covassi et al., 1975). Ad evitare pericoli di contagio
provocato dal Fleosino sono sufficienti intuibili misure di prevenzione cui accenneremo più avanti trattando
dei possibili interventi di difesa a protezione della produzione vivaistica del cipresso.
Alla dannosità di Lampra festiva sfugge durante la permanenza in vivaio il cipresso comune che pur si
annovera fra gli ospiti del Buprestide (Covassi et al., 1998). A fronte di una massiccia diffusione dello xilofago
nella vivaistica toscana, quale quella registrata in anni di recente trascorsi – a spese, in particolare, di Cupressacee
molto appetite quali alcune varietà di Thuja occidentalis (“Atrovirens” e “Smaragd”) e di Juniperus virginiana
(“Skyrocket”) assai raramente – e comunque sempre su cipressi in sofferenza per cause le più varie – siamo
riusciti a documentare una sua presenza negli impianti di cipresso comune, anche quando contigui ad altre
resinose pesantemente infestate.
Anche il cerambicide Semanotus russicus è dato talvolta di potere osservare in attività su esemplari di
cipresso di grosse dimensioni costretti a vivere in contenitore, malvegetanti ( e su altre cupressacee in analoghe
condizioni). Le sue profonde escavazioni all’interno dei fusti non concedono di sopravvivere ai cipressi infestati
(Covassi et al., 1998).
Fig. 15 – Innesti di cipresso comune
cresciuti in contenitore con apparati
radicali e colletti decorticati da larve
di Oziorrinco.
Infine si ricorda come in periodo trascorso (anni ’80) quando nella
vivaistica pistoiese la vasetteria più giovane di numerose latifoglie e conifere
ornamentali ebbe a subire estese falcidie provocate da una straripante presenza
di Oziorrinchi, nell’ampio ventaglio dei loro ospiti vegetali trovò posto anche il
cipresso comune (Del Bene e Parrini, 1986). Pur non collocandosi nel novero
degli ospiti più appetiti dai predetti
Coleotteri curculionidi anche giovani
piante di cipresso comune
allevate in contenitore non di rado
divennero bersaglio della voracità
delle larve ipogee di alcune specie
di Otiorrhynchus ( in particolare O.
armadillo, O. sulcatus, O. salicicola)
che giungevano a maturità a
Fig. 16 – Larve e pupe di Oziorrinco.
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spese degli apparati radicali, soggetti a decorticazioni spesso totali ed estese fino al colletto (Figg. 15-16). La
pericolosità degli Oziorrinchi ai giorni nostri si è notevolmente attenuata nell’areale vivaistico considerato e
l’eventualità che pianticelle di cipresso in contenitore possano incorrere in esiziali decorticazioni radicali operate
da larve di Oziorrinchi si fa attualmente alquanto remota.
CRITERI DI DIFESA
Individuato nell’afide Cinara cupressi il fitomizo che attualmente è fonte di maggiore
preoccupazione, al vivaista si offre una vasta gamma di efficaci formulati aficidi autorizzati all’impiego su
colture ornamentali: fosforganici e carbammati di vecchia registrazione, piretroidi, piretine naturali,
insetticidi-aficidi dell’ultima generazione, compresi alcuni recenti prodotti di origine naturale. L’odierna
produzione fitofarmaceutica concede quindi opportunità di agire con oculatezza nella scelta di prodotti
aficidi. Vi è oggigiorno possibilità di escludere insetticidi-aficidi del passato, totipotenti e di indubbia
efficacia, caratterizzati tuttavia da elevata tossicità, pesante impatto ambientale e scarsa selettività nei
riguardi degli antagonisti naturali dei fitofagi, a beneficio di più recenti formulati dal profilo ecotossicologico
rassicurante, altrettanto efficaci e che comunque vanno opportunamente alternati nell’impiego onde evitare
l’insorgenza di resistenza nelle popolazioni dell’afide. Si tenga presente che ad impedire la dannosità
dell’afide possono rivelarsi utili getti forzati di acqua (eventualmente ripetuti), sufficienti a disperdere le
colonie del cinarino e interrompere la loro dannosa attività di suzione.
Accertato quindi che la lotta all’afide del cipresso non presenta particolari difficoltà (il getto aficida
deve comunque ben penetrare all’interno delle chiome infestate), preme rilevare che solo dalla tempestività
dell’intervento può scaturire una effettiva protezione del cipresso. Come dimostrato (Inserra et al., 1979) lo
stazionamento indisturbato delle colonie dell’afide sui rametti di cipresso anche per poche settimane conduce
inevitabilmente ad esiti nefasti per l’integrità delle chiome. Interventi aficidi tardivi, accurati quanto si
voglia, su chiome ospitanti da settimane affollate colonie dell’afide e ancora esenti da manifestazioni di
danno, concedono solo di abbattere la popolazione afidica ma non impediscono affatto la comparsa, nelle
settimane successive, dei seccumi di foglie e rametti. Al produttore di cipressi resta quindi l’incombenza di
ripetute ispezioni alle parti interne delle chiome, il loro settore inferiore in particolare, nei periodi di abituale
incremento della popolazione dell’afide (all’uscita dall’inverno e in autunno), ben evidenziato anche da
bagnatura e untuosità appiccicaticcia di foglie e cortecce di rami e rametti, dovute all’abbondante melata
emessa dagli afidi in rapida moltiplicazione. Il tutto finalizzato ad evitare trattamenti aficidi con prodotti di
sintesi chimica cosiddetti “preventivi”, effettuati in assenza di effettiva infestazione, comunque inquinanti e
perturbatori di equilibri fra fitofagi e loro antagonisti naturali che, nel nostro interesse, dobbiamo mantenere
e potenziare.
Specifiche attenzioni sono richieste anche nella lotta all’eriofide. Attivo all’interno delle gemme ove
vive costantemente, gode di una protezione che può rendere problematico il successo del trattamento
acaricida, assicurato solo se l’intervento si riveli tempestivo (ai primi sintomi di attacco) e in periodo
stagionale appropriato, che è quello primaverile allorquando la popolazione svernante dell’eriofide inizia a
incrementare la sua consistenza. Idonei a contrastare le infestazioni dell’eriofide sono indicati formulati
acaricidi a base di clorobenzilato* 1 , bromopropilato**, endosulfan (Castagnoli e Simoni, 1998). Il vivaista
può fare ricorso ad altre sostanze attive quali abamectina, amitraz, ecc. dotate di spiccato potere citotropico e
proposte anche nella difesa dagli eriofidi.
Una lotta alle cocciniglie che possa rivelarsi efficace richiede, quantomeno, sufficienti conoscenze
sui loro cicli biologici, essendo noto che solo le forme giovanili (neanidi) da poco sgusciate dall’uovo e prive
di ina qualsiasi protezione sono altamente vulnerabili all’intervento insetticida. Contro gli stadi adulti che già
godono della protezione di scudetti, rivestimenti cerosi e quant’altro si ottengono di norma risultati
deludenti. Fosforganici, carbammati, piretroidi, polisolfuri, oli minerali (semplici o attivati) hanno una lunga
tradizione nella difesa anticoccidica di colture agrarie, floreali, ornamentali. L’impiego di alcuni di questi
anticoccidici, indubbiamente efficaci, cozza con le odierne esigenze di salvaguardia ambientale e di
1 (*) (**) Entrambi revocati, il secondo per l’impiego su colture ornamentali.
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sicurezza per l’operatore. A formulati a minore impatto ambientale, a ridotta tossicità e rispettosi dell’acaroentomofauna
utile (oli bianchi, oli bianchi + buprofezin, ecc.) dovrebbe andare la preferenza del vivaista alle
prese con problemi posti da dannosi sviluppi di cocciniglie.
Nei riguardi dei restanti fitofagi elencati come secondari nella presente nota, ad azzerarne la presenza
in vivaio si mostrano sufficienti alcune intuibili misure di prevenzione. Tali misure si sostanziano nella
eliminazione di cipressi adulti deperienti (o loro parti seccaginose) posti in prossimità dei giovani impianti
della cupressacea; nel sollecito allontanamento dei soggetti in crescita in vivaio malvegetanti per cause le più
varie, ormai irrecuperabili; nel porre prontamente rimedio a momentanei stati di stress vegetativo in cui
eventualmente vengano a trovarsi le coltivazioni di cipresso, ecc. Peraltro su criteri analoghi, come riferito in
altra parte del manuale, si fonda la prevenzione anche verso malattie del cipresso sostenute da patogeni
(cancri corticali a diversa eziologia fungina, perdite radicali per sviluppo di patogeni tellurici, ecc.).
Risponde a validi criteri di prevenzione anche una corretta gestione colturale degli impianti di
cipresso. Come già accennato in premessa, gli eccessi nella fertilizzazione sono di sicuro stimolo a massicci
sviluppi di alcuni parassiti (afidi, cocciniglie, eriofidi), oltre a rendere le piante più soggette anche a patogeni
fungini o avversità abiotiche.
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Comitato di Redazione
Paolo Raddi Direttore dell’Istituto per la Protezione delle Piante (IPP)
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