értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
komponens az ampicillin rezisztens pJKI132 plazmid, amely az IS30 transzpozázt kódolja<br />
(14. ábra).<br />
Első lépésként a Tn10 transzpozon segítségével a pJKI336 plazmid transzfere után random<br />
mutagenezist hajtottunk végre. Ennek során a konjugációs donor az E. coli S17-1 pJKI336<br />
Ap R , Km R törzs volt, amely a SE2102 Cm R recipiens törzsbe juttatta át a Tn10 transzpozon<br />
konstrukciót hordozó pJKI336 plazmidot. A konjugáció után az inszerciót szenvedett,<br />
kanamycin (és kloramfenikol) rezisztens SE2102 baktériumokra szelektáltunk. A mutagenezis<br />
során a transzpozíciós gyakoriság 1x10 -5 és 3x10 -5 értékek között változott recipiens<br />
baktériumra vonatkoztatva. A S. Enteritidis 11/2102 törzsön közel 3000 egyedi kanamycin<br />
rezisztens inszerciós mutánst állítottunk elő. Ebből a mutáns gyűjteményből kellett<br />
kiválasztanunk azokat a mutánsokat, amelyek a Tn10 inszerciót a virulencia plazmidon<br />
szenvedték el. A vizsgálat végrehajtására egy olyan PCR-es szűrőrendszert terveztünk, amely<br />
segítségével képesek voltunk az inszerciókat detektálni a virulencia plazmid egy viszonylag<br />
nagy, 6 kb-os régiójában, az spv operonon (spvRABCD, Chu és mtsai., 1999). A tesztelendő<br />
szakasz méretét úgy választottuk meg, hogy az elég nagy „felületet” nyújtson a véletlenszerű<br />
mutagenezishez, ugyanakkor az is fontos szempont volt, hogy lehetőség szerint egy, vagy<br />
néhány egyszerű PCR reakcióval lehessen dolgozni. (5 Mb-os Salmonella genommal<br />
számolva, feltételezve, hogy a virulencia plazmid csak egy kópiában van jelen,<br />
hozzávetőlegesen 800 mutáns közül egyben számíthattunk találatra egy 6 kb-os plazmid<br />
szakasz tesztelése esetén.)<br />
A tesztelő PCR rendszer primereit úgy terveztük meg, hogy az operon szélein elhelyezkedő<br />
spvR és spvD génekből az operon közepe felé író két primer (spvfor, spvrev) és az IS10 végre<br />
specifikus IS10L primerek kombinációja csak akkor adjon pozitív reakciót, ha ott jelen van a<br />
Tn10 inszerció (12. ábra). Mivel a Taq polimeráz optimális esetben sem képes 6 kb hosszú<br />
szakasz átírására, ezért az összeállított PCR csak akkor ad jelet, ha inszerció történt az spv<br />
régióban. Így ezzel a módszerrel a mutánsok „poolozott” tesztelése is lehetségessé vált.<br />
65