értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
értekezés - Állatorvostudományi Doktori Iskola
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
3.3. Eredmények<br />
3.3.1. Előzetes kísérleti eredmények<br />
Amint azt a 2.3. fejezetben már részletesen ismertettük, az irányított mutagenezis<br />
előkísérleteiként öt Salmonella szerovariáns több, mint 70 törzsét vizsgáltuk meg különböző<br />
flagellin gének jelenlétére. A megvizsgált öt szerovariáns (S. Enteritidis, S. Typhimurium, S.<br />
Hadar, S. Gallinarum és S. Abortusequi) előszűrése a mutagenezis szempontjából fontos fljB,<br />
hin, hixL, hixR, fliC, fliC operátor és fljA szekvenciákra irányult. A vizsgálatok azt mutatták,<br />
hogy a S. Enteritidis törzsekben, (ellentétben a tesztelt mozgásképes egyéb Salmonella<br />
szerovariánsok mindegyikével, így a S. Typhimuriummal) csak egyetlen flagellin gén, a fliC<br />
és a fliC operátor szekvenciája van jelen (2.3. fejezet, III. táblázat), mely utóbbi egyben az<br />
FljA represszor fehérje kötődési helye.<br />
Az, hogy a S. Enteritidis csak egy flagellin génnel rendelkezik, s hogy ugyanakkor e mellett a<br />
gén mellett jelen van az FljA kötőhelye (a fliC operátor), ideális mutagenezis célponttá teszi<br />
ezt a szerovariánst.<br />
3.3.2. A mutagenezis rendszer kidolgozása<br />
Az előzőekben leírtak alapján a S. Enteritidis fliC génjének irányított transzpozon<br />
mutagenezisére koncentráltunk, mely régióban célszekvenciaként a fliC gén operátora<br />
szerepel.<br />
A transzpozáz termelő konstrukciót (6. ábra) úgy hoztuk létre, hogy az IS30 transzpozáz Cterminális<br />
régiójához fuzionáltuk a fliC operátor represszorát, az FljA-t kódoló szakaszt.<br />
Ehhez alapvektorként rendelkezésre állt az Amp R pJKI132 plazmid (Farkas és mts. 1996)<br />
melyben az IS30 transzpozáz gén expressziója egy indukálható tac promóter kontrollja alatt<br />
áll. Irányított mutagenezissel az IS30 utolsó kódonja után a megfelelő leolvasási keretbe egy<br />
PstI hasítóhely került beépítésre, így lehetővé vált erre a helyre gének klónozása. Első<br />
lépésként az fljA gént amplifikáltuk úgy, hogy a PCR-hez használt primerek 5’ végei a<br />
megfelelő leolvasási keretben tartalmazták a klónozáshoz szükséges PstI hasítóhelyeket.<br />
A fúziós transzpozázt termelő pFOL1111 plazmid (6. ábra) készítésekor a pJKI132 plazmid<br />
HindIII helyén a 0,78 kb-os HindIII fragmentet cseréltük a pMSZ165 (Szabó és mtsai., 2003)<br />
1,3 kb-os fragmentjére. Ez utóbbi tartalmazta a az IS30 utolsó kódonja után a megfelelő<br />
40