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thèse de doctorat d'université biologie - Portail national SIST

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23<br />

comportant doux dispositifs <strong>de</strong> sécurité qui l’empêchent <strong>de</strong> tourner lors <strong>de</strong> son<br />

fonctionnement. Cette position du débitmètre permet d’obtenir la mesure cxac~c du flux:<br />

entrant dans le filet (Bourdillon, 1968).<br />

L’ensemble filet, débitmètre et collecteur est tracté au moyen d‘une barque ;j tond plat<br />

<strong>de</strong> 8 m <strong>de</strong> long propulsée par un moteur hors-bord <strong>de</strong> 8 CV.<br />

L’échantillonnage est réalisé tous les 3 jours à l’étale <strong>de</strong> pleine mer. pa’~~ qui<br />

correspond au tnoment Dù le zoopiancton est abondant dans la colonne d’eau (I)lc~t: iO(5i).<br />

IJn vol.urne d’eau <strong>de</strong> l’ordre <strong>de</strong> 600 litres est filtre obliquement du fond à la surface a la I rtesse<br />

moyenne <strong>de</strong> 1,2 km/h.<br />

3.2.2.2. Traitement <strong>de</strong>s échantillons<br />

Ns l’arrivée au laboratoire les échantillons préalablement fixes dans JC l’cti.~tr~~l C. TO<br />

o/o sont rincés ti l’eau distillée pour les nettoyer. 1Jn volume est prélevé et placC danx une hi;ite<br />

<strong>de</strong> Petri à fond noir où il est observé sous une loupe binoculaire. Les Lang d’huitres SNII aiors<br />

triees puis recueillies dans une lame creuse où elles subiront un nouveau rinytigc ;I I’cau<br />

distillée, Elles :sont récupérées une à une à l’ai<strong>de</strong> d’une aiguille montée et posée: dans une<br />

lame creuse contenant <strong>de</strong> l’eau <strong>de</strong> Javel du commerce diluée à 70 %. L’eau <strong>de</strong> Ja\.zl dilucc à<br />

ce pourcentage dissout la matière organique sans trop attaquer la coquille (Le Pennec, 1978).<br />

Les coquilles <strong>de</strong>barrassées <strong>de</strong> tous les dépôts organiques sont rincées à l’eau distillee. Et c’est à<br />

ce moment que la séparation <strong>de</strong>s 2 valves est pratiquée, en appuyant légèrement <strong>de</strong>ux aiguillcs<br />

montées sur les bords antéro-ventral <strong>de</strong> la coquille (fig. 9). . .<br />

Les coquilles larvaires, parfaitement nettoyées et séchées sont placées sur <strong>de</strong>s plots dc<br />

laiton recouverts d’un ruban adhésif double face. L’ensemble est soumis a la metallrsation dürrs<br />

un métalliseur or <strong>de</strong> type Edwards. Les plots métallisés sont observés au microscope<br />

électronique à balayage (Jeof JSM 35) et <strong>de</strong>s photographies <strong>de</strong> coquilles sont réalisees.<br />

Cette technique nous a permis d‘obtenir <strong>de</strong>s clichés en microscopie élec,tronique à<br />

balayage <strong>de</strong> la prodissoconque, <strong>de</strong> la dissoconque et <strong>de</strong> la charnière larvaire et postiarvaire <strong>de</strong><br />

l’huître <strong>de</strong> palétuvier C. gusar.<br />

3.2.2.3. Mensurations et comptage <strong>de</strong>s larves<br />

Au laboratoire, La taille <strong>de</strong>s larves est mesurée (la longueur totale : fig. 10) et ie<br />

nombre d’individus <strong>de</strong> chaque prélèvement est compté sur une cellule à numération.

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