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& ___-..------. . ..---. - -.--. -------_-~.- __.. -.- __.__ -__ .-_ . flotteur tige métallique de dinnWtre 10 mm t lest(plomb 0,Skg) 1 CERCEAU: WE FRONTA:g plaque métallique perpendiculaire i1u cerceau cerceau de S3çm de diamétre plaque Bctalhque oblique sur l’ouverture du filet - ---.- ---. ----_.-_- Figure 8. Schéma du filet à plancton utilisé dans l’échantillonage des larves .a
23 comportant doux dispositifs de sécurité qui l’empêchent de tourner lors de son fonctionnement. Cette position du débitmètre permet d’obtenir la mesure cxac~c du flux: entrant dans le filet (Bourdillon, 1968). L’ensemble filet, débitmètre et collecteur est tracté au moyen d‘une barque ;j tond plat de 8 m de long propulsée par un moteur hors-bord de 8 CV. L’échantillonnage est réalisé tous les 3 jours à l’étale de pleine mer. pa’~~ qui correspond au tnoment Dù le zoopiancton est abondant dans la colonne d’eau (I)lc~t: iO(5i). IJn vol.urne d’eau de l’ordre de 600 litres est filtre obliquement du fond à la surface a la I rtesse moyenne de 1,2 km/h. 3.2.2.2. Traitement des échantillons Ns l’arrivée au laboratoire les échantillons préalablement fixes dans JC l’cti.~tr~~l C. TO o/o sont rincés ti l’eau distillée pour les nettoyer. 1Jn volume est prélevé et placC danx une hi;ite de Petri à fond noir où il est observé sous une loupe binoculaire. Les Lang d’huitres SNII aiors triees puis recueillies dans une lame creuse où elles subiront un nouveau rinytigc ;I I’cau distillée, Elles :sont récupérées une à une à l’aide d’une aiguille montée et posée: dans une lame creuse contenant de l’eau de Javel du commerce diluée à 70 %. L’eau de Ja\.zl dilucc à ce pourcentage dissout la matière organique sans trop attaquer la coquille (Le Pennec, 1978). Les coquilles debarrassées de tous les dépôts organiques sont rincées à l’eau distillee. Et c’est à ce moment que la séparation des 2 valves est pratiquée, en appuyant légèrement deux aiguillcs montées sur les bords antéro-ventral de la coquille (fig. 9). . . Les coquilles larvaires, parfaitement nettoyées et séchées sont placées sur des plots dc laiton recouverts d’un ruban adhésif double face. L’ensemble est soumis a la metallrsation dürrs un métalliseur or de type Edwards. Les plots métallisés sont observés au microscope électronique à balayage (Jeof JSM 35) et des photographies de coquilles sont réalisees. Cette technique nous a permis d‘obtenir des clichés en microscopie élec,tronique à balayage de la prodissoconque, de la dissoconque et de la charnière larvaire et postiarvaire de l’huître de palétuvier C. gusar. 3.2.2.3. Mensurations et comptage des larves Au laboratoire, La taille des larves est mesurée (la longueur totale : fig. 10) et ie nombre d’individus de chaque prélèvement est compté sur une cellule à numération.
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