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Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2

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Modèles rongeurs <strong>de</strong> traumatisme <strong>de</strong> la moelle épinière (transsection, compression) avec greffe <strong>de</strong> cellules<br />

olfactives<br />

Rats et souris adultes sont anesthésiés par injection intra-péritonéale d’un mélange <strong>de</strong> kétamine (100<br />

mg/kg) et <strong>de</strong> xylazine (10 mg/kg). La partie médiane du dos <strong>de</strong> l’animal est rasée et les poils sont éliminés<br />

avec une gaze humi<strong>de</strong>. La peau est aseptisée avec <strong>de</strong> la betadine. Une incision longitudinale est effectuée<br />

avec un scalpel et la peau est écartée. Une secon<strong>de</strong> incision est effectuée dans la masse musculaire entre les<br />

niveaux thoraciques T6 et T10. A l’ai<strong>de</strong> d’un écarteur, les muscles sont séparés afin d’exposer la colonne<br />

vertébrale. Une laminectomie est pratiquée au niveau T9. Une anesthésie locale est pratiquée en déposant<br />

100 à 200 microlitres <strong>de</strong> xylocaïne sur la moelle exposée. Pour le modèle <strong>de</strong> compression, une son<strong>de</strong><br />

pourvue d’un ballonnet à son extrémité, est introduite entre la moelle et la colonne vertébrale <strong>de</strong> sorte que<br />

la ballonnet soit situé sous le niveau T8. Le ballonnet est gonflé à une pression <strong>de</strong> 5 atmosphères pendant 1<br />

minute à l’ai<strong>de</strong> d’une seringue contenant <strong>de</strong> l’eau et équipé d’un mesureur <strong>de</strong> pression. Au bout d’une<br />

minute, le ballonnet est dégonflé et retiré. Pour le modèle <strong>de</strong> transection, la moelle est incisée sur toute la<br />

largeur à l’ai<strong>de</strong> d’un scalpel au niveau T9.<br />

Après la compression ou la transection, un morceau <strong>de</strong> Gelfoam est inséré au <strong>de</strong>ssus <strong>de</strong> la moelle exposée<br />

puis les muscles et la peau sont suturés avec du fil stérile et résorbable en vicryl 3-0. La température <strong>de</strong><br />

l’animal est vérifiée au cours <strong>de</strong> l’opération afin d’éviter une hypothermie. L’animal est ensuite placé seul<br />

dans une cage et est contrôlé attentivement jusqu’à ce qu’il retrouve sa vigilance. L’animal retourne<br />

ensuite en zone <strong>de</strong> stabulation (un animal par cage) pour une durée variant entre 4 et 16 semaines avant<br />

d’être sacrifié par injection d’une dose létale <strong>de</strong> pentobarbital sodique (120 mg/kg) en intra-péritonéal.<br />

Durant les quinze jours qui suivent l’opération, l’animal bénéficie <strong>de</strong> soins post-opératoires intensifs.<br />

L’animal est pesé tous les jours et, <strong>de</strong>ux fois par jour, son urine est éjectée par une pression douce sur la<br />

vessie. Si l’urine montre <strong>de</strong>s signes d’infection, une dose <strong>de</strong> terramycine (0,1 ml) est administrée en<br />

intrapéritonéal pendant 5 jours. Si l’animal exhibe <strong>de</strong>s signes <strong>de</strong> souffrance, un traitement au<br />

BUPRECARE est administré.<br />

- Autres protocoles : Protocoles d’analyse du comportement<br />

Mesure <strong>de</strong> la récupération fonctionnelle après section du nerf péronier<br />

Mesure <strong>de</strong> l’empreinte du pas<br />

Les mesures <strong>de</strong> la longueur du pas (PL : print lenght) et <strong>de</strong> l’écartement <strong>de</strong>s orteils entre le premier et le<br />

cinquième orteil (TS : toe spread) sont réalisées après imprégnation avec <strong>de</strong> l’encre indélébile <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux<br />

pattes arrières du rat. Nous avons utilisé la formule <strong>de</strong> l’in<strong>de</strong>x fonctionnel péronier <strong>de</strong> Bain-Mackinnon-<br />

Hunter en prenant les moyennes <strong>de</strong>s valeurs du côté sain (N : normal) et du côté lésé (E : experimental)<br />

sur trois pas consécutifs sans arrêt. La formule s’écrit <strong>de</strong> la manière suivante :<br />

PFI(peroneal function in<strong>de</strong>x)= 174.9x[(EPL-NPL)/NPL] + 80,3x[(ETS-NTS)/NTS] - 13.4<br />

Le score d’un animal sain s’établit à -13.4<br />

Analyse cinématique <strong>de</strong> la marche : étu<strong>de</strong> <strong>de</strong>s amplitu<strong>de</strong>s articulaires avec le logiciel SIMI motion®<br />

Cette étu<strong>de</strong> nécessite au préalable le marquage au feutre indélébile <strong>de</strong> quatre points articulaires en regard<br />

<strong>de</strong> la hanche (trochantaris major), du genou (condylus lateralis), <strong>de</strong> la cheville (malleolus lateralis) et <strong>de</strong> la<br />

tête du cinquième métatarsien <strong>de</strong> la patte arrière gauche. L’enregistrement vidéo permet l’analyse du<br />

déplacement en 2D <strong>de</strong>s 4 points sur 3 pas consécutifs sans arrêt. Le logiciel SIMI motion® traite les<br />

données sur chacune <strong>de</strong>s 50 acquisitions par secon<strong>de</strong> et détermine les courbes <strong>de</strong>s angles du genou et <strong>de</strong> la<br />

cheville au cours du déplacement. Nous avons étudié les amplitu<strong>de</strong>s <strong>de</strong>s angles <strong>de</strong> dorsiflexion <strong>de</strong> la<br />

cheville et <strong>de</strong> flexion du genou pendant la phase <strong>de</strong> balancé, les valeurs <strong>de</strong> l’angle <strong>de</strong> dorsiflexion <strong>de</strong> la<br />

cheville au milieu (mid swing) et en fin <strong>de</strong> la phase <strong>de</strong> balancé (terminal swing).<br />

Mesure <strong>de</strong> la récupération fonctionnelle après section ou compression <strong>de</strong> la moelle épinière<br />

Mesure <strong>de</strong> la locomotion et <strong>de</strong> la démarche<br />

On utilise le test BBB. Les animaux sont placés dans un openfield et observés pendant 4 minutes. Les<br />

principales mesures concernent le mouvement <strong>de</strong> chacune <strong>de</strong>s articulations <strong>de</strong>s pattes inférieures, la<br />

capacité <strong>de</strong> l’animal à supporter son poids et la démarche <strong>de</strong> l’animal lorsque celui-ci parvient à se tenir<br />

sur ses pattes postérieures. Chaque animal se voit attribuer un nombre <strong>de</strong> points variant entre 0 et 21.<br />

Chaque animal est testé une fois par semaine sur <strong>de</strong>s pério<strong>de</strong>s allant <strong>de</strong> 12 à 36 semaines.<br />

Mesure <strong>de</strong> la nage<br />

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