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Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2

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<strong>de</strong> fréquence variables, pouvant fonctionner sur un mo<strong>de</strong> automatique permet <strong>de</strong> ventiler<br />

l'animal qui est curarisé (Bromure <strong>de</strong> Pancuronium, 10 mg/kg, i.v). La patte gauche est incisée<br />

et le muscle Tibialis anterior est dégagé <strong>de</strong> son tissu conjonctif. La patte <strong>de</strong> l'animal est<br />

soli<strong>de</strong>ment fixée à un support horizontal afin d'éviter tout mouvement au cours <strong>de</strong> la<br />

stimulation électrique du muscle. Afin <strong>de</strong> mesurer la force <strong>de</strong> la contraction, l'extrémité<br />

distale du tendon est attachée à une jauge <strong>de</strong> contrainte isométrique (Microdynamomètre, Ugo<br />

Basile).<br />

Le muscle recouvrant le tronc commun sciatique est ensuite disséqué et le nerf péronier et son<br />

greffon sont désolidarisés <strong>de</strong>s tissus conjonctifs avoisinants. Après section dans la partie<br />

proximale du nerf, le nerf et le greffon sont placés dans un bain <strong>de</strong> paraffine maintenu à la<br />

température <strong>de</strong> 37°C. La partie laissée libre du nerf périphérique est placée sur une électro<strong>de</strong><br />

bipolaire en tungstène afin <strong>de</strong> procé<strong>de</strong>r à sa stimulation. Après avoir rétracté les gaines<br />

conjonctives (épinèvre et périnèvre), <strong>de</strong> fins faisceaux <strong>de</strong> fibres nerveuses sont obtenus par<br />

dilacération à l'ai<strong>de</strong> <strong>de</strong> pinces fines (technique <strong>de</strong> la fibre unique : « teasing »). Un « peigne<br />

d'électro<strong>de</strong>s » en tungstène, solidaire d'un micromanipulateur, permet d'enregistrer en<br />

condition monopolaire l'activité électrique extracellulaire <strong>de</strong>s fibres nerveuses. La pression<br />

artérielle, enregistrée à l'ai<strong>de</strong> d'un capteur (Gould, type N.A), est visualisée sur une autre voie<br />

<strong>de</strong> l'enregistreur. La température centrale <strong>de</strong> l'animal est maintenue entre 37,5° et 39°C à<br />

l'ai<strong>de</strong> d'une couverture chauffante asservie à une son<strong>de</strong> thermique rectale. A la fin <strong>de</strong><br />

l’expérience, l’animal est sacrifié avec une dose létale <strong>de</strong> pentobarbital.<br />

Protocole pour axotomie et bulbectomie<br />

Rats et souris adultes sont anesthésiés par injection intra-péritonéale d’un mélange <strong>de</strong><br />

kétamine (150 mg/kg) et <strong>de</strong> valium (3 mg/kg) dans la pièce <strong>de</strong> stabulation. L’animal<br />

anesthésié (perte <strong>de</strong> réflexes) est ensuite amené dans la pièce <strong>de</strong> chirurgie et est placé sur un<br />

appareil <strong>de</strong> stéréotaxie, maintenue par <strong>de</strong>s barres d’oreilles et par la pièce <strong>de</strong> gueule. La partie<br />

supérieure du crâne est rasée et les poils sont éliminés avec une gaze humi<strong>de</strong>. La peau est<br />

aseptisée à la betadine. Après une infiltration sous cutanée <strong>de</strong> xylocaïne une incision<br />

longitudinale est effectuée avec un scalpel et la peau ainsi que le fascia sont écartés. Quand le<br />

bulbe olfactif apparaît par transparence, on marque l’emplacement avec un feutre. Pour une<br />

axotomie, avec une perceuse portée à vitesse maximum, on perce la partie osseuse juste<br />

<strong>de</strong>vant le bulbe olfactif puis on enfonce une aiguille jusqu’au palais et par un mouvement<br />

horizontal on sectionne les afférences nerveuses innervant la face antérieur du bulbe olfactif.<br />

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