Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2
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� Interventions chirurgicales :<br />
Modèle rongeur <strong>de</strong> lésion du nerf péronier avec greffe <strong>de</strong> tuteur <strong>de</strong> repousse nerveuse<br />
L'anesthésie générale <strong>de</strong>s animaux (rats mâles Lewis ou Sprague Dawley) est obtenue par<br />
injection intrapéritonéale <strong>de</strong> pentobarbital sodique (Nembutal®, 70 mg/kg). Une injection i.p.<br />
d'atropine (0.05mg/kg) permet <strong>de</strong> réduire les sécrétions dans les voies aériennes<br />
potentiellement obstructives. L'animal étant placé en décubitus dorsal, <strong>de</strong>s incisions cutanées<br />
et musculaires au niveau <strong>de</strong> la patte postérieure gauche permettent d'accé<strong>de</strong>r au nerf sciatique.<br />
La branche péronière (peroneus ou fibularis) du tronc sciatique est dégagée <strong>de</strong>s tissus<br />
avoisinants jusqu'à son point d'émergence du tronc commun sciatique puis sectionnée dans sa<br />
partie médiane en <strong>de</strong>ux points séparés <strong>de</strong> 1,5 cm. Le faisceau nerveux est ensuite disséqué à<br />
l'intérieur du tronc commun sciatique afin <strong>de</strong> disposer d'une longueur suffisante pour réaliser<br />
aisément la réparation nerveuse. Le nerf péronier dégagé innerve le muscle Tibialis anterior.<br />
Un segment <strong>de</strong> nerf péronier <strong>de</strong> 1 cm est sectionné et est remplacé par un tube <strong>de</strong> 1 cm. Les<br />
extrémités distale et proximale du nerf sont insérées sur 1 mm dans chaque extrémité du tube.<br />
Les épinèvres <strong>de</strong>s extrémités nerveuses sont suturées aux extrémités du tube préalablement<br />
imbibé <strong>de</strong> sérum physiologique. Cette procédure permet <strong>de</strong> ramollir les parois du tube, ce qui<br />
facilite sa manipulation et sa mise en place. Le groupe contrôle est composé <strong>de</strong> rongeurs dont<br />
le segment nerveux est inversé et immédiatement remis en place en suturant en 5 points les<br />
épinèvres <strong>de</strong> chaque extrémité du segment nerveux prélevé avec celles <strong>de</strong>s troncs distal et<br />
central (fil Ethilon® 10/0).<br />
Pour tous les groupes expérimentaux, les plans musculaires <strong>de</strong> la patte sont suturés avec du fil<br />
vicryl 4/0 et les plaies sont abondamment enduites <strong>de</strong> Cortiméga®, une pomma<strong>de</strong> anti-<br />
inflammatoire et antibiotique. Les animaux sont alors placés en ambiance chau<strong>de</strong> (37°C)<br />
jusqu'à leur réveil, puis placés dans <strong>de</strong>s cages individuelles où ils reçoivent <strong>de</strong> l'eau et <strong>de</strong> la<br />
nourriture ad libitum. L’analgésie est assurée par une injection sous cutanée <strong>de</strong> BUPRECARE<br />
à la dose <strong>de</strong> 0.02 à 0.5 mg/kg pour le rat et 0.5 à 2.5 mg/kg pour la souris. Les injections se<br />
font toutes les 6 à 12 heures.<br />
Dix semaines plus tard, les animaux sont <strong>de</strong> nouveau anesthésiés au pentobarbital sodique<br />
(Nembutal, 48 mg/kg). La trachée, la veine et l'artère poplitée controlatérales au nerf étudié<br />
sont canulées. L'animal est réhydraté par une injection intraveineuse <strong>de</strong> sérum physiologique<br />
(1 ml/heure). Une pompe à respiration artificielle (Harvard Respiratory Pump), <strong>de</strong> volume et<br />
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