Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2
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Intitulé : Plasticité olfactive et réparation du système nerveux<br />
Responsable : Pr. François FERON<br />
A – Domaine d’activité et justification<br />
La muqueuse olfactive nasale est un tissu nerveux remarquable : accessible chez tous les<br />
individus et siège d’une neurogenèse permanente, il abrite <strong>de</strong>s cellules souches adultes et <strong>de</strong>s<br />
cellules engainantes qui participent à l’axogenèse. L’équipe étudie le potentiel thérapeutique<br />
<strong>de</strong> ces <strong>de</strong>ux types cellulaires, après transplantation dans <strong>de</strong>s modèles animaux <strong>de</strong> traumatisme<br />
médullaire, <strong>de</strong> sclérose en plaques et <strong>de</strong> la maladie d’Alzheimer. Afin d’accroître la<br />
récupération fonctionnelle <strong>de</strong>s animaux lésés ou mala<strong>de</strong>s, nous administrons en complément<br />
<strong>de</strong> la vitamine D, une molécule qui accroît l’axogenèse et la myélinisation.<br />
B – Espèces animales utilisées et justification<br />
Rats et souris.<br />
� L’équipe utilise <strong>de</strong>s rats (Wistar ou Sprague Dawley) pour les expériences <strong>de</strong><br />
régénération après trauma médullaire car les souris représentent un mauvais modèle<br />
animal pour ce genre d’étu<strong>de</strong>s.<br />
� En parallèle, nous utilisons <strong>de</strong>s souris – transgéniques ou non – pour nos travaux sur la<br />
maladie d’Alzheimer et la sclérose en plaques. Nous élevons actuellement <strong>de</strong>s souris<br />
transgéniques (5xFAD) pour le suivi <strong>de</strong>s symptômes <strong>de</strong> la maladie d’Alzheimer et <strong>de</strong>s<br />
souris C57Bl6 pour l’induction <strong>de</strong> l’Encéphalomyélite Auto-immune Expérimentale<br />
(EAE).<br />
C – Protocole expérimental sur l’animal<br />
� Prélèvement <strong>de</strong> substances sur animaux anesthésiés :<br />
Protocole appliqué à <strong>de</strong>s foetus<br />
Culture <strong>de</strong> neurones <strong>de</strong> cortex ou d’hippocampe. Les mères gestantes sont profondément<br />
anesthésiées par inhalation d’halothane volatile. Après incision <strong>de</strong> l’abdomen (suivi <strong>de</strong><br />
décapitation), le placenta est prélevé et transféré dans un tampon glacé. Les embryons (au<br />
sta<strong>de</strong> embryonnaires E17-18) sont alors prélevés, décapités et les cerveaux prélevés.<br />
Protocoles appliqués à <strong>de</strong>s souriceaux <strong>de</strong> 3 à 6 jours.<br />
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