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Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2

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- Modèle carragénine :<br />

Injection <strong>de</strong> 20µl <strong>de</strong> 3% <strong>de</strong> carragénine dans du sérum physiologique<br />

stérile. La carragénine est polysacchari<strong>de</strong> issu d’algues rouges, utilisé<br />

comme épaississant dans l’industrie agro-alimentaire. En injection<br />

intra-plantaire à une concentration <strong>de</strong> 3%, la carragénine provoque<br />

une douleur aiguë (sans léchage spontané <strong>de</strong> la patte injectée) avec<br />

un pic douloureux 8-10h après l’injection et qui se résorbe au bout <strong>de</strong><br />

48-72h. Le seuil douloureux est mesuré à 8, 16 ou 24h à l’ai<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

filaments <strong>de</strong> Von Frey. Les animaux sont ensuite sacrifiés. Les<br />

ganglions rachidiens L3, L4 et L5 ipsilatéraux sont prélevés dans <strong>de</strong><br />

but <strong>de</strong> mettre en culture les neurones sensitifs qui innervent la patte<br />

injectée (pour mesurer <strong>de</strong> l’activité du canal par <strong>de</strong>s enregistrements<br />

électrophysiologiques) ou <strong>de</strong> faire <strong>de</strong>s coupes <strong>de</strong> tissus (marquage<br />

immunologique). A aucun moment le comportement <strong>de</strong> l’animal est<br />

affecté (toilettage, activité locomotrice, activité d’exploration).<br />

- Modèle <strong>de</strong> monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong> :<br />

Injection péri-articulaire sous anesthésie <strong>de</strong> 30µl (2x15µl) d’adjuvant<br />

complet <strong>de</strong> freud à la cheville <strong>de</strong> la patte arrière. L’adjuvant <strong>de</strong> freud<br />

provoque une réaction inflammatoire qui va entrainer une douleur<br />

chronique, puisque la douleur va persister dans le temps. Le pic<br />

douloureux se situe 3 jours après l’injection. Le seuil douloureux est<br />

mesuré à 10 jours par le test <strong>de</strong> Von Frey. Les animaux sont ensuite<br />

sacrifiés. Les ganglions rachidiens L3, L4 et L5 ipsilatéraux sont<br />

prélevés dans <strong>de</strong> but <strong>de</strong> mettre en culture les neurones sensitifs qui<br />

innervent la patte (pour mesurer <strong>de</strong> l’activité du canal par <strong>de</strong>s<br />

enregistrements électrophysiologiques) ou <strong>de</strong> faire <strong>de</strong>s coupes <strong>de</strong><br />

tissus (marquage immunologique). A aucun moment le comportement<br />

<strong>de</strong> l’animal est affecté (toilettage, activité locomotrice, activité<br />

d’exploration).<br />

Existe-t-il <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s alternatives pour réaliser ce travail : Si OUI justifiez leur non<br />

utilisation :<br />

NON<br />

Espèces animales qui seront utilisées :<br />

souris (C57BL6, NaV1.9 KO)<br />

Justifiez le choix <strong>de</strong> l'espèce animale et le nombre d'animaux utilisés :<br />

Nous utilisons la souris, car nous possédons une souris knock-out pour le canal NaV1.9.<br />

Pour les modèles carragénine et monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong> : pour les cultures <strong>de</strong> neurones, 3<br />

ganglions sont prélevés par animal et 15 ganglions sont nécessaires pour la mise en culture,<br />

donc 5 animaux par culture. Un N=6-10 est nécessaire dans chaque condition (sauvage et<br />

transgénique, carragénine et monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong>). Pour l’immunohistochimie nous auront<br />

besoin d’environ 10 souris par condition. Par conséquent, nous aurons besoin d’environ 70-<br />

110 souris sauvages et 70-110 souris transgéniques.<br />

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