Neurophysiologie de Marseille (CRN2M) UMR6231 Equipe 2
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- Modèle carragénine :<br />
Injection <strong>de</strong> 20µl <strong>de</strong> 3% <strong>de</strong> carragénine dans du sérum physiologique<br />
stérile. La carragénine est polysacchari<strong>de</strong> issu d’algues rouges, utilisé<br />
comme épaississant dans l’industrie agro-alimentaire. En injection<br />
intra-plantaire à une concentration <strong>de</strong> 3%, la carragénine provoque<br />
une douleur aiguë (sans léchage spontané <strong>de</strong> la patte injectée) avec<br />
un pic douloureux 8-10h après l’injection et qui se résorbe au bout <strong>de</strong><br />
48-72h. Le seuil douloureux est mesuré à 8, 16 ou 24h à l’ai<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />
filaments <strong>de</strong> Von Frey. Les animaux sont ensuite sacrifiés. Les<br />
ganglions rachidiens L3, L4 et L5 ipsilatéraux sont prélevés dans <strong>de</strong><br />
but <strong>de</strong> mettre en culture les neurones sensitifs qui innervent la patte<br />
injectée (pour mesurer <strong>de</strong> l’activité du canal par <strong>de</strong>s enregistrements<br />
électrophysiologiques) ou <strong>de</strong> faire <strong>de</strong>s coupes <strong>de</strong> tissus (marquage<br />
immunologique). A aucun moment le comportement <strong>de</strong> l’animal est<br />
affecté (toilettage, activité locomotrice, activité d’exploration).<br />
- Modèle <strong>de</strong> monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong> :<br />
Injection péri-articulaire sous anesthésie <strong>de</strong> 30µl (2x15µl) d’adjuvant<br />
complet <strong>de</strong> freud à la cheville <strong>de</strong> la patte arrière. L’adjuvant <strong>de</strong> freud<br />
provoque une réaction inflammatoire qui va entrainer une douleur<br />
chronique, puisque la douleur va persister dans le temps. Le pic<br />
douloureux se situe 3 jours après l’injection. Le seuil douloureux est<br />
mesuré à 10 jours par le test <strong>de</strong> Von Frey. Les animaux sont ensuite<br />
sacrifiés. Les ganglions rachidiens L3, L4 et L5 ipsilatéraux sont<br />
prélevés dans <strong>de</strong> but <strong>de</strong> mettre en culture les neurones sensitifs qui<br />
innervent la patte (pour mesurer <strong>de</strong> l’activité du canal par <strong>de</strong>s<br />
enregistrements électrophysiologiques) ou <strong>de</strong> faire <strong>de</strong>s coupes <strong>de</strong><br />
tissus (marquage immunologique). A aucun moment le comportement<br />
<strong>de</strong> l’animal est affecté (toilettage, activité locomotrice, activité<br />
d’exploration).<br />
Existe-t-il <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s alternatives pour réaliser ce travail : Si OUI justifiez leur non<br />
utilisation :<br />
NON<br />
Espèces animales qui seront utilisées :<br />
souris (C57BL6, NaV1.9 KO)<br />
Justifiez le choix <strong>de</strong> l'espèce animale et le nombre d'animaux utilisés :<br />
Nous utilisons la souris, car nous possédons une souris knock-out pour le canal NaV1.9.<br />
Pour les modèles carragénine et monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong> : pour les cultures <strong>de</strong> neurones, 3<br />
ganglions sont prélevés par animal et 15 ganglions sont nécessaires pour la mise en culture,<br />
donc 5 animaux par culture. Un N=6-10 est nécessaire dans chaque condition (sauvage et<br />
transgénique, carragénine et monoarthrite rhumatoï<strong>de</strong>). Pour l’immunohistochimie nous auront<br />
besoin d’environ 10 souris par condition. Par conséquent, nous aurons besoin d’environ 70-<br />
110 souris sauvages et 70-110 souris transgéniques.<br />
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