Implication des protéines vitamine K-dépendantes dans la ...
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2.8 Étude du rôle de <strong>la</strong> protéine Gas6 <strong>dans</strong> <strong>la</strong> rétinogenèse<br />
antigènes, les coupes de rétine sont fixées au PFA 4% pendant 5 minutes puis <strong>la</strong>vées avant<br />
d’être incubées <strong>dans</strong> du PBS avec les anticorps primaires anti-Ki67 (1/50, Dako) ou anti-<br />
F4/80 (1/100, Serotec) et anti-GFAP (1/100, Dako) pendant 1 heure. Le marquage anti-GFAP<br />
nous permet de marquer les cellules gliales de Müller activées lors de <strong>la</strong> lésion et ainsi de<br />
localiser l’impact <strong>la</strong>ser avec certitude. Après <strong>la</strong>vages, les coupes sont alors mises en présence<br />
<strong>des</strong> anticorps secondaires de chèvre anti-rat Alexa Fluor 488 et chèvre anti-<strong>la</strong>pin Alexa Fluor<br />
568 (1/200, Molecu<strong>la</strong>r probes) pendant 1 heure et les noyaux sont colorés au Dapi dilué au<br />
1/2000 pendant 5 minutes avant montage <strong>des</strong> coupes <strong>dans</strong> du glycérol/PBS (1/1).<br />
2.8.2.2 Mesure de l’apoptose<br />
La photocoagu<strong>la</strong>tion <strong>la</strong>ser de <strong>la</strong> rétine induit une apparition de cellules apoptotiques<br />
localisées en majorité <strong>dans</strong> <strong>la</strong> couche nucléaire externe sur <strong>la</strong> trajectoire du <strong>la</strong>ser. Ces cellules<br />
apoptotiques seront détectées par marquage TUNEL.<br />
Après fixation 1 heure <strong>dans</strong> une solution de PFA à 4% et <strong>la</strong>vages, les coupes de rétine<br />
sont perméabilisées <strong>dans</strong> une solution de PBS contenant 0,3% de triton X-100. Elles sont<br />
ensuite incubées pendant 30 minutes à 37°C <strong>dans</strong> un tampon 500 mM Tris-HCL, 1 mM<br />
EDTA pH 8,5 contenant 1 unité par coupe de phosphatase alkaline (ubs corporation) afin<br />
d’éliminer <strong>des</strong> groupements phosphate présents à l’extrémité <strong>des</strong> fragments d’ADN qui<br />
viennent perturber l’action de l’enzyme Terminal Transferase. Après <strong>la</strong>vages, les coupes sont<br />
incubées avec le mé<strong>la</strong>nge réactionnel TUNEL (20 µl de TUNEL Enzyme pour 180 µl de<br />
TUNEL Label, Roche) 1 heure à 37°C et en atmosphère humide. Elles sont de nouveau <strong>la</strong>vées<br />
avant d’être incubées <strong>dans</strong> une solution de PBS contenant du Dapi dilué au 1/2000 pendant 5<br />
minutes. Les coupes sont montées <strong>dans</strong> du glycérol/PBS (1/1).<br />
2.9 Analyse <strong>des</strong> données et tests statistiques<br />
2.9.1 Photographies<br />
Les photographies en immunofluorescence et microscopie confocale sont obtenues au<br />
moyen d’une unité confocale (FV-1000) équipée d’un <strong>la</strong>ser argon et HeNe de 15 mW<br />
associée à un microscope à p<strong>la</strong>tine inversée (IX-80, Olympus, Tokyo, Japon). Les<br />
fluorochromes sont excités avec une longeur d’onde de 405 nm pour le DAPI, 488 nm pour<br />
Alexa Fluor 488, 543 nm pour Alexa Fluor 555 et 568, 633 nm pour Alexa Fluor 647 et le<br />
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