Implication des protéines vitamine K-dépendantes dans la ...
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2.4 Caractérisation <strong>des</strong> PVKDs présentes <strong>dans</strong> les cultures de CSN et de plexus choroï<strong>des</strong> in<br />
vitro<br />
spécifique de l’amorce utilisée, 50 s à 72°C). La PCR se termine par une étape finale<br />
d’élongation de 7 min à 72°C. Les produits de PCR sont séparés par électrophorèse sur gel<br />
d’agarose de 1,8%.<br />
Les ARNs extraits de plexus choroï<strong>des</strong> de rats sont utilisés comme contrôles positifs<br />
pour l’expression de l’ARNm de <strong>la</strong> protéine Gas6 et de <strong>la</strong> protéine S. Des ARNs isolés de foie<br />
sont utilisés comme contrôles positifs pour l’expression de l’ARNm <strong>des</strong> <strong>protéines</strong> intervenant<br />
<strong>dans</strong> <strong>la</strong> cascade de coagu<strong>la</strong>tion ainsi que pour les <strong>protéines</strong> du système de γ-carboxy<strong>la</strong>tion.<br />
2.4.2 Recherche de l’expression <strong>des</strong> PVKDs par Western blot et<br />
immunocytochimie <strong>dans</strong> les cultures de SVZ<br />
Western blot<br />
La recherche <strong>des</strong> PVKDs sécrétées <strong>dans</strong> le milieu conditionné par les CSN est<br />
effectuée après concentration séléctive <strong>des</strong> PVKDs par précipitation au citrate de barium<br />
(Berkner, 1993). Cette technique est détaillée <strong>dans</strong> <strong>la</strong> partie 2.5.1 de cette partie<br />
expérimentale.<br />
Les extraits de milieu conditionné concentré ou les lysats cellu<strong>la</strong>ires sont solubilisés<br />
<strong>dans</strong> du Laemmli (0,06 M Tris pH 6,8 ; 2% SDS ; 5% β-mercaptoethanol). Les <strong>protéines</strong> sont<br />
séparées sur un gel SDS-polyacry<strong>la</strong>mide à 10% et transférées sur une membrane de PVDF<br />
(Immobilon-P, Millipore, Bedford, USA). Les sites d’hybridation non spécifiques sont<br />
bloqués 2 heures <strong>dans</strong> un tampon TBS Tween-20 (20 mM Tris-HCL, 150 mM NaCl, pH 7.5,<br />
0,1% Tween 20) contenant 5% de <strong>la</strong>it écrémé. Les membranes sont ensuite incubées une nuit<br />
à 4°C <strong>dans</strong> <strong>la</strong> solution de blocage contenant les anticorps primaires dirigés contre l’ensemble<br />
<strong>des</strong> PVKDs (anti-γ-carboxyglutamyl (G<strong>la</strong>) résidus ou anti-G<strong>la</strong>), contre <strong>la</strong> protéine Gas6 ou<br />
contre <strong>la</strong> protéine S. Le lendemain, les membranes sont incubées 1 heure à température<br />
ambiante avec les anticorps secondaires couplés à <strong>la</strong> péroxydase (Tableau VII). Enfin, les<br />
complexes immuns sont révélés par chimioluminescence à l’aide du kit « ECL-plus »<br />
(Amersham Biosciences) sur film (BioMax MR film, Kodak).<br />
Immunocytochimie<br />
L’expression de <strong>la</strong> protéine Gas6 et de <strong>la</strong> protéine S ont été recherchées par<br />
immunocytochimie. Pour ce<strong>la</strong>, les cultures sont incubées en présence <strong>des</strong> anticorps primaires<br />
pendant une nuit à 4°C. Les anticorps primaires sont révélés à l’aide d’anticorps secondaires<br />
couplés à un fluorochrome (Tableau VII).<br />
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