Implication des protéines vitamine K-dépendantes dans la ...
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2.2 Détermination de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur les CSN issues de <strong>la</strong> SVZ in vitro<br />
perméabilisées avec une solution de PBS contenant 0,5% de triton X-100 pendant 30 minutes.<br />
L’activité <strong>des</strong> peroxydases endogènes est bloquée avec une solution d’H2O2 à 3% <strong>dans</strong> du<br />
PBS pendant 10 minutes à température ambiante. Après rinçages, les cellules sont incubées<br />
pendant 1 heure à 37°C en présence de 0,25 U.µl −1 d’enzyme Terminal Transferase<br />
(Boerhinger, Allemagne) et de 6 μM de dUTP biotinylé (Boehringer) <strong>dans</strong> un tampon<br />
contenant 30 mM de Tris HCl, 140 mM de Cacody<strong>la</strong>te de sodium et 1 mM de CoCl2. La<br />
réaction enzymatique est arrêtée par l’incubation <strong>des</strong> cellules <strong>dans</strong> du tampon contenant 300<br />
mM de NaCl et 30 mM de Citrate de sodium pendant 15 minutes à température ambiante.<br />
Après plusieurs rinçages <strong>dans</strong> du PBS, les dUTPs biotinylés sont détectés par le complexe<br />
Avidine-Biotine, l’activité peroxydase est révélée et les <strong>la</strong>melles montées comme<br />
précédemment décrit.<br />
2.2.7 Mesure de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur <strong>la</strong> différenciation cellu<strong>la</strong>ire<br />
L’étude de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur <strong>la</strong> différenciation <strong>des</strong> CSN s’est faite par traitement<br />
<strong>des</strong> cellules pendant 5 jours <strong>dans</strong> du SFM supplémenté ou non de 1 µg.ml -1 de S-warfarine.<br />
Cet effet a été évalué par l’immunomarquage d’antigènes spécifiques de neurones, de cellules<br />
gliales et d’oligodendrocytes comme décrit <strong>dans</strong> <strong>la</strong> partie 2.1.2 de cette partie expérimentale.<br />
2. 3 Détermination du rôle <strong>des</strong> PVKDs <strong>dans</strong> <strong>la</strong> SVZ in vivo<br />
2.3.1 Injection intracérébroventricu<strong>la</strong>ire de warfarine chez <strong>la</strong> souris<br />
Afin d’étudier in vivo l’effet de <strong>la</strong> suppression de <strong>la</strong> sécrétion <strong>des</strong> PVKDs sur <strong>la</strong><br />
prolifération <strong>des</strong> cellules de <strong>la</strong> SVZ, 1 μl de warfarine (100 µg) a été injecté <strong>dans</strong> les<br />
ventricules <strong>la</strong>téraux du cerveau de souris adultes. Une injection de 1 µl de NaCl 9‰ a été<br />
réalisée comme contrôle.<br />
Pour ce<strong>la</strong>, <strong>des</strong> souris âgées de 3 à 4 mois sont anesthésiées avec de l’avertine (100<br />
μl.g −1 ) puis p<strong>la</strong>cées <strong>dans</strong> un appareil stéréotaxique. Les injections sont réalisées <strong>dans</strong> le<br />
ventricule gauche à l’aide d’une seringue Hamilton. La seringue a été introduite aux<br />
coordonnées suivantes par rapport au Bregma : antérieur 0,76 mm ; <strong>la</strong>téral 0,6 mm ;<br />
profondeur 2,18 mm. 68 heures après l’injection, du BrdU (50 μg.mg −1 ) est administré par<br />
voie intra-péritonéale. Les animaux sont sacrifiés 4 heures après cette injection puis perfusés<br />
avec une solution de PFA à 4%. Les cerveaux sont extraits <strong>des</strong> boîtes crâniennes et postfixés<br />
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