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Implication des protéines vitamine K-dépendantes dans la ...

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2.2 Détermination de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur les CSN issues de <strong>la</strong> SVZ in vitro<br />

2.2.5 Mesure de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur <strong>la</strong> prolifération <strong>des</strong> cellules par<br />

incorporation de BrdU<br />

La prolifération <strong>des</strong> cellules de <strong>la</strong> SVZ a été évaluée par mesure de l’incorporation de<br />

BrdU, un analogue de <strong>la</strong> thymidine utilisé pour marquer les cellules en division. Lorsqu’il est<br />

ajouté <strong>dans</strong> les cultures ou administré à <strong>des</strong> animaux, le BrdU s’intègre <strong>dans</strong> l’ADN <strong>des</strong><br />

cellules en division lors de <strong>la</strong> phase S du cycle cellu<strong>la</strong>ire. Afin d’évaluer l’influence de <strong>la</strong> Swarfarine<br />

sur <strong>la</strong> prolifération <strong>des</strong> CSN, les cellules de rats nouveau-nés obtenues après 5 jours<br />

de culture <strong>dans</strong> du SFM contenant 20 ng.ml −1 d’EGF sont p<strong>la</strong>cées en présence de S-warfarine<br />

pendant 24 heures. Le BrdU (10 μM, Sigma) est ajouté pendant les 4 dernières heures de<br />

culture. Les cultures sont fixées <strong>dans</strong> du PFA 4%, rincées avec du PBS puis perméabilisées<br />

avec une solution de triton X-100 à 0,5 % pendant 30 minutes. L’ADN est dénaturé afin de<br />

permettre le démasquage du BrdU par une incubation pendant 3 minutes en présence de 0,125<br />

mg.ml −1 de pepsine <strong>dans</strong> une solution d’HCl à 0,1N, puis par deux incubations <strong>dans</strong> du HCl<br />

0,1N pendant 20 minutes à 4°C suivie de HCl 2N pendant 1 heure à 40°C. L’acidité est<br />

neutralisée par une incubation pendant 10 minutes à température ambiante <strong>dans</strong> du tampon<br />

borax (Na2B4O7/10H2O 0,1 M ; H3BO3 0,1 M, pH 8,4). Le BrdU est ensuite révélé par<br />

immunocytochimie. Pour ce<strong>la</strong>, les cellules sont préincubées pendant une heure <strong>dans</strong> un<br />

tampon de blocage composé de 1% BSA et 0,1 % triton X-100 puis p<strong>la</strong>cées en présence de 5<br />

μg.ml −1 d’anticorps monoclonaux rat anti-BrdU (Har<strong>la</strong>n Sera Lab, Royaume-Uni) durant une<br />

nuit à 4°C. Après rinçage, les cellules sont incubées pendant 2 heures à température ambiante<br />

en présence de 7 μg.ml −1 d’anticorps biotinylés de <strong>la</strong>pin anti-rat (Vector). Puis, les<br />

péroxydases endogènes sont bloquées avant <strong>la</strong> révé<strong>la</strong>tion de l’activité peroxydase exogène et<br />

le montage <strong>des</strong> <strong>la</strong>melles sont montées comme précédemment décrit. Le comptage <strong>des</strong> cellules<br />

est réalisé sous microscope en utilisant le logiciel Neurolucida. La prolifération est exprimée<br />

en pourcentage de cellules immunomarquées au BrdU par rapport au nombre total de cellules.<br />

2.2.6 Mesure de l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur l’apoptose par marquage TUNEL<br />

Afin d’évaluer l’effet <strong>des</strong> PVKDs sur <strong>la</strong> mort cellu<strong>la</strong>ire, nous avons procédé à une<br />

détection <strong>des</strong> cellules en apoptose. Lors de l’apoptose, l’ADN est dégradé en fragments qu’il<br />

est possible de détecter à l’aide de <strong>la</strong> technique TUNEL (TdT-mediated dUTP Nick End<br />

Labelling). Pour ce<strong>la</strong>, les cellules sont traitées avec 1 µg.ml -1 de S-warfarine pendant 24<br />

heures. A l’issue du traitement, les cellules sont fixées pendant 1 heure <strong>dans</strong> du PFA 4% puis<br />

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