Fonction et régulation de la protéine ICAP-1alpha dans la ...
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tel-00435843, version 1 - 24 Nov 2009 IV.5.4. ROCK Contrairement à Rac1 et Cdc42, aucun lien direct n’a été établi entre ICAP-1α et RhoA. Par contre, ICAP-1α semble interagir avec son effecteur ROCK (Stroeken, Alvarez et al. 2006). ICAP-1α contient deux sites d’interaction potentiels avec ROCK localisés aux deux extrémités de la protéine, dans le domaine PTB et dans la région N-terminale. Ces deux protéines forment un complexe entre elles en bordure membranaire, au niveau des ruffles, où elles colocalisent avec l’intégrine β1 et dans la queue de rétraction. ICAP-1α permettrait le recrutement de ROCK à la membrane. L’association entre ICAP-1α et ROCK et la localisation cellulaire de ce complexe sont induites par l’étalement cellulaire. Cependant, la fonction biologique de ce complexe ICAP-1α/ROCK dans les ruffles et dans la queue de rétraction membranaire reste inconnue. ROCK est impliqué dans la rétraction de la queue (Alblas, Ulfman et al. 2001; Worthylake, Lemoine et al. 2001; Worthylake and Burridge 2003) et dans la formation des lamellipodes (Takaishi, Sasaki et al. 1995; Pertz, Hodgson et al. 2006). ICAP-1α pourrait recruter ROCK à proximité de l’intégrine β1 pour localiser l’activité ROCK à la membrane. L’inhibition de ROCK dans les myocytes réduit la motilité cellulaire, diminue le nombre des adhérences focales et des fibres de stress d’actine et mime la perte d’ICAP-1α (Alvarez, Stroeken et al. 2008) suggérant une régulation positive de ROCK dépendante d’ICAP-1α. Figure 18 : Représentation de la multifonctionnalité d’ICAP-1α. La phosphorylation d’ICAP-1α pourrait induire un changement de conformation autorisant son interaction avec le domaine cytoplasmique de l’intégrine β1. Cette interaction empêche la liaison de la taline et bloque l’activation de l’intégrine. ICAP-1α interagit également avec d’autres partenaires comme Nm23-H2, Krit-1, Cdc42 et ROCK. Ces complexes pourraient initier des voies de signalisation spécifiques régulant l’expression génique, la migration cellulaire ou moduler le recrutement de protéines à proximité de l’intégrine β1. Introduction | 51
tel-00435843, version 1 - 24 Nov 2009 IV.6. Invalidation fonctionnelle du gène Icap-1 chez la souris Afin d’étudier la fonction d’ICAP-1α in vivo, l’invalidation du gène codant pour la protéine ICAP-1α chez la souris a été effectuée par recombinaison homologue (Bouvard, Aszodi et al. 2007). Le gène rapporteur lacZ a été inséré dans l’exon 2 en phase avec l’ATG initiateur du gène Icap-1, ce qui a permis de suivre le patron d’expression de la protéine au cours de l’embryogénèse et chez l’animal adulte. Durant l’embryogénèse, l’expression d’ICAP-1α est détectée dès 8,5 jours post-coïtum (E8,5) dans le mésenchyme facial et dans l’ébauche de cœur et s’étend au tissu neural à E9,5. Comme chez l’homme (Zhang and Hemler 1999), l’expression d’ICAP-1α atteint un niveau ubiquitaire avec des variations d’expression selon le type cellulaire et le tissu, à l’exception du foie où ICAP-1α est absent. Comme il a été précédemment montré (Faisst and Gruss 1998), ICAP-1α est très exprimée dans le cerveau, plus spécifiquement dans le cervelet, le striatum, le bulbe olfactif et les cellules de Purkinje. Alors que l’invalidation fonctionnelle du gène codant pour l’intégrine β1 induit une létalité péri-implantatoire, la déficience en ICAP-1α est moins sévère suggérant un rôle subtil de cette protéine dans la régulation de l’intégrine β1 et ce d’autant plus qu’aucune redondance avec ICAP-1α n’a été identifié. Les souris Icap-1 -/- sont plus petites à la naissance par rapport aux souris de type sauvage et présentent des défauts neurologiques sévères avec une réduction de l’activité et une ataxie. A l’âge adulte, les souris mutantes sont moribondes. La perte d’ICAP-1α engendre une importante malformation craniofaciale caractérisée par un crâne bombé, un museau raccourci et élargi et des yeux gonflés. Ce phénotype cranial est du à un défaut d’ossification de la suture métopique qui reste ouverte engendrant une malformation des os craniaux. Des défauts osseux sont également présents dans les vertèbres et l’os pelvien. Les sutures osseuses de la voûte crânienne se forment à l’interface de deux populations ostéoblastiques composées de progéniteurs ostéogéniques se différenciant en ostéoblastes, appelées fronts ostéogéniques, séparées par un mésenchyme inter-sutural. ICAP-1α est exprimé dans les sutures au niveau des progéniteurs ostéoblastiques et dans le mésenchyme entre les deux fronts Chez les souris Icap-1 -/- , un défaut de prolifération des progéniteurs ostéoblastiques réduit le front ostéogénique et corrèle avec la fonction d’ICAP-1α dans la prolifération cellulaire (Fournier, Dupe-Manet et al. 2005). D’autre part, la différenciation des ostéoblastes est un processus multi-étapes qui requiert tout d’abord une condensation des cellules du mésenchyme qui formeront le front ostéogénique (Hall and Miyake 2000). Cette population cellulaire condensée va ensuite se différencier et exprimer différents marqueurs ostéoblastiques comme Runx2. Chez les souris Icap-1 -/- , la capacité de compaction de cellules est sévèrement réduite et l’expression de Runx2 dans le front ostéogénique est significativement réduite, suggérant un rôle d’ICAP-1α dans la différenciation ostéoblastique. Les défauts de prolifération et de différenciation des ostéoblastes des souris Icap-1 -/conduisent à une ostéogénèse imparfaite. Cette anomalie de la différenciation ostéoblastique des souris mutantes provient d’un défaut de régulation de l’activité de l’intégrine β1 qui présente une affinité élevée pour son ligand. En effet, l’intégrine β1 joue un rôle important dans la différenciation des ostéoblastes in vitro ainsi que dans la prolifération cellulaire (Moursi, Globus et al. 1997; Zimmerman, Jin et al. 2000). L’activation de l’intégrine β1 provoque un défaut de différenciation in vitro des progéniteurs ostéoblastiques, de façon similaire aux cellules Icap-1 -/- (Bouvard, Aszodi et al. 2007). Ces résultats démontrent pour la première fois la nécessité d’une régulation de l’affinité des intégrines dans le développement osseux. En régulant l’affinité de l’intégrine β1, la protéine ICAP-1α constitue un véritable régulateur de l’ostéogénèse, contrôlant à la fois la prolifération et la différenciation des progéniteurs ostéoblastiques. Introduction | 52
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IV.6. Invalidation fonctionnelle du gène Icap-1 chez <strong>la</strong> souris<br />
Afin d’étudier <strong>la</strong> fonction d’<strong>ICAP</strong>-1α in vivo, l’invalidation du gène codant pour <strong>la</strong> <strong>protéine</strong><br />
<strong>ICAP</strong>-1α chez <strong>la</strong> souris a été effectuée par recombinaison homologue (Bouvard, Aszodi <strong>et</strong> al.<br />
2007). Le gène rapporteur <strong>la</strong>cZ a été inséré <strong>dans</strong> l’exon 2 en phase avec l’ATG initiateur du<br />
gène Icap-1, ce qui a permis <strong>de</strong> suivre le patron d’expression <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>protéine</strong> au cours <strong>de</strong><br />
l’embryogénèse <strong>et</strong> chez l’animal adulte. Durant l’embryogénèse, l’expression d’<strong>ICAP</strong>-1α est<br />
détectée dès 8,5 jours post-coïtum (E8,5) <strong>dans</strong> le mésenchyme facial <strong>et</strong> <strong>dans</strong> l’ébauche <strong>de</strong><br />
cœur <strong>et</strong> s’étend au tissu neural à E9,5. Comme chez l’homme (Zhang and Hemler 1999),<br />
l’expression d’<strong>ICAP</strong>-1α atteint un niveau ubiquitaire avec <strong>de</strong>s variations d’expression selon le<br />
type cellu<strong>la</strong>ire <strong>et</strong> le tissu, à l’exception du foie où <strong>ICAP</strong>-1α est absent. Comme il a été<br />
précé<strong>de</strong>mment montré (Faisst and Gruss 1998), <strong>ICAP</strong>-1α est très exprimée <strong>dans</strong> le cerveau,<br />
plus spécifiquement <strong>dans</strong> le cervel<strong>et</strong>, le striatum, le bulbe olfactif <strong>et</strong> les cellules <strong>de</strong> Purkinje.<br />
Alors que l’invalidation fonctionnelle du gène codant pour l’intégrine β1 induit une létalité<br />
péri-imp<strong>la</strong>ntatoire, <strong>la</strong> déficience en <strong>ICAP</strong>-1α est moins sévère suggérant un rôle subtil <strong>de</strong><br />
c<strong>et</strong>te <strong>protéine</strong> <strong>dans</strong> <strong>la</strong> <strong>régu<strong>la</strong>tion</strong> <strong>de</strong> l’intégrine β1 <strong>et</strong> ce d’autant plus qu’aucune redondance<br />
avec <strong>ICAP</strong>-1α n’a été i<strong>de</strong>ntifié. Les souris Icap-1 -/- sont plus p<strong>et</strong>ites à <strong>la</strong> naissance par rapport<br />
aux souris <strong>de</strong> type sauvage <strong>et</strong> présentent <strong>de</strong>s défauts neurologiques sévères avec une réduction<br />
<strong>de</strong> l’activité <strong>et</strong> une ataxie. A l’âge adulte, les souris mutantes sont moribon<strong>de</strong>s. La perte<br />
d’<strong>ICAP</strong>-1α engendre une importante malformation craniofaciale caractérisée par un crâne<br />
bombé, un museau raccourci <strong>et</strong> é<strong>la</strong>rgi <strong>et</strong> <strong>de</strong>s yeux gonflés. Ce phénotype cranial est du à un<br />
défaut d’ossification <strong>de</strong> <strong>la</strong> suture métopique qui reste ouverte engendrant une malformation<br />
<strong>de</strong>s os craniaux. Des défauts osseux sont également présents <strong>dans</strong> les vertèbres <strong>et</strong> l’os pelvien.<br />
Les sutures osseuses <strong>de</strong> <strong>la</strong> voûte crânienne se forment à l’interface <strong>de</strong> <strong>de</strong>ux popu<strong>la</strong>tions<br />
ostéob<strong>la</strong>stiques composées <strong>de</strong> progéniteurs ostéogéniques se différenciant en ostéob<strong>la</strong>stes,<br />
appelées fronts ostéogéniques, séparées par un mésenchyme inter-sutural. <strong>ICAP</strong>-1α est<br />
exprimé <strong>dans</strong> les sutures au niveau <strong>de</strong>s progéniteurs ostéob<strong>la</strong>stiques <strong>et</strong> <strong>dans</strong> le mésenchyme<br />
entre les <strong>de</strong>ux fronts Chez les souris Icap-1 -/- , un défaut <strong>de</strong> prolifération <strong>de</strong>s progéniteurs<br />
ostéob<strong>la</strong>stiques réduit le front ostéogénique <strong>et</strong> corrèle avec <strong>la</strong> fonction d’<strong>ICAP</strong>-1α <strong>dans</strong> <strong>la</strong><br />
prolifération cellu<strong>la</strong>ire (Fournier, Dupe-Man<strong>et</strong> <strong>et</strong> al. 2005).<br />
D’autre part, <strong>la</strong> différenciation <strong>de</strong>s ostéob<strong>la</strong>stes est un processus multi-étapes qui requiert tout<br />
d’abord une con<strong>de</strong>nsation <strong>de</strong>s cellules du mésenchyme qui formeront le front ostéogénique<br />
(Hall and Miyake 2000). C<strong>et</strong>te popu<strong>la</strong>tion cellu<strong>la</strong>ire con<strong>de</strong>nsée va ensuite se différencier <strong>et</strong><br />
exprimer différents marqueurs ostéob<strong>la</strong>stiques comme Runx2. Chez les souris Icap-1 -/- , <strong>la</strong><br />
capacité <strong>de</strong> compaction <strong>de</strong> cellules est sévèrement réduite <strong>et</strong> l’expression <strong>de</strong> Runx2 <strong>dans</strong> le<br />
front ostéogénique est significativement réduite, suggérant un rôle d’<strong>ICAP</strong>-1α <strong>dans</strong> <strong>la</strong><br />
différenciation ostéob<strong>la</strong>stique.<br />
Les défauts <strong>de</strong> prolifération <strong>et</strong> <strong>de</strong> différenciation <strong>de</strong>s ostéob<strong>la</strong>stes <strong>de</strong>s souris Icap-1 -/conduisent<br />
à une ostéogénèse imparfaite. C<strong>et</strong>te anomalie <strong>de</strong> <strong>la</strong> différenciation ostéob<strong>la</strong>stique<br />
<strong>de</strong>s souris mutantes provient d’un défaut <strong>de</strong> <strong>régu<strong>la</strong>tion</strong> <strong>de</strong> l’activité <strong>de</strong> l’intégrine β1 qui<br />
présente une affinité élevée pour son ligand. En eff<strong>et</strong>, l’intégrine β1 joue un rôle important<br />
<strong>dans</strong> <strong>la</strong> différenciation <strong>de</strong>s ostéob<strong>la</strong>stes in vitro ainsi que <strong>dans</strong> <strong>la</strong> prolifération cellu<strong>la</strong>ire<br />
(Moursi, Globus <strong>et</strong> al. 1997; Zimmerman, Jin <strong>et</strong> al. 2000). L’activation <strong>de</strong> l’intégrine β1<br />
provoque un défaut <strong>de</strong> différenciation in vitro <strong>de</strong>s progéniteurs ostéob<strong>la</strong>stiques, <strong>de</strong> façon<br />
simi<strong>la</strong>ire aux cellules Icap-1 -/- (Bouvard, Aszodi <strong>et</strong> al. 2007). Ces résultats démontrent pour <strong>la</strong><br />
première fois <strong>la</strong> nécessité d’une <strong>régu<strong>la</strong>tion</strong> <strong>de</strong> l’affinité <strong>de</strong>s intégrines <strong>dans</strong> le développement<br />
osseux. En régu<strong>la</strong>nt l’affinité <strong>de</strong> l’intégrine β1, <strong>la</strong> <strong>protéine</strong> <strong>ICAP</strong>-1α constitue un véritable<br />
régu<strong>la</strong>teur <strong>de</strong> l’ostéogénèse, contrô<strong>la</strong>nt à <strong>la</strong> fois <strong>la</strong> prolifération <strong>et</strong> <strong>la</strong> différenciation <strong>de</strong>s<br />
progéniteurs ostéob<strong>la</strong>stiques.<br />
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