Fonction et régulation de la protéine ICAP-1alpha dans la ...
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tel-00435843, version 1 - 24 Nov 2009<br />
<strong>et</strong> Cdc42 pour les filopo<strong>de</strong>s (Ridley, Paterson <strong>et</strong> al. 1992; Kozma, Ahmed <strong>et</strong> al. 1995; Nobes<br />
and Hall 1995; Nobes and Hall 1995).<br />
Traction<br />
Lors <strong>de</strong> <strong>la</strong> migration, le dép<strong>la</strong>cement du corps cellu<strong>la</strong>ire est assuré par une re<strong>la</strong>tion dynamique<br />
hautement régulée entre un assemb<strong>la</strong>ge <strong>de</strong>s structures adhérentes à l’avant <strong>de</strong> <strong>la</strong> cellule <strong>et</strong> un<br />
désassemb<strong>la</strong>ge <strong>de</strong>s adhérences à <strong>la</strong> base du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> <strong>et</strong> à l’arrière <strong>de</strong> <strong>la</strong> cellule (Figure<br />
12C). Les adhérences sont donc soumises à <strong>de</strong>s cycles d’assemb<strong>la</strong>ge <strong>et</strong> <strong>de</strong> désassemb<strong>la</strong>ge<br />
(Webb, Parsons <strong>et</strong> al. 2002).<br />
Les complexes focaux au niveau du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> stabilisent <strong>la</strong> protrusion <strong>de</strong> <strong>la</strong> membrane en<br />
créant <strong>de</strong>s points d’ancrage au réseau <strong>de</strong> fi<strong>la</strong>ments d’actine du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> (Figure 13)<br />
(Zai<strong>de</strong>l-Bar, Ballestrem <strong>et</strong> al. 2003). Elles se développent ensuite en adhérences focales plus<br />
stables <strong>et</strong> plus gran<strong>de</strong>s qui recrutent davantage <strong>de</strong> <strong>protéine</strong>s. Une fois en p<strong>la</strong>ce, ces adhérences<br />
restent stationnaires à l’égard <strong>de</strong> <strong>la</strong> MEC (Ballestrem, Hinz <strong>et</strong> al. 2001; Zai<strong>de</strong>l-Bar,<br />
Ballestrem <strong>et</strong> al. 2003) <strong>et</strong> sont utilisées, avec les adhérences précoces, comme points d’appui<br />
aux forces exercées par le cytosquel<strong>et</strong>te d’actine (Beningo, Dembo <strong>et</strong> al. 2001) (Figure 13).<br />
Ce sont <strong>de</strong>s embrayages molécu<strong>la</strong>ires qui convertissent <strong>la</strong> force générée par <strong>la</strong> polymérisation<br />
<strong>de</strong> l’actine en protrusion membranaire <strong>et</strong> <strong>la</strong> traction exercée par le système actino-myosine en<br />
force <strong>de</strong> propulsion du corps cellu<strong>la</strong>ire (Ponti, Machacek <strong>et</strong> al. 2004).<br />
Rétraction<br />
Les adhérences focales localisées à l’extrémité postérieure limitent le dép<strong>la</strong>cement <strong>de</strong> <strong>la</strong><br />
cellule (Munevar, Wang <strong>et</strong> al. 2001). Contrairement aux adhérences focales localisées au front<br />
<strong>de</strong> migration, celles-ci ne sont pas stables envers le substrat <strong>et</strong> <strong>la</strong> po<strong>la</strong>risation <strong>de</strong>s mécanismes<br />
d’assemb<strong>la</strong>ge <strong>et</strong> <strong>de</strong> désassemb<strong>la</strong>ge au sein <strong>de</strong> l’adhérence donne une impression <strong>de</strong> glissement<br />
sur le substrat (Ballestrem, Hinz <strong>et</strong> al. 2001). Ces adhérences serviraient plutôt à orienter les<br />
fibres <strong>de</strong> stress d’actine afin <strong>de</strong> maintenir <strong>la</strong> direction <strong>de</strong> migration (Rid, Schiefermeier <strong>et</strong> al.<br />
2005). Leur désorganisation semble être induite par le cytosquel<strong>et</strong>te d’actine qui, en se<br />
contractant induit <strong>la</strong> rétraction <strong>de</strong> <strong>la</strong> queue arrière (Iwanicki, Vomastek <strong>et</strong> al. 2008). La<br />
résultante <strong>de</strong> ces processus perm<strong>et</strong> le dép<strong>la</strong>cement du corps cellu<strong>la</strong>ire vers l’avant puis un<br />
nouveau cycle commence (Smilenov, Mikhailov <strong>et</strong> al. 1999; Rid, Schiefermeier <strong>et</strong> al. 2005;<br />
Vicente-Manzanares, Webb <strong>et</strong> al. 2005; Webb, Zhang <strong>et</strong> al. 2005).<br />
Figure 12 : La migration cellu<strong>la</strong>ire <strong>et</strong> <strong>la</strong> dynamique <strong>de</strong>s sites d’adhérence.<br />
A. Images prises au microscope confocal (Zeiss, LSM510) d’un fibrob<strong>la</strong>ste étalé sur fibronectine <strong>et</strong> immunomarqué<br />
pour visualiser <strong>la</strong> taline <strong>et</strong> l’actine. Le front <strong>de</strong> migration d’une cellule est constitué d’un <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> <strong>et</strong><br />
<strong>la</strong> région postérieure d’une queue <strong>de</strong> rétraction. En périphérie du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong>, <strong>la</strong> membrane p<strong>la</strong>smique peut être<br />
plus lâche <strong>et</strong> former <strong>de</strong>s ruffles (visualisés par marquage <strong>de</strong> l’actine). Les complexes focaux (Fx) se localisent au<br />
bord du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> <strong>et</strong> les adhérences focales (Fa) à l’arrière du <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> <strong>et</strong> <strong>dans</strong> <strong>la</strong> queue <strong>de</strong> rétraction. Ces<br />
<strong>de</strong>ux structures connectent <strong>de</strong>s structures distinctes d’actine : l’actine en réseau pour les complexes focaux, <strong>et</strong> les<br />
fibres <strong>de</strong> stress d’actine pour les adhérences focales. Echelle : 10µm.<br />
B. Représentation schématique d’une cellule en migration. Les cellules peuvent développer à l’avant du front <strong>de</strong><br />
migration un autre type <strong>de</strong> protrusion en forme <strong>de</strong> doigt, les filopo<strong>de</strong>s (Fp). Abréviations : Lp, <strong>la</strong>mellipo<strong>de</strong> ; FC,<br />
complexes focaux ou adhérences précoces ; FA, adhérences focales ; Lm, <strong>la</strong>mel<strong>la</strong> ; SF, fibres <strong>de</strong> stress d’actine.<br />
D’après (Le C<strong>la</strong>inche and Carlier 2008).<br />
C. Dynamique d’assemb<strong>la</strong>ge <strong>et</strong> <strong>de</strong> désassemb<strong>la</strong>ge <strong>de</strong>s adhérences focales <strong>dans</strong> une cellule en migration.<br />
(a) Des cellules exprimant <strong>la</strong> <strong>protéine</strong> VASP, un marqueur <strong>de</strong>s adhérences fusionnés à <strong>la</strong> EGFP (Enhanced Green<br />
Fluorescent Protein) <strong>et</strong> étalées sur fibronectine sont observées au microscope inversé (Axiovert200M, Zeiss).<br />
Des images sont acquises à 3 minutes d’intervalle sur une pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> 6 heures. (b) Agrandissement du front <strong>de</strong><br />
migration (encart en a). Le dép<strong>la</strong>cement du corps cellu<strong>la</strong>ire est assuré par <strong>de</strong>s cycles d’assemb<strong>la</strong>ge <strong>et</strong> <strong>de</strong><br />
désassemb<strong>la</strong>ge <strong>de</strong>s adhérences focales au front <strong>de</strong> migration (têtes <strong>de</strong> flèche en b) combinés au désassemb<strong>la</strong>ge<br />
<strong>de</strong>s adhérences à l’arrière (tête <strong>de</strong> flèche en a). Echelle : 10µm.<br />
Introduction | 32