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Plantes de jours longs - IJPB - Inra

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LA PLANTE ET SON ENVIRONNEMENT<br />

Contraintes abiotiques<br />

Contraintes biotiques<br />

O 3<br />

Herbici<strong>de</strong><br />

Chaleur<br />

Gel<br />

Froid<br />

Sécheresse<br />

Température<br />

Pathogènes<br />

Les « vores »<br />

Blessures<br />

Salinité<br />

Sels minéraux<br />

Inondation<br />

A. Savouré (Univ. PVI)<br />

Métaux lourds<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


1) Introduction, environnement et floraison<br />

La floraison est l'un <strong>de</strong>s caractères qui déterminent le cycle <strong>de</strong> vie d'une plante et<br />

son succès reproducteur<br />

La date <strong>de</strong> floraison détermine la durée <strong>de</strong> la phase végétative et <strong>de</strong> la phase<br />

reproductive dans le cycle <strong>de</strong> vie d'une plante<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Objectifs:<br />

- Montrer quels sont les mécanismes biologiques, physiologiques et biochimiques mis<br />

en jeu par les végétaux dans leurs réponses aux facteurs contraignants <strong>de</strong> leur<br />

environnement.<br />

- Comprendre les mécanismes d’adaptation et <strong>de</strong> plasticité.<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


“ La Plante et son Environnement ”<br />

La floraison:<br />

Apports <strong>de</strong> la physiologie moléculaire<br />

Philippe Grappin<br />

grappin@versailles.inra.fr<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Plan<br />

1) Introduction, environnement et floraison<br />

2) Modèle physiologique <strong>de</strong> la floraison<br />

3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

6) Intérêts biotechnologiques<br />

7) Conclusion<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


1) Introduction, environnement et floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


1) Introduction, environnement et floraison<br />

Fleurir: un choix capital pour la plante<br />

- Lieu: méristème (vient <strong>de</strong> meristos=division)<br />

= Massif <strong>de</strong> cellules embryonnaires qui se divisent et donnent naissance à<br />

- tige, feuilles, racines (méristème végétatif)<br />

- la fleur (méristème reproducteur)<br />

végétatif<br />

floral<br />

transition<br />

- Transition irréversible<br />

- Si se produit au mauvais moment, conséquences sur la qualité <strong>de</strong>s graines<br />

Synchronisation <strong>de</strong> la floraison avec une saison favorable<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


L’induction florale est la pério<strong>de</strong> où certains organes <strong>de</strong> la plante, sous l’effet <strong>de</strong><br />

stimulus extérieurs, envoient au méristème un message, le signal <strong>de</strong> floraison.<br />

L’évocation florale est la pério<strong>de</strong> où le méristème se réorganise en fonction <strong>de</strong> ce<br />

programme.<br />

Elle correspond à une réorganisation <strong>de</strong> l’architecture <strong>de</strong> l’apex, préparatoire à la<br />

différenciation <strong>de</strong>s ébauches. florale.<br />

L’initiation florale est la pério<strong>de</strong> où se différencient les ébauches <strong>de</strong>s pièces<br />

florales (changements morphologiques, qui peu à peu vont lui donner 1’aspect d’un<br />

méristème préfloral ou, dans le cas d’une inflorescence, d’un méristème<br />

inflorescentiel).<br />

La floraison se manifeste par le développement <strong>de</strong>s pièces florales (sépales, pétales,<br />

étamines et carpelles), la méiose suivie <strong>de</strong> la formation <strong>de</strong>s gamètes, le débourrement<br />

<strong>de</strong>s bourgeons et enfin l’épanouissement <strong>de</strong> la fleur.<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


1) Introduction, environnement et floraison<br />

Il existe <strong>de</strong> gran<strong>de</strong>s variations entre espèces, mais aussi à l'intérieur d'une espèce, pour les<br />

stratégies <strong>de</strong> floraison, qui sont déterminées par l'environnement abiotique (photopério<strong>de</strong>,<br />

température, nutriments) ou biotique (compétition pour la lumière, herbivores, pollinisateurs)<br />

Climat tempéré : les contraintes principales sont les pério<strong>de</strong>s froi<strong>de</strong>s durant l'hiver<br />

→ vernalisation permet d'ajuster la date <strong>de</strong> floraison (blé, orge, pois, A. thaliana)<br />

Climat tropical : la photopério<strong>de</strong> est un indicateur <strong>de</strong> la transition entre saison sèche<br />

et saison humi<strong>de</strong><br />

→ sensibilité à la photopério<strong>de</strong><br />

plantes <strong>de</strong> <strong>jours</strong> courts / plantes <strong>de</strong> <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Autres facteurs environnementaux : lumière, température, nutriments, hormones<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


semis Phase végétative floraison Maturation <strong>de</strong>s récolte<br />

développement <strong>de</strong>s<br />

graines<br />

feuilles<br />

avril juillet/aout octobre<br />

Limitant<br />

Culture du maïs en région tempérée. La floraison précoce pour permettre la maturation<br />

<strong>de</strong>s graines, mais les plantes sont sensibles au gel et l'ensemble du cycle doit se<br />

dérouler entre avril et octobre.<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


1) Introduction, environnement et floraison<br />

Plusieurs voies à intégrer<br />

Lumière<br />

-Longueur<br />

-Qualité<br />

Température<br />

-Ambiante<br />

-Pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> froid<br />

Développement<br />

Hormone (GA)<br />

Age, Sucre, rapport C/N<br />

Détection / Transduction <strong>de</strong>s signaux<br />

Intégrateurs floraux<br />

Transition florale<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


2) Modèle physiologique <strong>de</strong> la floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


2) Modèle physiologique <strong>de</strong> la floraison<br />

Plusieurs types <strong>de</strong> plantes<br />

- <strong>Plantes</strong> <strong>de</strong> <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

La plante fleurit printemps-été, quand les <strong>jours</strong> sont <strong>longs</strong><br />

ex: Arabidopsis, pois, œillet…<br />

- <strong>Plantes</strong> <strong>de</strong> <strong>jours</strong> courts<br />

La plante fleurit automne-hiver, quand les <strong>jours</strong> sont courts<br />

ex: riz, soja, caféier, chrysanthème…<br />

- <strong>Plantes</strong> indifférentes<br />

La plante est indifférente à la longueur du jour<br />

ex: concombre, tomate, pomme <strong>de</strong> terre…<br />

- <strong>Plantes</strong> aphotiques<br />

La plante est capable <strong>de</strong> fleurir à l’obscurité<br />

ex: jacinthe<br />

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2) Modèle physiologique <strong>de</strong> la floraison<br />

Photorécepteurs<br />

- Perçoivent la qualité <strong>de</strong> la lumière<br />

Phytochromes: perçoivent le rouge et le rouge lointain<br />

Cryptochromes: perçoivent le bleu<br />

400 500 600 700 nm<br />

- I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s photorécepteurs par analyse <strong>de</strong> mutants<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


2) Modèle physiologique <strong>de</strong> la floraison<br />

Modèle <strong>de</strong> coinci<strong>de</strong>nce pour la floraison<br />

Modèle <strong>de</strong> coinci<strong>de</strong>nce externe (Pittendrigh and Minnis):<br />

En <strong>jours</strong> <strong>longs</strong>, la phase lumineuse coinci<strong>de</strong> à la présence d’un facteur<br />

régulé <strong>de</strong> façon circadienne<br />

- induit la floraison <strong>de</strong>s plantes <strong>de</strong> <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

- inhibe ou retar<strong>de</strong> la floraison <strong>de</strong>s plantes <strong>de</strong> <strong>jours</strong> courts<br />

Modèle <strong>de</strong> coinci<strong>de</strong>nce externe<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

Génétique moléculaire :<br />

on exploite les variations / modifications <strong>de</strong> séquences (aléatoires/ciblées,<br />

induites /naturelles) sur un génome entre individus (affectent l’activité d’un gène):<br />

Génétique forward (phénotype<br />

gène)<br />

1- I<strong>de</strong>ntifier un gène impliqué dans une fonction biologique<br />

Génétique reverse (gène<br />

phénotype)<br />

2- Démontrer la fonction d’un gène<br />

3- Caractériser les mo<strong>de</strong>s d’action <strong>de</strong>s produits <strong>de</strong> ce gène, dans la plante, la<br />

cellule et avec d’autres molécules partenaires<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

Approche globale pour caractériser <strong>de</strong><br />

nouvelles fonctions biologiques :<br />

Question biologique<br />

Physiologie<br />

Biochimie<br />

Rôle fonctionnel<br />

Vision Globale<br />

- Régulation<br />

- Interaction<br />

- Métabolisme<br />

Relation entre<br />

phénotype et biochimie<br />

Génomique<br />

fonctionnelle<br />

Hypothèses <strong>de</strong> travail<br />

Ressources génétiques<br />

- Génétique inverse<br />

- Diversité allélique<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

Durée<br />

d’éclairement<br />

journalier<br />

Floraison<br />

Voie autonome<br />

Photopério<strong>de</strong><br />

FRI<br />

FLC<br />

Vernalisation<br />

GA<br />

CO<br />

FD, SOC, FT<br />

(intégrateurs <strong>de</strong> floraison)<br />

PNY, PNF<br />

LFY, AP1<br />

(Méristème floral,<br />

gènes d’i<strong>de</strong>ntité)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Découverte <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> en 1920<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

La photopério<strong>de</strong> est perçue par les feuilles signal = florigène<br />

Greffon<br />

non induit<br />

Greffon<br />

non induit<br />

Porte-greffe<br />

induit<br />

Porte-greffe<br />

Non induit<br />

Bryophyllum diagremontianum<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Induction <strong>de</strong> la floraison en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong> chez Arabidopsis<br />

30 <strong>jours</strong> après germination<br />

Jours courts<br />

(12h <strong>de</strong> lumière)<br />

Jours <strong>longs</strong><br />

(16h <strong>de</strong> lumière)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s régulateurs <strong>de</strong> la floraison<br />

Génétique classique : recherche <strong>de</strong> mutants à floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

3 Classes<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison normale en <strong>jours</strong> courts<br />

Insensible à la vernalisation<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Floraison précoce après vernalisation<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Affecté dans la synthèse ou réponse aux gibbérellines<br />

Les doubles mutants d’un même groupe sont i<strong>de</strong>ntiques<br />

Les doubles mutants issus <strong>de</strong> 2 groupes ont un phénotype additif<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s régulateurs <strong>de</strong> la floraison<br />

Génétique classique : recherche <strong>de</strong> mutants à floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

3 Classes<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison normale en <strong>jours</strong> courts<br />

Insensible à la vernalisation<br />

On bloque un inducteur en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

co, ft, gi, cry2<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Floraison précoce après vernalisation<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Affecté dans la synthèse ou réponse aux gibbérellines<br />

Les doubles mutants d’un même groupe sont i<strong>de</strong>ntiques<br />

Les doubles mutants issus <strong>de</strong> 2 groupes ont un phénotype additif<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s régulateurs <strong>de</strong> la floraison<br />

Génétique classique : recherche <strong>de</strong> mutants à floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

3 Classes<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison normale en <strong>jours</strong> courts<br />

Insensible à la vernalisation<br />

On bloque un inducteur en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

co, ft, gi, cry2<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Floraison précoce après vernalisation<br />

On bloque un inhibiteur d’inhibiteur <strong>de</strong> floraison<br />

fca, fpa, fy, ld<br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Floraison tardive en <strong>jours</strong> courts<br />

Affecté dans la synthèse ou réponse aux gibbérellines<br />

On bloque l’induction hormonale<br />

ga1, gai<br />

Les doubles mutants d’un même groupe sont i<strong>de</strong>ntiques<br />

Les doubles mutants issus <strong>de</strong> 2 groupes ont un phénotype additif<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Jours<br />

Longs<br />

CO<br />

FT<br />

Floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

La surexpression <strong>de</strong> CO ou <strong>de</strong> FT est suffisante pour induire<br />

une floraison précoce, même en <strong>jours</strong> courts<br />

35S::CO<br />

Confirmation <strong>de</strong>s propriétés d’induction <strong>de</strong> CO et <strong>de</strong> FT<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

CO induit l’accumulation <strong>de</strong> l’ARN FT<br />

WT 35S CO<br />

CO<br />

ARN FT<br />

Hepworth et al., 2002<br />

JL induisent FT part le biais <strong>de</strong> CO<br />

Micro-arrays<br />

JL<br />

CO<br />

ARN FT<br />

Wigge et al., 2005<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Oscillation cyclique <strong>de</strong> l’accumulation <strong>de</strong> l’ARNm CO<br />

Les mutants <strong>de</strong> gènes impliqués dans le rythme circadien ont <strong>de</strong>s phénotypes <strong>de</strong> floraison altérée<br />

ARNm CO régulé par le rythme circadien<br />

ARN <strong>de</strong> CO chez les mutants<br />

lhy et gi perturbés dans le<br />

rythme circadien<br />

Horloge<br />

GI<br />

LHY<br />

ARN CO<br />

Suarez-Lopez et al., 2001<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Certains types <strong>de</strong> lumière stabilisent la protéine CO<br />

35S:GFP::CO<br />

Condition <strong>de</strong> lumière<br />

favorable à l’activation<br />

<strong>de</strong> CO<br />

Condition <strong>de</strong> lumière<br />

favorable à l’inactivation<br />

<strong>de</strong> CO<br />

Lumière<br />

Obscurité<br />

Protéine CO<br />

Coupland 2005<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Rythme circadien<br />

Photopério<strong>de</strong><br />

Stabilité à la lumière<br />

35S:GFP::CO<br />

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4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Modèle <strong>de</strong> régulation <strong>de</strong> la floraison par CO<br />

Hiver<br />

Jours courts<br />

Jours <strong>longs</strong><br />

Printemps<br />

ARNm<br />

CO<br />

Protéine CO<br />

Dégradée à l’obscurité<br />

24 heures<br />

Protéine CO<br />

produite à la<br />

lumière<br />

gène FT<br />

FT n’est pas exprimé<br />

gène FT exprimé<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


La photopério<strong>de</strong> est perçue par les feuilles signal = florigène<br />

Greffon<br />

non induit<br />

Greffon<br />

non induit<br />

Porte-greffe<br />

induit<br />

Porte-greffe<br />

Non induit<br />

Bryophyllum diagremontianum<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Facteur migrant <strong>de</strong>s feuilles au méristème : ARNm ou protéine FT ?<br />

Induction florale<br />

Jours courts Jours long Jours courts<br />

ARNm FT<br />

ARN FT = florigène ?<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Facteur migrant <strong>de</strong>s feuilles au méristème : ARNm ou protéine FT ?<br />

Induction florale<br />

Jours courts Jours long Jours courts<br />

ARNm FT<br />

ARN FT = florigène ?<br />

La protéine FT-GFP est détectée au<br />

niveau du meristème mais pas<br />

l’ARNm FT (hybridation in situ)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Facteur migrant <strong>de</strong>s feuilles au méristème : ARNm ou protéine FT ?<br />

Induction florale<br />

Jours courts Jours long Jours courts<br />

ARNm FT<br />

ARN FT = florigène ?<br />

Portegreffe<br />

Greffon<br />

La protéine FT-GFP est détectée au<br />

niveau du meristème mais pas<br />

l’ARNm FT (hybridation in situ)<br />

Mouvement <strong>de</strong> FT-GFP du<br />

porte-greffe au greffon<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

FD est nécessaire pour l’induction florale via FT<br />

Le phénotype floraison précoce <strong>de</strong> 35S::FT est aboli dans un fond mutant fd<br />

Wigge et al., 2005<br />

FT<br />

FD<br />

Floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Résumé sur les acteurs <strong>de</strong> la voie <strong>de</strong>s <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Jours <strong>longs</strong><br />

Photorécepteurs<br />

Horloge<br />

circadienne<br />

CONSTANS<br />

FT<br />

LFY<br />

Transition florale<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Réseau <strong>de</strong> régulation <strong>de</strong> la floraison complexe<br />

Voie autonome<br />

BLH11<br />

BLH4= SAW2<br />

Photopério<strong>de</strong><br />

Vernalisation<br />

BLH2= SAW1<br />

BEL1<br />

PNY<br />

CO<br />

ATH1<br />

FRI<br />

FLC<br />

GA<br />

PNF<br />

BLH5<br />

BLH1<br />

ATH1<br />

GIGANTEA<br />

BLH3 BLH10<br />

FD, SOC, FT<br />

(intégrateurs <strong>de</strong> floraison)<br />

PNY, PNF<br />

BLH7<br />

BLH6<br />

BLH3<br />

BLH10<br />

LFY, AP1<br />

(Méristème floral,<br />

gènes d’i<strong>de</strong>ntité)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong>s gènes <strong>de</strong> floraison du riz sur la base <strong>de</strong><br />

similitu<strong>de</strong>s <strong>de</strong> séquences avec les gènes d’Arabidopsis<br />

Conservations <strong>de</strong> séquences et <strong>de</strong> profils d’expression<br />

<strong>de</strong>s gènes <strong>de</strong> floraison d’Arabidopsis chez le riz<br />

Le gène orthologue <strong>de</strong> GI chez le riz = OsGI<br />

Le gène orthologue <strong>de</strong> CO chez le riz = HEADING DATE 1<br />

Le gène orthologue <strong>de</strong> FT chez le riz = HEADING DATE 3<br />

HD3 est exprimé en <strong>jours</strong> courts à l’inverse <strong>de</strong> FT chez Arabidopsis<br />

HD1durizorthologue<strong>de</strong>COi<strong>de</strong>n0fiéparanalysesQTL<br />

Orthologue<strong>de</strong>GIi<strong>de</strong>n0fiépar«differen0aldisplay»<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


4) Régulation <strong>de</strong> la photopério<strong>de</strong> et contrôle <strong>de</strong> la floraison<br />

Cartes physiques et génétiques à haute résolution<br />

<strong>de</strong> la région Hd1 sur le chromosome 6<br />

Yano et al., 2000<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

« Differential display »<br />

Transcription inverse<br />

PCR<br />

avec une amorce polyT<br />

et<br />

une amorce « aléatoire »<br />

DD-PCR DD-PCR<br />

Tissu 1 Tissu 2<br />

ADNc à accumulation<br />

différentielle<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

I<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong> GIGANTEA chez le riz<br />

Isaza et al., 2002<br />

Mutant phytochrome déficient se5<br />

Hayama et al., 2002<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

Expression <strong>de</strong> OsGI est contrôlée par le rythme circadien<br />

Expression comparable à celle <strong>de</strong> GIGANTEA d’Arabidopsis<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr) Hayama et al., 2002


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

Riz et Arabidopsis : Une voie <strong>de</strong> floraison conservée<br />

confère un effet contraire en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Arabidopsis<br />

Jours <strong>longs</strong><br />

Riz<br />

Jours <strong>longs</strong><br />

GI<br />

OsGI<br />

CO<br />

(OsCO) Hd1<br />

FT<br />

floraison<br />

(OsFT) Hd3<br />

Inhibition <strong>de</strong> la<br />

floraison<br />

Hayama et al., 2003<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


Arabidopsis<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transposition <strong>de</strong>s étu<strong>de</strong>s chez le riz<br />

Chez le riz,la floraison intervient en <strong>jours</strong><br />

courts car CO réprime FT en <strong>jours</strong> <strong>longs</strong><br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


6) Intérêts biotechnologiques<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


6) Intérêts biotechnologiques<br />

Applications biotechnologiques du contrôle <strong>de</strong> la floraison :<br />

Induction <strong>de</strong> la floraison:<br />

Permettre la culture d’espèces nécessitant <strong>de</strong>s conditions strictes <strong>de</strong> floraison dans <strong>de</strong>s<br />

environnements non-favorables (photoperio<strong>de</strong> ou temperatures)<br />

Domestication d’espèces<br />

Accélérer le processus <strong>de</strong> sélection variétale chez les arbres (fleurissant tard : 40ans)<br />

Intérêt en horticulture pour augmenter le nombre d’inflorescences (orchidées)<br />

Répression/prévention <strong>de</strong> la floraison :<br />

Augmenter les ren<strong>de</strong>ments en biomasse (canne à sucre)<br />

Augmenter les ren<strong>de</strong>ments en fuits (ananas)<br />

Permet d’éviter une floraison durant les gelées printanières (abricots)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


7) Conclusion<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


6) Intérêts biotechnologiques<br />

La production florale est une activité économique importante d’un chiffre d’affaire d’un<br />

peu moins d’un milliard d’euros en France, avec une forte focalisation sur un nombre<br />

limité d’espèces: roses (40%), œillets (20%) et une localisation géographique sur le<br />

Var et les Alpes Maritimes.<br />

La production d’effectue en serres pour l’essentiel et il s’agit d’un secteur fortement<br />

déficitaire sur le plan <strong>de</strong> la balance commerciale avec une forte pénétration <strong>de</strong>s<br />

produits hollandais. La connaissance et le contrôle <strong>de</strong> la floraison sont importants<br />

pour ces activités ainsi qu’au niveau <strong>de</strong> l’arboriculture fruitière.<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


7) Conclusion<br />

Régulation propice à l’adaptation aux conditons géoclimatiques<br />

– Besoin <strong>de</strong> maîtrise <strong>de</strong> ce contrôle en prévision <strong>de</strong>s changements<br />

climatiques<br />

Plasticité:<br />

Aptitu<strong>de</strong> d’un individu à modifier sa physiologie en réponse à <strong>de</strong>s<br />

changements environnementaux<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


7) Conclusion<br />

Plasticité phénotypique pour la morphologie florale<br />

Différentes plantes <strong>de</strong> l'espèce hybri<strong>de</strong><br />

Solanum ruiz-lealii Brüch. (2n = 2x =<br />

24). Les variations <strong>de</strong> la morphologie<br />

<strong>de</strong>s fleurs sont dues à <strong>de</strong>s différences<br />

<strong>de</strong> méthylation du génome<br />

Marfil et al., 2009<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


7) Conclusion<br />

Plasticité phénotypique pour la floraison<br />

Entre les plantes<br />

<strong>de</strong> même génotype<br />

Arabidopsis thaliana<br />

Hypericum perforatum<br />

Entre les fleurs<br />

d'une même plante<br />

Sarcocornia fruticosa<br />

Corydalis rutifolia ssp. uniflora<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


3) Approche <strong>de</strong> physiologie moléculaire<br />

Exploitation <strong>de</strong> la transgenèse chez les végétaux :<br />

Mutations induites :<br />

- Effet mutagène <strong>de</strong> l’insertion d’ADN-T suite à un événement <strong>de</strong><br />

transgenèse<br />

(génétique forward / reverse)<br />

Mutations ciblées :<br />

- Effet <strong>de</strong> l’expression ectopique du gène porté par l’ADN-T<br />

(génétique reverse)<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)


5) Transfert chez le riz<br />

Philippe Grappin (grappin@versailles.inra.fr)

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