THESE UNIQUE El Hassane Kéhien-Piho TOU - Nutridev
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Matériels et méthodes La consistance des bouillies a été estimée par la mesure de l’écoulement Bostwick (Bookwalter et al, 1968). Cette mesure a consisté à verser 100 g de bouillie dans le premier compartiment d’un consistomètre Bostwick (CSC Scientific Company Inc., Fairfax, Virginia, USA). Le consistomètre est disposé sur une surface plane horizontale (vérifiée à l’aide d’un niveau). Lorsque la température de la bouillie est autour de 45°C (45,0 ± 0,5°C), la gâchette de l’appareil est actionnée pour libérer la bouillie qui s’écoule alors dans le second compartiment. Le paramètre retenu correspond à la distance parcourue par le front de la bouillie en 30 s et s’exprime en mm/30 s. III.1.2. Mesure de la teneur en matière sèche des bouillies Un échantillon de 5 à 10 g de produit est pesé dans un pot en plastique thermorésistant, préalablement taré, sur une balance de précision égale à 0,001g. Les pots sont ensuite placés dans une étuve à 105°C jusqu’à poids constant (en pratique 24 heures). Chaque mesure est répétée deux fois, et la moyenne des deux valeurs est retenue. III.1.3. Mesure du pH de la bouillie et des surnageants de trempage et de décantation Elle a été réalisée à l’aide d’un pH-mètre (SUNTEX TS-2) de laboratoire à compensation de température. L’électrode du pH-mètre a été plongée dans les produits préalablement homogénéisés pendant 1 à 2 min. III.1.4. Enregistrement des cinétiques d’acidification Les cinétiques d’acidification ont été enregistrées au cours des étapes de trempage et de décantation. L’appareil utilisé est un collecteur de pH (WTW 340 Multi/ACHAT II, pH 340/set). Les données ont ensuite été transférées sur ordinateur grâce au logiciel WTW 340 et les graphes ont été tracés à l’aide du logiciel Microsoft Excel 2000. III.1.5. Détermination de la composition globale Des échantillons de bouillies issus des différentes expériences ont été lyophilisés à l’aide d’un appareil de type Beta 1-8 CHRIST LOC-2. La teneur en protéines (N×6,25) a été déterminée sur les échantillons lyophilisés par la méthode de Kjeldahl selon la norme NF V03-050 (AFNOR, 1970). La détermination des teneurs en lipides a été réalisée par la méthode d’extraction au Soxtec Tecator (note d’application n°3144) après extraction à l’éther de pétrole. Les fibres totales (solubles et insolubles) ont été dosées par la méthode gravimétrique et enzymatique de Prosky et al, 54
Matériels et méthodes (1988). Les cendres totales ont été déterminées par minéralisation au four à 530°C. Les glucides totaux ont été calculés par différence. La valeur énergétique théorique de la bouillie a été calculée en prenant 4 kcal/g comme coefficient de conversion pour les protéines et les glucides et 9 kcal/g comme coefficients de conversion pour les lipides. III.1.6. Dosage des phytates par HPIC Principe La chromatographie ionique à haute performance (HPIC) est une technique de dosage des ions par couplage échange d’ions et détection conductimétrique. La séparation se fait sur colonne échangeuse d’anions ou cations. L’éluant est généralement de composition chimique simple : acide méta-sulfonique pour les cations, hydroxyde de sodium pour les anions. Un module de suppression ou de neutralisation, neutralise chimiquement les ions provenant de l’éluant. Extraction des phytates L’extraction des phytates se fait à l’acide chlorhydrique: 100 mg d’échantillon lyophilisé et 5 ml d’acide chlorhydrique 0,5N sont placés dans des béchers d’eau bouillante pendant 6 min sous agitation. La première minute sert à atteindre la température d’extraction à l’intérieur du tube et durant les 5 minutes restantes a lieu l’extraction. Le mélange est ensuite centrifugé pendant 20 minutes à 4000 rpm, le surnageant est recueilli et repris dans 1,5 ml d’acide chlorhydrique concentré. Le mélange est évaporé sous vide à 40°C pendant une nuit (Speed Vac RC 10.10). Le culot obtenu est stocké à 4°C jusqu’au dosage. Dosage par HPIC Au cours des 10 minutes qui précèdent l’injection de la préparation dans le chromatographe, le culot est repris dans 2 ml d’eau millipore et filtrée (Acrodisc de 0,2µm). Le filtrat obtenu est dilué au 1/25 et 50 µl sont passés sur une colonne échangeuse d’anions Omnipac pax-100 (25 cm x 4 mm I.D) équipée d’une pré colonne Omnipac pax-100 (8µm) et d’un suppresseur d’anions (AMMS* III4-mm). La séparation est assurée par un gradient d’élution composé de trois solvants : NaOH, isopropanol, eau. III.1.7. Dosage des mono- diholosides et des α-galactosides L’extraction des oses contenus dans les échantillons se fait à l’éthanol : 80 mg d’échantillon lyophilisé et 3 ml de solution d’éthanol à 80% sont mis au bain-marie à 90°C sous agitation durant 30 minutes. Le mélange est centrifugé pendant 15 minutes à 4000 rpm à 4°C, le surnageant est recueilli et mis de côté. Le culot est repris dans 3 ml d’éthanol à 80°C et 55
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(1988). Les cendres totales ont été déterminées par minéralisation au four à 530°C. Les<br />
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Principe<br />
La chromatographie ionique à haute performance (HPIC) est une technique de dosage des<br />
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simple : acide méta-sulfonique pour les cations, hydroxyde de sodium pour les anions. Un<br />
module de suppression ou de neutralisation, neutralise chimiquement les ions provenant de<br />
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Extraction des phytates<br />
L’extraction des phytates se fait à l’acide chlorhydrique: 100 mg d’échantillon lyophilisé et 5<br />
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Vac RC 10.10). Le culot obtenu est stocké à 4°C jusqu’au dosage.<br />
Dosage par HPIC<br />
Au cours des 10 minutes qui précèdent l’injection de la préparation dans le chromatographe,<br />
le culot est repris dans 2 ml d’eau millipore et filtrée (Acrodisc de 0,2µm). Le filtrat obtenu<br />
est dilué au 1/25 et 50 µl sont passés sur une colonne échangeuse d’anions Omnipac pax-100<br />
(25 cm x 4 mm I.D) équipée d’une pré colonne Omnipac pax-100 (8µm) et d’un suppresseur<br />
d’anions (AMMS* III4-mm). La séparation est assurée par un gradient d’élution composé de<br />
trois solvants : NaOH, isopropanol, eau.<br />
III.1.7. Dosage des mono- diholosides et des α-galactosides<br />
L’extraction des oses contenus dans les échantillons se fait à l’éthanol : 80 mg d’échantillon<br />
lyophilisé et 3 ml de solution d’éthanol à 80% sont mis au bain-marie à 90°C sous agitation<br />
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