Bon usage des antibiotiques HEGP.pdf
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Le bon <strong>usage</strong> <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
<strong>HEGP</strong> 23 Juin 2006<br />
G. Meyer/E. Varon/JL. Mainardi<br />
COMAI-CLIN <strong>HEGP</strong>
Campagne Antibiotiques<br />
de l’AP-HP<br />
COMAI - DPM<br />
DDRH (Direction de la Communication Interne)<br />
Janvier 2006
Préserver l’efficacité <strong>des</strong><br />
<strong>antibiotiques</strong><br />
● Diminuer la consommation <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
● Mieux utiliser les <strong>antibiotiques</strong><br />
● Diminuer la pression de sélection<br />
● Diminuer la résistance bactérienne
Emergence de la résistance<br />
Bactérie initialement<br />
sensible<br />
Bactéries résistantes<br />
Mutation<br />
Transfert de gènes de résistance<br />
à la bactérie sensible<br />
Bactérie devenue résistante
Sélection <strong>des</strong> bactéries résistantes sous<br />
la pression de sélection <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
Antibiotique<br />
Faible proportion de<br />
bactéries résistantes<br />
Proportion élevée de<br />
bactéries résistantes
Impact d’un programme de maîtrise de la<br />
consommation d’<strong>antibiotiques</strong> sur les taux<br />
de résistance<br />
Nb de jours d’<strong>antibiotiques</strong><br />
Nb BGN résistants<br />
20 000<br />
140<br />
160<br />
15 000<br />
120<br />
79<br />
10 000<br />
80<br />
5 000<br />
40<br />
0<br />
Avant<br />
Après<br />
0<br />
Gruson et al. Am J Respir Crit Care Med 2000;162:837-43
Préserver l’efficacité <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
à l’hôpital<br />
Diminuer la pression de sélection : 3 volets<br />
3 - Prévenir<br />
les infections<br />
1 - Savoir dire non<br />
aux <strong>antibiotiques</strong><br />
2 - Mieux utiliser<br />
les <strong>antibiotiques</strong>
Préserver l’efficacité <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
à l’hôpital<br />
3 volets, 10 messages clés<br />
8<br />
10<br />
9<br />
Vacciner<br />
Prévenir la transmission croisée<br />
Limiter les dispositifs invasifs<br />
Prévenir<br />
les infections<br />
1<br />
2<br />
3<br />
4<br />
5<br />
7<br />
6<br />
Modalités d’administration appropriées<br />
Savoir dire non aux associations<br />
Bien choisir le traitement initial<br />
Savoir arrêter un traitement<br />
Ré-évaluer la prescription à 48 heures<br />
Traiter l’infection, pas la colonisation<br />
Traiter les seules infections bactériennes<br />
Mieux utiliser<br />
les <strong>antibiotiques</strong><br />
Savoir dire non<br />
aux <strong>antibiotiques</strong>
Préserver l’efficacité <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
à l’hôpital<br />
Volet 1<br />
8<br />
10<br />
9<br />
Vacciner<br />
Prévenir la transmission croisée<br />
Limiter les dispositifs invasifs<br />
Prévenir<br />
les infections<br />
1<br />
2<br />
3<br />
4<br />
5<br />
7<br />
6<br />
Modalités d’administration appropriées<br />
Savoir dire non aux associations<br />
Bien choisir le traitement initial<br />
Savoir arrêter un traitement<br />
Ré-évaluer la prescription à 48 heures<br />
Traiter l’infection, pas la colonisation<br />
Traiter les seules infections bactériennes<br />
Mieux utiliser<br />
les <strong>antibiotiques</strong><br />
Savoir dire non<br />
aux <strong>antibiotiques</strong>
Message 1 : Traiter les seules infections<br />
bactériennes<br />
• Les <strong>antibiotiques</strong> ne sont pas indiqués en cas<br />
– d’infection présumée virale<br />
– d’état fébrile isolé et bien toléré<br />
• En revanche, un traitement empirique est justifié,<br />
sans attendre les résultats <strong>des</strong> prélèvements,<br />
lorsque<br />
– l’infection est grave, ex : choc septique,<br />
neutropénie fébrile<br />
– Le tableau clinique est évocateur d’une infection<br />
bactérienne ex : pyélonéphrite
Message 2 : Traiter l’infection et non<br />
la colonisation ou la contamination<br />
• Faire <strong>des</strong> prélèvements microbiologiques adéquats<br />
avant traitement, en particulier lorsque<br />
– l’infection est sévère<br />
– La nature du germe et sa sensibilité aux <strong>antibiotiques</strong><br />
ne sont pas prédictibles ex : infection nosocomiale,<br />
échec d’un traitement antérieur
Message 2 : Traiter l’infection et non<br />
la colonisation ou la contamination<br />
Bien interpréter les résultats<br />
<strong>des</strong> prélèvements microbiologiques<br />
• La colonisation d’un matériel étranger communiquant<br />
avec le milieu extérieur (ex : sonde urinaire) est<br />
fréquente mais ne signe pas l’infection<br />
• Les prélèvements microbiologiques de sites<br />
habituellement stériles peuvent être contaminés (ex :<br />
hémoculture, urines, prélèvement <strong>des</strong> voies respiratoires<br />
inférieures)
Message 2 : Traiter l’infection et non<br />
la colonisation ou la contamination<br />
• Une hémoculture positive prélevée sur cathéter veineux<br />
central n’est pas toujours prédictive d’une bactériémie*<br />
Valeur prédictive<br />
positive<br />
Valeur prédictive<br />
négative<br />
Prélèvement sur<br />
cathéter<br />
63%<br />
99%<br />
Prélèvement<br />
veineux<br />
périphérique<br />
73%<br />
98%<br />
*551 hémocultures chez 185 patients d’hématologie/oncologie<br />
DesJardin et al: Ann Int Med 1999;131:641-7
Message 2 : Traiter l’infection et non<br />
la colonisation ou la contamination<br />
Savoir interpréter une hémoculture<br />
« positive »<br />
• Bactériémie improbable : Corynebacterium,<br />
Propionibacterium, Bacillus autre que B. anthracis<br />
• Bactériémie incertaine : Staphylococcus à coagulase<br />
négative (bactériémie improbable si absence de<br />
dispositif intravasculaire)<br />
• Bactériémie probable ou certaine : S. aureus,<br />
S. pneumoniae, entérobactéries, P. aeruginosa,<br />
C. albicans
Message 3 : Ré-évaluer la prescription<br />
à 48 heures<br />
• Arrêter l’antibiotique si l’origine bactérienne de l’infection<br />
n’est pas confirmée<br />
• Adapter l’antibiotique à la sensibilité de la bactérie<br />
responsable: spectre plus étroit, faible impact sur les flores<br />
commensales<br />
• Passer à une monothérapie si le traitement initial<br />
comportait une association<br />
• Passer à une administration orale si le traitement initial était<br />
parentéral<br />
• Adapter les posologies à la tolérance du malade et ses<br />
capacités d’épuration hépatique et rénale
Message 4 : Savoir arrêter un traitement<br />
• L’évaluation systématique à 7 jours permet de<br />
décider de l’arrêt du traitement<br />
• Dans la grande majorité <strong>des</strong> infections, il est inutile<br />
de prolonger l’antibiothérapie au-delà de 7 jours<br />
• Seules quelques situations justifient un traitement<br />
plus prolongé, éventuellement par un traitement<br />
de relais (neutropénie persistante, endocardite,<br />
infection osseuse, prostatite, …)
Préserver l’efficacité <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
à l’hôpital<br />
Volet 2<br />
8<br />
10<br />
9<br />
Vacciner<br />
Prévenir la transmission croisée<br />
Limiter les dispositifs invasifs<br />
Prévenir<br />
les infections<br />
1<br />
2<br />
3<br />
4<br />
5<br />
7<br />
6<br />
Modalités d’administration appropriées<br />
Savoir dire non aux associations<br />
Bien choisir le traitement initial<br />
Savoir arrêter un traitement<br />
Ré-évaluer la prescription à 48 heures<br />
Traiter l’infection, pas la colonisation<br />
Traiter les seules infections bactériennes<br />
Mieux utiliser<br />
les <strong>antibiotiques</strong><br />
Savoir dire non<br />
aux <strong>antibiotiques</strong>
Pré requis de<br />
l ’antibiothérapie en urgence<br />
• 2 situations :<br />
– Antibiothérapie probabiliste :<br />
• Principales bactéries pathogènes à prendre en<br />
compte en fonction du site infecté<br />
– Antibiothérapie sur documentation:<br />
1) la clinique “prime”<br />
2) <strong>Bon</strong>ne interprétation <strong>des</strong> résultats<br />
microbiologiques
Rationnel de l ’antibiothérapie en<br />
urgence (1)<br />
• Traitement “juste ”<br />
• Antibiothérapie probabiliste: facteurs portant sur 3 domaines<br />
– Hôte: terrain :<br />
• état immunitaire,<br />
• antibiothérapie préalable,<br />
• colonisation antérieure connue,<br />
• communautaire vs nosocomiale<br />
– Infection = microorganisme(s) responsable(s) : écologie<br />
nationale et locale<br />
– Traitement: pharmacocinétique et pharmacodynamie (posologie,<br />
dose de charge, monothérapie ou association)<br />
• Gravité
Pneumopathie Pneumocoque<br />
H. influenzae<br />
K. pneumoniae<br />
Legionella<br />
Communautaire "Nosocomiale"<br />
Risque<br />
écologique élevé<br />
P. aeruginosa<br />
Entérobactéries<br />
S. aureus<br />
Legionella<br />
Infection<br />
urinaire<br />
E. coli, Proteus<br />
Entérocoques<br />
P. aeruginosa<br />
Entérobactéries<br />
Entérocoques
Rationnel de l ’antibiothérapie en<br />
urgence (2)<br />
• Contexte microbiologique: triple<br />
– Pathologie ou le germe est difficile à<br />
déterminer<br />
• Ex: pneumopathie communautaire<br />
– Retard entre le diagnostic clinique et<br />
l ’identification du germe et la sensibilité aux<br />
<strong>antibiotiques</strong><br />
• Apport de l ’examen direct: méningite<br />
– Pathologie à germes multiples: pathogénicité<br />
de chaque espèce
Modalités d ’administration <strong>des</strong><br />
<strong>antibiotiques</strong> (1)<br />
– Mode d ’action: temps dépendant et<br />
concentration dépendant<br />
– Pharmacocinétique<br />
• Absorption: biodisponibilité<br />
• Diffusion: site d ’accès difficile (LCR, cerveau, os,..)-<br />
Diffusion intra-cellulaire<br />
• Élimination: foie et rein (métabolisation)<br />
– Attention au sous dosage !!!!!<br />
• Facteurs d ’échec<br />
• Facteurs de sélection de souches résistantes
Modalités d ’administration <strong>des</strong><br />
<strong>antibiotiques</strong> (2)<br />
– Antibiotique « concentration<br />
dépendante » : efficacité proportionnelle<br />
au pic<br />
• Aminosi<strong>des</strong>, fluoroquinolones<br />
• Dose unique journalière pour les aminosi<strong>des</strong><br />
• Sauf sujet granulopénique, Cocci à Gram positif,<br />
endocardite
Modalités d ’administration <strong>des</strong><br />
<strong>antibiotiques</strong> (3)<br />
• Antibiotique « temps dépendant » : ß-<br />
lactamines, glycopepti<strong>des</strong>: efficacité<br />
proportionnelle au temps de contact de<br />
la bactérie avec l ’AB<br />
• Objectif: maintenir concentration d ’AB le plus<br />
longtemps au <strong>des</strong>sus de la CMI.<br />
• Administration pluri-quotidienne, ou en perfusion<br />
continue<br />
• Importance pour les sites à faible diffusion d ’AB<br />
– méningite
Les associations d’<strong>antibiotiques</strong><br />
• 5 raisons théoriques<br />
– Élargir le spectre d ’activité : situation<br />
d ’urgence et incertitude diagnostique<br />
– Renforcement de la bactéricidie<br />
– Prévention de l ’émergence de résistance<br />
en cours de traitement<br />
– Réduction de la durée du traitement<br />
– Réduction de la posologie (toxicité)
Déterminants de la prescription (1)<br />
• Incertitude diagnostique: NON systématique<br />
– Infection communautaire: souvent illégitime<br />
– Infection nosocomiale: souvent justifiée<br />
initialement (incertitude de sensibilité <strong>des</strong><br />
microorganismes aux <strong>antibiotiques</strong>)
Déterminants de la prescription (2)<br />
• Gravité générale<br />
• Gravité locale<br />
– Présence d ’un corps étranger<br />
– Importance de l ’inoculum bactérien:<br />
• difficulté de diffusion <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong>,<br />
conditions physico-chimiques, anoxie….<br />
• Quantité d ’enzymes produites support de la<br />
résistance: ex ß-lactamases<br />
• Nombre de mutants résistants au sein de la<br />
population de départ
Déterminants de la prescription (3)<br />
• Caractéristique du couple bactérieantibiotique<br />
– Espèces à taux de mutation élevée vis à vis<br />
de certains <strong>antibiotiques</strong><br />
• Staphylocoques et rifampicine, fosfomycine,<br />
fucidine et fluoroquinolones<br />
• Pseudomonas aeruginosa et ciprofloxacine
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (1)<br />
1) Intérêt <strong>des</strong> traitements à large spectre<br />
– Incertitude diagnostique<br />
– Courte durée (sauf infection<br />
polymicrobienne)<br />
• Ex: Anaérobies: Céphalosporines de 3ème<br />
génération + métronidazole mais inutile si<br />
combinaison ß-lactamines-inhibiteur de ß-<br />
lactamase
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (2)<br />
• Améliorer l ’efficacité en augmentant la<br />
bactéricidie<br />
– Synergie:<br />
• Augmentation de la vitesse de bactéricie<br />
• Augmentation de la vitesse d ’éradication<br />
bactérienne<br />
• Cliniquement: guérison accélérée, traitement plus<br />
court !!!!<br />
• Difficulté de la corrélation in vitro/in vivo
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (3)<br />
• Infections à bactéries à Gram positif<br />
– Synergie constante entre pénicillines et<br />
aminosi<strong>des</strong><br />
• Inutile sur Streptocoque A<br />
• Utile sur Streptocoques viridans: endocardite et<br />
neutropénique<br />
• Légitime sur Entérocoques en cas d ’infection grave<br />
• Incertaine sur les pneumocoques de sensibilité réduite<br />
à la pénicilline: recommandée pour les méningites<br />
– Vancomycine + Céphalosporines de 3ème génération
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (4)<br />
• Infections à bacilles à Gram négatif<br />
– Synergie ß-lactamines-aminosi<strong>des</strong> que sur<br />
bactéries mal tuées par ß-lactamines<br />
• En pratique: Pseudomonas et Acinetobacter<br />
• Étendue sur certaines entérobactéries peu<br />
sensibles: Citrobacter, Enterobacter, Serratia:<br />
bénéfice clinique rarement démontré<br />
• Pas de synergie: ß-lactamines-fluoroquinolones ou<br />
fluoroquinolones-aminosi<strong>des</strong>
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (5)<br />
• Prévention de l ’émergence de la résistance<br />
– Tuberculose<br />
– Staphylocoques et rifampicine, fosfomycine, fucidine<br />
et fluoroquinolones ;<br />
– Pseudomonas aeruginosa et fluoroquinolones<br />
(élargie ß-lactamines anti-Pseudomonas)<br />
– Bactéries productrices de céphalosporinases<br />
chromosomiques et céphalosporines de 3ème<br />
génération.<br />
– Entérobactéries et fluoroquinolones en cas de<br />
résistance à l’acide nalidixique
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
• En pratique:<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (6)<br />
– Certaines espèces bactériennes, certains<br />
<strong>antibiotiques</strong> et au début du traitement<br />
– Certaines conditions:<br />
• CMI élevée<br />
• Diffusion tissulaire faible de l ’antibiotique ou la<br />
monothérapie ne garantit pas <strong>des</strong> conditions<br />
pharmacocinétiques permettant la prévention de<br />
l ’émergence de la résistance
Intérêt et limites <strong>des</strong> associations<br />
d ’<strong>antibiotiques</strong> (7)<br />
• Limites <strong>des</strong> associations:<br />
– Arguments souvent théoriques<br />
– Données microbiologiques et modèles<br />
expérimentales mais<br />
– Relevance in vivo souvent discutables : rôle <strong>des</strong><br />
défenses de l ’organisme<br />
– Données cliniques rares, méthodologie discutable<br />
– Incertitude sur la diffusion simultanée et à <strong>des</strong><br />
concentrations suffisantes <strong>des</strong> 2 <strong>antibiotiques</strong> au site<br />
infecté
Message 6 : Savoir dire non<br />
aux associations d’<strong>antibiotiques</strong><br />
• Infections sévères à bacille gram négatif : métaanalyse<br />
de 64 essais (7 586 patients), comparant<br />
une ß-lactamine en monothérapie ou associée à<br />
un aminoside:<br />
– Pas de différence dans la mortalité<br />
– Echecs cliniques moins fréquents avec la<br />
monothérapie<br />
– Toxicité rénale plus fréquente avec la bithérapie<br />
Paul et al, BMJ 2004; 328: 668-82
Message 6 : Savoir dire non<br />
aux associations d’<strong>antibiotiques</strong><br />
Pipéracilline-tazobactam en monothérapie aussi efficace<br />
qu’associé à l’amikacine dans les péritonites sévères (204 patients)<br />
Taux<br />
d’échec<br />
Pipéracillinetazobactam<br />
Pipéracillinetazobactam<br />
n=99<br />
55<br />
+ amikacine<br />
n=105<br />
55<br />
90% CI<br />
0.6-1.27<br />
Durée du<br />
traitement<br />
(jours)<br />
9 ± 3.8<br />
9.3 ± 2.7<br />
0.73-1.29<br />
Dupont et al, AAC 2000;44:2028-33
Epidémiologie de la résistance<br />
• Indispensable pour prescrire une<br />
antibiothérapie, en particulier dans les<br />
situations d ’antibiothérapie probabiliste<br />
• Connaître l ’évolution de la résistance<br />
aux <strong>antibiotiques</strong><br />
• Ecologie générale et locale <strong>des</strong><br />
principales bactéries responsables<br />
d ’infection communautaire
¡<br />
Les protocoles anti-infectieux et<br />
les recommandations de l’<strong>HEGP</strong><br />
1) Protocoles de prise en charge et de traitements antiinfectieux<br />
2) Recommandations sur l ’utilisation <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong> à<br />
large spectre et <strong>des</strong> antifongiques<br />
3) Recommandations sur la surveillance de l’efficacité et<br />
de la toxicité <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
<br />
Accès sur Idol: Vie du groupe puis Instances-Commissions-<br />
Comité puis Instances institutionnelles puis comité <strong>des</strong> Anti-<br />
infectieux-<br />
Tel 39 49
Recommandations sur l’utilisation <strong>des</strong><br />
<strong>antibiotiques</strong> à large spectre et <strong>des</strong><br />
antifongiques<br />
• Mauvaise utilisation: coût économique et<br />
écologique: sélection de souches résistantes<br />
• Ceftazidime, Céfépime, Pipéracilline-Tazobactam,<br />
Imipénème<br />
– Non recommandées dans le traitement <strong>des</strong> infections<br />
communautaires (sauf neutropénie fébrile, documentation<br />
microbiologique antérieure, échec d’un traitement de<br />
première intention)<br />
– Réservées dans le traitement <strong>des</strong> infections<br />
nosocomiales en traitement empirique ou après<br />
documentation microbiologique : réévaluation
Bêta-lactamines à large spectre<br />
• Ceftazidime (Fortum R )<br />
– Indication: Pseudomonas aeruginosa<br />
• Céfépime (Axépim R )<br />
– Indications: Entérobactéries productrices de céphalosporinases<br />
déréprimées<br />
• Pipéracilline-Tazobactam (Tazocilline R )<br />
– Indications: infections nosocomiales à flore mixte (digestif) ou<br />
communautaires après échec d’un premier traitement<br />
• Imipénème (Tiénam R )<br />
– Indications: infections nosocomiales à flore mixte, Pseudomonas<br />
aeruginosa, Entérobactéries productrices de céphalosporinases<br />
déréprimées, de bêta-lactamase à spectre élargie (BLSE)
¢<br />
Fluoroquinolones<br />
– Diminution de leur utilisation<br />
– Traitement administrable préférentiellement par voie<br />
orale<br />
– Entérobactéries: lévofloxacine-Ciprofloxacine<br />
– Pseudomonas aeruginosa: Ciprofloxacine<br />
Attention à la posologie: 750 mg X 2 per os = 400 mg X 3 IV<br />
– Staphylococcus aureus: Péfloxacine-lévofloxacine<br />
(500mg-1g par Jour)<br />
– Pas de première intention en traitement probabiliste<br />
d’une infection "nosocomiale " (Enterobacter,<br />
Serratia,…)<br />
– Eviter les monothérapies (à la phase initiale)<br />
– Effets secondaires: tendinopathie- photo sensibilisation<br />
– Recours au dosage sérique (personnes agéesinsuffisance<br />
rénale, ……)
¢<br />
¢<br />
¢<br />
Recommandations sur la prescription,<br />
l’administration et la surveillance <strong>des</strong><br />
glycopepti<strong>des</strong> et <strong>des</strong> aminosi<strong>des</strong><br />
• les glycopepti<strong>des</strong> sont peu toxiques<br />
• Le dosage est centré sur le risque d'inefficacité par sousdosage<br />
et risque de sélection de souches résistantes<br />
• Antibiotiques temps-dépendants (durée au-<strong>des</strong>sus de<br />
la CMI): pas de nécessité de doser aux pics (Cmax)<br />
• Vancomycine: préférer la perfusion continue vs<br />
discontinue:<br />
15 mg/kg en 1h si dose de charge puis 30-60 mg/kg/j soit ~1.5 à<br />
3-4 g/j<br />
Concentrations cibles :15-20 mg/L si IV discontinue,<br />
20-40 mg/L si perfusion continue, GISA > 40 mg/L<br />
Insuffisance rénale: dosage +++
Glycopepti<strong>des</strong><br />
1) Indications <strong>des</strong> glycopepti<strong>des</strong><br />
• Infection suspectée ou prouvée à staphylocoques résistants à la<br />
méticilline.<br />
• Infections sévères à Cocci à Gram positif chez les patients<br />
allergiques aux ß-lactamines<br />
•Infections à bactérie à Gram positif résistants à la pénicilline<br />
(méningite à pneumocoque pénicilline-résistant, Enterococcus<br />
faecium [CMI > 32 µg/ml])<br />
• Traitement per os <strong>des</strong> colites graves à Clostridium difficile après<br />
échecs d'un traitement par métronidazole<br />
• Antibioprophylaxie de l'endocardite ou en chirurgie dans<br />
quelques cas particuliers (cf antibioprophylaxie)<br />
• Traitement de deuxième intention <strong>des</strong> neutropénies fébriles
2) Non indications <strong>des</strong> glycopepti<strong>des</strong><br />
• Traitement <strong>des</strong> infections à Cocci à Gram positif sensibles à la<br />
pénicilline ou à la méticilline en l'absence d'allergie aux ß-<br />
lactamines<br />
• Traitement de première intention <strong>des</strong> colites à Clostridium difficile<br />
• Traitement de première intention <strong>des</strong> fièvres chez le neutropéniques<br />
sauf si forte suspicion d'infections à cocci à Gram positif<br />
• Utilisation de routine en antibioprophylaxie<br />
• Traitement de "convenance" d'infection à staphylocoques sensibles<br />
à la méticilline (insuffisance rénale, dialyse rénale)<br />
• Traitement <strong>des</strong> colonisations à staphylocoques résistants à la<br />
méticilline (raisons écologiques et d’inefficacité)<br />
• Décontamination sélective du tube digestif<br />
• Application locale ou en irrigation<br />
• Poursuite d'un traitement empirique en l'absence d'une<br />
documentation microbiologique
¢<br />
¢<br />
¢<br />
3) Choix <strong>des</strong> molécules<br />
• La vancomycine est recommandée de première<br />
intention : efficacité et coût<br />
• Les seules indications retenues de la teicoplanine sont:<br />
En traitement d'attaque :<br />
- indications liées à la voie d'administration: absence de voie<br />
veineuse, voie IM<br />
- exceptionnellement indication microbiologique ou la<br />
sensibilité de la teicoplanine est plus intéressante<br />
En traitement d'entretien:<br />
- dans sa plus grande facilité d'utilisation (traitement de relais<br />
de la vancomycine).<br />
en cas d'allergie à la vancomycine
• Teicoplanine:<br />
– Dose de charge obligatoire dans tous les cas, y<br />
compris en relais de la vancomycine :<br />
• 2 x 6 mg/kg/j pendant au moins 48 h et jusqu'à<br />
obtention de taux efficaces 15-20 mg/L- 30 mg/L<br />
dans l'endocardite ou l’infection osseuse<br />
• 1 x 6 mg/kg/j en entretien<br />
• IVL ou IM<br />
• Dosage +++
Aminosi<strong>des</strong><br />
• Le contexte : médicaments néphrotoxiques et<br />
ototoxiques, concentration-dépendant sur les bacille<br />
à Gram négatif<br />
• La tendance actuelle est :<br />
au raccourcissement de la durée du traitement<br />
à la prise unique journalière pour le traitement <strong>des</strong><br />
infections dues aux bactéries à Gram négatif, en 2<br />
prises pour les infections à bactéries Gram positif<br />
(jamais 3 prises)<br />
Il n’apparaît plus utile de doser une concentration au<br />
pic sauf cas particuliers (échecs thérapeutiques<br />
inexpliqués, augmentation du volume de<br />
distribution,.....)
• l’administration est<br />
habituellement en IVL 30<br />
min.<br />
• la règle est de prélever<br />
une concentration<br />
résiduelle et d'en<br />
attendre le résultat<br />
avant de réinjecter<br />
Amikacine<br />
Gentamicine<br />
Tobramycine<br />
< 2<br />
• En résumé :<br />
– En présence d'une fonction rénale initiale<br />
normale (clearance créatinine > 60-80<br />
mL/min)<br />
Traitement < 48-72 h→ pas de dosage<br />
Dosage si traitement > 72 heures<br />
1er dosage à 24-48 h puis tous les 2-3 jours ou<br />
plus fréquemment en cas d’altération de la<br />
fonction rénale.<br />
– Insuffisance rénale/dialyse: dosage
Epidémiologie actuelle de la<br />
résistance <strong>des</strong> pneumocoques<br />
Emmanuelle VARON<br />
Centre National de Référence<br />
<strong>des</strong> Pneumocoques
Historique<br />
de la « résistance » à la pénicilline<br />
1945<br />
1967<br />
1977<br />
1978<br />
1979<br />
198 4<br />
• USA : 1er mutant de laboratoire péni-I<br />
• Australie : 1 er isolat clinique péni-I<br />
• Afrique du Sud : 1 ère souche multi-résistante<br />
• Espagne : prévalence de 10%<br />
• France : 2 isolats cliniques péni-I<br />
• France : Création du CNRP
Surveillance de la sensibilité aux<br />
60<br />
<strong>antibiotiques</strong><br />
S. pneumoniae de sensibilité diminuée à la péni G en France<br />
(CNRP)<br />
50<br />
43<br />
48<br />
52 53 48<br />
43<br />
% de PSDP<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
0,5 0,7 1<br />
1984<br />
1985<br />
4 5<br />
7<br />
1986<br />
1987<br />
1988<br />
1989<br />
1990<br />
12<br />
17 20 25<br />
32<br />
36<br />
1991<br />
1992<br />
1993<br />
1994<br />
1995<br />
1996<br />
1997<br />
2001<br />
2002<br />
2003<br />
2004<br />
1984-1987: P. Geslin ; 2001-2004 : ORP-CNRP : E. Varon, L. Gutmann
Souches invasives de S. pneumoniae<br />
de sensibilité diminuée à la péni G en<br />
Europe<br />
EARSS annual report 2004, http://www.earss.rivm.nl
Consommation péni et prévalence<br />
<strong>des</strong> PSDP<br />
Goossens et al. Lancet 2005; 365: 579–87
S. pneumoniae de sensibilité diminuée<br />
aux bêta-lactamines: définition du CA-SFM<br />
Péni<br />
AMX<br />
CXM<br />
CTX, CRO, FEP, CPO<br />
IPM<br />
S<br />
≤ 0.06<br />
≤ 0.5<br />
I R<br />
0.12 - 1 > 1<br />
>0.5 - 2 > 2<br />
(CMI en µg/ml)
Définition du NCCLS<br />
CTX, CRO<br />
LCR<br />
Non LCR<br />
S<br />
≤ 0.5<br />
≤ 1<br />
I R<br />
1 ≥ 2<br />
2 ≥ 4<br />
(CMI en µg/ml)<br />
NCCLS, M100-S12, Janvier 2002
L’évolution de la résistance aux bêta-lactamines<br />
est liée à deux particularités du pneumocoque<br />
• Son aptitude à coloniser l’oropharynx<br />
– Enfant < 24 mois +++<br />
– (Sérogroupes 6, 19, 14 et 23)<br />
• Sa compétence naturelle<br />
Les streptocoques oraux = réservoir de gènes<br />
– Résistance aux bêta-lactamines<br />
– Résistance aux fluoroquinolones<br />
– …
Mode d’action <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
Swarz, NEJM 2002
Mécanisme de résistance<br />
aux bêta-lactamines<br />
• Gènes mosaïques +++<br />
• Mutations (PLP2x ++, PLP2b)<br />
PLP d’affinité diminuée<br />
– Pénicillines<br />
PLP2x* ± PLP2b ± PLP1a<br />
– Céphalosporines<br />
PLP2x ± PLP1a<br />
• Grande diversité de combinaisons de<br />
PLP modifiées<br />
• Résistance croisée aux bêta-lactamines<br />
• CMI « imprévisibles » d’une molécule à<br />
une autre
Nécessité de surveiller<br />
• La résistance aux <strong>antibiotiques</strong><br />
– Bêta-lactamines<br />
– Macroli<strong>des</strong><br />
– Fluoroquinolones<br />
• Les sérotypes
Sensibilité de Sp en fonction de l’âge<br />
(Rapport d’activité 2005)
£<br />
Activité in vitro <strong>des</strong> β-lactamines sur S. pneumoniae<br />
isolés de bactériémies > 15 ans<br />
n<br />
140<br />
120<br />
100<br />
80<br />
60<br />
2004 (n=243)<br />
Pénicilline<br />
Amoxicilline<br />
Céfotaxime<br />
40<br />
20<br />
0<br />
1<br />
56<br />
34<br />
10<br />
Amoxicilline<br />
≤ 0,5<br />
> 2<br />
73<br />
25<br />
2<br />
*Ca-SFM<br />
Céfotaxime<br />
2005<br />
≤ 0,5<br />
> 2<br />
94<br />
6 0<br />
(Rapport d’activité 2005)
Résistance aux <strong>antibiotiques</strong> en<br />
2004<br />
% I+R<br />
Pénicilline<br />
Bactériémies<br />
Adulte<br />
>15 ans<br />
(n=637)<br />
44<br />
Enfant<br />
(n=360)<br />
36<br />
Méningites<br />
Adulte<br />
>15 ans<br />
(n=255)<br />
39<br />
Enfant<br />
(n=138)<br />
42<br />
Resp.<br />
Adulte<br />
> 15<br />
ans<br />
(n=486)<br />
47<br />
Total<br />
(n=1265)<br />
43<br />
Amoxicilline<br />
27<br />
12<br />
16<br />
24<br />
32<br />
24<br />
Céfotaxime<br />
5<br />
5<br />
2<br />
3<br />
6<br />
5<br />
Erythromycine<br />
Fluoroquinolone<br />
s*<br />
46<br />
1,6<br />
44<br />
0,5<br />
46<br />
0,9<br />
49<br />
0<br />
53<br />
3,7<br />
49<br />
2<br />
*Souches de bas niveau de résistance (ParC/E ou efflux) et de haut niveau de résistance (ParC/E+GyrA)<br />
CNRP, Rapport d’activité 2005
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
Sensibilité à l’amoxicilline <strong>des</strong> Spn<br />
isolés de prélèvements respiratoires<br />
CMI d'amoxicilline<br />
8 µg/ml<br />
4<br />
2<br />
1<br />
0,5<br />
0,25<br />
0,125<br />
0,064<br />
0,032<br />
Résistance aux autres <strong>antibiotiques</strong><br />
Adulte, 2004<br />
100%<br />
90%<br />
80%<br />
70%<br />
60%<br />
50%<br />
40%<br />
30%<br />
20%<br />
10%<br />
0%<br />
Erythromycine Tétracycline<br />
Chloramphénicol Cotrimoxazole<br />
Kanamycine Fluoroquinolones<br />
Hémocultures LCR Respiratoires<br />
• Résistance à l’érythro 49% et si PSDP : 89%<br />
• Multi-résistance : 40% et 78% <strong>des</strong> PSDP<br />
Rapport d’activité 2005
Résistance aux macroli<strong>des</strong><br />
95%<br />
• Par modification de cible domaine V ARNr 23S<br />
– Di-méthylation Adénine 2058 par ermB, Tn1545<br />
phénotype MLSB (CMI≥64µg/ml)<br />
• Inductible / MLS B (atténuateur) +++<br />
• Constitutif (atténuateur*)<br />
– Mutations ponctuelles<br />
5%<br />
• Par efflux actif (CMI 1-32µg/ml)<br />
– mefA : phénotype « M » (C14-15)
Activité <strong>des</strong> kétoli<strong>des</strong><br />
• Dérivés semi-synthétiques <strong>des</strong> macroli<strong>des</strong> en C14<br />
• Actifs sur les souches macroli<strong>des</strong> R (CMI 0,25 µg/ml)<br />
– De type MLSB inductible<br />
– Par efflux<br />
• Peu ou pas actifs sur les souches macroli<strong>des</strong> R<br />
– De type MLSB constitutif<br />
• Résistance acquise : mutations ponctuelles dans le<br />
domaine II de ARNr23S<br />
– 2003 (CNRP) : 3,5% <strong>des</strong> pneumocoques Télithro I (CMI<br />
de 1 à 2 µg/ml)<br />
– 2004 (Drugeon, Ricai 2005) :
Phénotypes de résistance de S.pneumoniae<br />
aux macroli<strong>des</strong> et kétoli<strong>des</strong><br />
Macroli<strong>des</strong> et apparentés<br />
Macroli<strong>des</strong> C14<br />
Macrolide C15<br />
Macroli<strong>des</strong> C16<br />
Lincosami<strong>des</strong><br />
Streptogramine<br />
s<br />
Kétoli<strong>des</strong><br />
Ery, Roxi, Clari,<br />
…<br />
Azithro<br />
Spira, Josa<br />
Linco, Clinda<br />
Streptogr. A,<br />
Quinu.<br />
Streptogr.B,<br />
Dalfo.<br />
Télithro<br />
MLS B<br />
(ermB)<br />
R<br />
R<br />
R<br />
R<br />
S<br />
R<br />
S<br />
M (mefA)<br />
R<br />
R<br />
S<br />
S<br />
S<br />
S<br />
S
Mode d’action <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
Swarz, NEJM 2002
Mécanismes de résistance aux FQ<br />
• Modification de cible (QRDR+++)<br />
– Topoisomérase IV (C 2 E 2 )<br />
• Sous-unité C (parC)<br />
• Sous-unité E (parE)<br />
– Gyrase (A 2 B 2 )<br />
• Sous-unité A (gyrA)<br />
• Sous-unité B (gyrB)<br />
• Efflux actif augmenté<br />
– pmrA ()<br />
• FQ “hydrophiles” (Cipro, Norflo)<br />
• Inhibé par la réserpine<br />
– Autres pompes
111<br />
# (<br />
/<br />
0<br />
<br />
<br />
,<br />
<br />
08<br />
11<br />
0<br />
+ 6<br />
<br />
4<br />
Les cibles <strong>des</strong> FQ chez S. pneumoniae<br />
Cible<br />
Mutant de 1 er niveau<br />
FQ<br />
préférentielle<br />
ParC<br />
GyrA<br />
-<br />
ParC<br />
+<br />
Pefloxacine<br />
ParC<br />
-<br />
+<br />
Ciprofloxacine<br />
ParC<br />
GyrA<br />
GyrA<br />
-<br />
+<br />
+<br />
-<br />
Levofloxacine<br />
Sparfloxacine<br />
+<br />
-<br />
Moxifloxacine<br />
GyrA<br />
+<br />
-<br />
Gatifloxacine<br />
GyrA<br />
+<br />
-<br />
Garenoxacine<br />
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2%<br />
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# <br />
<br />
5+% 3<br />
<br />
2<br />
-3
9<br />
S. pneumoniae :<br />
résistance aux FQ (IRBA) en France<br />
Mécanisme de résistance (%)<br />
Année<br />
N souches<br />
ParC<br />
Efflux<br />
ParC+Efflu<br />
x<br />
GyrA<br />
ParC+Gyr<br />
A<br />
Total<br />
2000 -<br />
2001<br />
675<br />
9 (1,3)<br />
6 (0,9)<br />
2 (0,3)<br />
0<br />
7 (1,0)<br />
24 (3,5)<br />
2002<br />
965<br />
14<br />
(1,5)<br />
8 (0,8)<br />
1 (0,1)<br />
0<br />
14 (1,5)<br />
37 (3,8)<br />
2003<br />
968<br />
9 (1,0)<br />
8 (0,9)<br />
2 (0,2)<br />
0<br />
9 (1,0)<br />
28 (3,1)<br />
2004<br />
980<br />
10<br />
(1,0)<br />
17<br />
(1,7)<br />
1 (0,1)<br />
0<br />
8 (0,8)<br />
36 (3,7)<br />
CMI extrêmes, mg/L<br />
Lévofloxacine<br />
1 – 2<br />
2 – 16<br />
-<br />
4 – 32<br />
Moxifloxacine<br />
0,12 - 0,25<br />
0,5<br />
-<br />
2 -<br />
8<br />
A détecter sur l’antibiogramme<br />
à l’aide de la norfloxacine (Ca-SFM)<br />
Varon et al. Ricai 2005
Conclusion<br />
• S. pneumoniae :<br />
– 47% de souches de sensibilité à la pénicilline,<br />
– 50% de souches résistantes aux macroli<strong>des</strong> et<br />
lincosami<strong>des</strong><br />
mais<br />
– 98% ont une CMI d’amoxicilline ≤ 2 µg/ml <br />
sensibles à l’amoxicilline<br />
• Alternative<br />
1ère intention : amoxicilline<br />
– 98% sensibles à la télithromycine<br />
– ~ 96% sensibles aux fluoroquinolones
Evolution de la résistance (I+R) aux<br />
Adultes<br />
Enfants<br />
%<br />
%<br />
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
46<br />
62<br />
47<br />
63<br />
42<br />
54<br />
44<br />
38<br />
29<br />
38<br />
26<br />
37<br />
BL<br />
25<br />
31<br />
27<br />
16<br />
2001 (n=1052)<br />
2002 (n=900)<br />
2003 (n=892)<br />
2004 (n=941)<br />
14 12 13<br />
Pénicilline Amoxicilline Céfotaxime Erythromycine<br />
2001 (n=766)<br />
2002 (n=592)<br />
2003 (n=877)<br />
2004 (n=324)<br />
23 21<br />
17<br />
Pénicilline Amoxicilline Céfotaxime Erythromycine<br />
5<br />
4<br />
45<br />
60<br />
52<br />
68<br />
44<br />
62<br />
50<br />
47<br />
Rapport d’activité 2005
Sensibilité de Sp en fonction de<br />
l’âge<br />
700<br />
100%<br />
Nombre de souches<br />
600<br />
500<br />
400<br />
300<br />
200<br />
100<br />
0<br />
69%<br />
56%<br />
45%<br />
637<br />
44%<br />
32%<br />
29%<br />
246<br />
40%<br />
20%<br />
55<br />
31%<br />
28%<br />
204<br />
45%<br />
38%<br />
269<br />
58%<br />
46%<br />
323<br />
N<br />
LCR<br />
hémoculture<br />
OMA<br />
67%<br />
69<br />
90%<br />
80%<br />
70%<br />
60%<br />
50%<br />
40%<br />
30%<br />
20%<br />
10%<br />
0%<br />
% de souches PéniI&R<br />
0-1 2-15 15-29 30-49 50-69 70-89 >89<br />
Age en années
Résistance aux β-lactamines : rôle<br />
Sauvage<br />
1<br />
2<br />
2x<br />
2b<br />
1a<br />
2x<br />
2b<br />
1a<br />
2x<br />
2b<br />
1a<br />
<strong>des</strong> PLP<br />
CMI (µg/ml)<br />
Péni = 0.008<br />
AMX = 0.008<br />
CTX = 0.016<br />
Péni = 0.032<br />
AMX = 0.016<br />
CTX = 0.25<br />
Péni = 0.5<br />
AMX = 0.25<br />
CTX = 0.25<br />
3<br />
4<br />
2x<br />
2b<br />
1a<br />
2x*<br />
2b<br />
1a<br />
T550A<br />
Péni = 4<br />
AMX = 3<br />
CTX = 1<br />
Péni = 0.25<br />
AMX = 0.125<br />
CTX = 16
Origine <strong>des</strong> gènes mosaïques<br />
de PLP<br />
PLP<br />
Gène<br />
Donneur<br />
PLP1a<br />
PLP2x<br />
PLP2b<br />
pbp1a<br />
pbp2x<br />
pbp2b<br />
<br />
S. mitis<br />
S. oralis<br />
S. mitis et <br />
Dowson et al, Mol Microbiol 1993<br />
Sibold et al, Mol Microbiol 1994
Facteurs de risque d’acquisition de<br />
PSDP (1)<br />
Facteur de risque<br />
Age < 15 ans<br />
Voies resp. sup<br />
HIV<br />
Bêta-lactamines (< 6 mois)<br />
Nosocomiale<br />
Bedos et al., Clin Infect Dis 1996<br />
OR<br />
2.01<br />
2.36<br />
2.01<br />
1.99<br />
2.12
Facteurs de risque d’acquisition de<br />
PSDP (2)<br />
Yu et al., Clin Infect Dis 2003
Facteurs de risque d’acquisition de<br />
pneumocoque FQ-R (1)<br />
Facteur de risque<br />
BPCO<br />
Origine nosocomiale SP<br />
Résidence personnes<br />
âgées<br />
Exposition FQ / 12 mois<br />
OR 95% IC<br />
10,3 (1,6-66,2)<br />
16,2 (2,1-122,2)<br />
7,4 (1,5-35,1)<br />
10,7 (1,6-71,2)<br />
p<br />
0,01<br />
0,007<br />
0,01<br />
0,01<br />
Ho et al. Clin Infect Dis 2001 ; 32 : 701-7
Facteurs de risque d’acquisition de<br />
pneumocoque FQ-R (2)<br />
Jimenez et al. J Clin Microb 2005; 43: 1193
Résistance aux <strong>antibiotiques</strong> et HIV<br />
Pneumonies<br />
p=0.056<br />
p=0.001<br />
Data are no. (%) of children<br />
Madhi et al. Clin Infect Dis, 2000
Facteurs de risque d’acquisition de<br />
Spn ATB-R<br />
Facteur de risque<br />
OR<br />
p<br />
PSDP<br />
Pénicilline<br />
2.47<br />
0.006<br />
Cotrimoxazole<br />
5.97<br />
Pneumonie communautaire<br />
G Meyer<br />
COMAI-CLIN<br />
<strong>HEGP</strong>
Pneumocoque: sensibilité à la pénicilline en<br />
2002<br />
CMI<br />
S<br />
I R<br />
(µg/ml) ≤ 0.06 0.12 - 1 > 1<br />
100%<br />
10% 8% 10% 7%<br />
16%<br />
80%<br />
40% 40%<br />
35%<br />
45%<br />
60%<br />
57%<br />
40%<br />
50% 52%<br />
58%<br />
20%<br />
45%<br />
27%<br />
0%<br />
Hem E Hem A LCR E LCR A OMA E<br />
E = < 16 ans, A= Adulte<br />
CNRP, Rapport d’activité 2003<br />
R<br />
I<br />
S
Pneumocoque: sensibilité à l’amoxicilline en 2002<br />
CMI<br />
S<br />
I<br />
R<br />
(µg/ml)<br />
≤ 0.5<br />
0.5 - 2<br />
> 2<br />
100%<br />
80%<br />
1% 1% 2% 1% 2%<br />
26% 27% 25%<br />
20%<br />
45%<br />
60%<br />
40%<br />
20%<br />
73% 72% 73% 79%<br />
53%<br />
R<br />
I<br />
S<br />
0%<br />
hémoc E hémoc A LCR E LCR A OMA<br />
E = < 16 ans, A= Adulte<br />
CNRP, Rapport d’activité 2003
Pneumocoque: sensibilité au céfotaxime en<br />
2002<br />
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hémoc E hémoc A LCR E LCR A OMA<br />
E = < 16 ans, A= Adulte<br />
CNRP, Rapport d’activité 2003
Pneumonies communautaires, examens à l’admission<br />
Systématiquement<br />
Signes de<br />
gravité<br />
Pleurésie<br />
Ventilation<br />
artificielle<br />
Au cas par cas<br />
Radio de thorax (face ET profil), NFS, iono,<br />
glycémie, gaz du sang, ECBC*, 2 hémocultures,<br />
Antigénuries légionelle et pneumocoque<br />
TP, TCA, recherche de CIVD, lactates<br />
Ponction de plèvre<br />
Aspiration trachéale<br />
Bilan hépatique<br />
* Quand l’ECBC est effectué de jour, l’examen direct est disponible dans les 2 heures (circuit habituel).<br />
* Quand il est effectué de nuit, l’examen direct est disponible le lendemain matin.
Pneumonies communautaires, avis spécialisé<br />
Signes cliniques de gravité et terrain particulier nécessitant un avis<br />
spécialisé (2992)<br />
• FR > 30/min<br />
• PaCO2 > 50 mmHg<br />
• Image radio étendue ou pleurésie<br />
• Hématocrite < 30% ou Hb < 9g/dl<br />
• TP < 30%<br />
• Plaquettes < 100 000 /mm 3<br />
• Leucocytes < 4000/mm 3 ou > 30 000/mm 3<br />
• Sites extrapulmonaires infectés<br />
• Splénectomie<br />
• Insuffisance respiratoire chronique<br />
• Insuffisance cardiaque<br />
• Alcoolisme chronique<br />
• VIH
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Pneumonies communautaires, admission<br />
Critères d’admission en réanimation (2424) ou en soins intensifs de<br />
pneumologie (2992)<br />
Syndrome septique<br />
PaO2 < 60 mmHg, ou hyperlactatémie,<br />
ou oligurie < 20 ml/h, ou dialyse<br />
ou confusion, ou trouble de la vigilance<br />
État de choc<br />
PAS < 90 mmHg, ou PAD < 60 mmHg,<br />
ou marbrures,ou drogues vasoactives,<br />
ou remplissage vasculaire<br />
Épuisement respiratoire, tirage,<br />
ventilation mécanique
Antibiothérapie initiale <strong>des</strong> pneumonies communautaires<br />
• Choc infectieux : débuter l’antibiothérapie immédiatement<br />
• En l’absence de choc :<br />
• Récupérer l’examen direct de l’ECBC.<br />
• Récupérer les antigénuries dans les 2 h<br />
• ECBC interprétable :< 10 cellules épithéliales et > 25<br />
leucocytes par champ
Antibiothérapie initiale <strong>des</strong> pneumonies communautaires<br />
ECBC négatif, in<br />
interprétable ou non<br />
disponible et antigénuries<br />
négatives<br />
Cocci à Gram + en<br />
diplocoques ou antigénurie<br />
neumocoque +<br />
Bacilles à Gram -<br />
Plusieurs espèces<br />
Antigénurie Légionelle +<br />
Abcès du poumon<br />
Signes de gravité<br />
• Sujet sain sans signe de gravité : Amoxicilline 1g x 3 IVD<br />
• Age > 70 ans, BPCO, alcoolisme, fausses routes : Amoxicilline-acide<br />
clavulanique 1g x 3 IV (+ érythromycine : 1g x 3 IV en 60 minutes si<br />
échec d’un traitement préalable par une bêta-lactamine)<br />
Amoxicilline 1g x 3 IVD<br />
Amoxicilline-acide clavulanique 1g x 3 IVD ou Céfotaxime 1g x 3 IVD<br />
selon la gravité<br />
Amoxicilline-acide clavulanique 1g x 3 IVD<br />
Erythromycine : 1g x 3 IV en 60 minutes<br />
Amoxicilline-acide clavulanique 1g x 3 IVD<br />
Céfotaxime 1g x 3 IVD + érythromycine : 1g x 3 IV en 60 minutes
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Antibiothérapie initiale <strong>des</strong> pneumonies communautaires<br />
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Céphalosporine vs fluoroquinolone ou macrolide<br />
Shefet, D. et al. Arch Intern Med 2005;165:1992-2000.
ANTIBIOTHERAPIE DANS LES EXACERBATIONS DE BPCO<br />
Dyspnée et purulence franche de l’expectoration<br />
± modification de son volume et de son aspect<br />
OUI<br />
NON : surveillance, pas d’antibiothérapie<br />
Facteur(s) de risque<br />
- Hypoxémie de repos (< 60<br />
mmHg)<br />
- Exacerbations fréquentes (≥<br />
4/an)<br />
- Corticothérapie par voie<br />
générale au long cours<br />
- Co-morbidité(s) (immunodépression,<br />
insuffisance<br />
hépato-cellulaire, insuffisance<br />
cardiaque, …)<br />
-VEMS < 30 % en état stable<br />
si celui-ci est disponible<br />
AMOXICILLINE + ACIDE CLAVULANIQUE Allergie à la pénicilline :<br />
1g x3/j per os pdt 7j, IV si VO impossible<br />
OU<br />
CEFUROXIME 250 mg x 2/j per os<br />
TELITHROMYCINE : 400 mg/j per os<br />
PRISTINAMYCINE 500 : 2 à 3 g/jour<br />
Echec<br />
ECBC à la recherche de<br />
Pseudomonas (ou Aspergillus)
Entérobactéries<br />
• Responsables d ’infections urinaires et<br />
intra-abdominales communautaires:<br />
– sensibilité de Escherichia coli:<br />
• Amoxicilline : 57%<br />
• Amoxicilline + inhibiteur de ß-lactamase: 60-65%<br />
• Céphalosporines de 3 ème génération: > 99%<br />
• Cotrimoxazole: 76%<br />
• Gentamicine: 97%
Sélection <strong>des</strong> bactéries résistantes sous<br />
la pression de sélection <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
Utilisation <strong>des</strong> fluoroquinolones et résistance<br />
<strong>des</strong> bacilles à Gram négatif<br />
Neuhauser et al. JAMA 2003;289:885-888.
š<br />
E. Coli et fluoroquinolones:<br />
Les messages<br />
les messages<br />
• Réduction de l’utilisations <strong>des</strong> fluoroquinolones<br />
– Diminution <strong>des</strong> souches de E. coli aux<br />
fluoroquinolones<br />
• Résistance : 2% en 1996 à 6% en 2001 (ONERBA)<br />
• - 20% de sensibilité si prise de fluoroquinolones dans les 6<br />
moisš<br />
Péan Y, Goldstein FW, De Bels F Méd Mal Infect 2001 ; 31 :609-21.<br />
• Pyélonéphrites communautaires bactériémiques aux<br />
urgences de l’<strong>HEGP</strong> (8 mois-34 patients en 2002):<br />
– 12% <strong>des</strong> souches résistantes à la ciprofloxacine<br />
– 0% pour les céphalosporines de troisième génération<br />
Mallat H, P. Grohs P, A. Levy A, Mainardi JL Méd Mal Infect 2004 ;<br />
34: 310-315
›<br />
PRISE EN CHARGE DES PYELONEPHRITES (PNA) COMMUNAUTAIRES<br />
Faire ECBU, hémocultures (2), NFS, créatininémie, glycémie et<br />
-HCG (femme jeune)<br />
PNA<br />
Simple<br />
Compliquée<br />
Pas d’imagerie<br />
Avec signe de gravité<br />
Sans signe de gravité<br />
Monothérapie<br />
le + svt<br />
dilatation<br />
Scanner en urgence<br />
Bithérapie + transfert<br />
En urologie si dilatation<br />
Echographie dans les 12h,<br />
Scanner si non amélioration à 48h00<br />
Lévofloxacine 500 mg J per os<br />
ou Ciprofloxacine 500 mg X 2/j per os<br />
ou céfotaxime 1g X 3 /J IVL+/-<br />
Gentamicine 4 mg/kg 1 fois<br />
Céfotaxime 1 g X 3/J+<br />
Gentamicine 4 mg/kj 1fois par j<br />
pendant 2 j<br />
Céfotaxime 1 g X 3/J IVL +/-<br />
Gentamicine 4 mg/kj 1fois par j<br />
pendant 2 j
PRISE EN CHARGE DES PROSTATITES AIGUES COMMUNAUTAIRES<br />
Faire ECBU, hémocultures (2), NFS, créatininémie, glycémie<br />
PROSTATITE<br />
aiguë<br />
Poussée aiguë de<br />
prostatite chronique<br />
Consommation AB<br />
(fluoroquinolones)<br />
Dans les 3 mois précédents<br />
Fluoroquinolones<br />
per os<br />
Céphalosporines de<br />
3 ème génération ivl<br />
Lévofloxacine 500 mg/J per os<br />
ou Ciprofloxacine 500 mg X 2/j per os<br />
Céfotaxime 1 g X 3/J
4 mots d’ordre<br />
• Y a-t-il une indication à une antibiothérapie<br />
• Y a-t-il une indication à une association<br />
d’<strong>antibiotiques</strong><br />
• Attention à la posologie : Attention au sousdosage<br />
• Réfléchir sur la durée: Attention au durée trop<br />
prolongée
Campagne Antibiotiques de l’AP-HP<br />
L’avenir <strong>des</strong> <strong>antibiotiques</strong><br />
se construit aujourd’hui.<br />
Préservons-le ensemble.<br />
Campagne Antibiotiques de l’AP-HP