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PCEM1 CAHIER D'EXERCICES de BIOCHIMIE 4. Biologie ...

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 16<br />

5.8.<strong>4.</strong> En adoptant la même représentation que celle du gène <strong>de</strong> l’enzyme E, représentez la<br />

structure du transcrit primaire, celle <strong>de</strong> l’ARNm et celle d’un ARNm qui résulterait<br />

d’un épissage alternatif <strong>de</strong> votre choix<br />

Pour chacune <strong>de</strong>s trois molécules, positionnez s’il y lieu, la coiffe et la queue polyA, en<br />

abrégé.<br />

5.8.5. a) Quel est le nom <strong>de</strong> la molécule complète qui constitue la coiffe<br />

b) Quel est le nom <strong>de</strong> chacune <strong>de</strong>s molécules simples qui composent la coiffe <br />

c) Citez <strong>de</strong>ux fonctions <strong>de</strong> la coiffe<br />

5.8.6. Que signifie polyA<br />

5.8.7. Quelle est la taille totale <strong>de</strong>s séquences codantes du gène qui co<strong>de</strong> l’enzyme E<br />

5.8.8. Quel est le nombre d’aci<strong>de</strong>s aminés <strong>de</strong> l’enzyme E<br />

5.8.9. Compte tenu <strong>de</strong>s éléments dont vous disposez sur le schéma, quelle est la séquence<br />

d’aci<strong>de</strong>s aminés en N-et en C-terminal <strong>de</strong> la protéine<br />

5.8.10. Une paire d’amorces correspondant aux <strong>de</strong>ux séquences nucléotidiques indiquées sur<br />

le schéma, est utilisée pour réaliser une amplification par PCR, d’ADN complémentaire<br />

(ADNc).<br />

a) Pouvez-vous utiliser l’ADNc <strong>de</strong> n’importe quel tissu <strong>de</strong> l’organisme (entourez)<br />

Justifiez en une phrase votre réponse<br />

Quelle est la taille attendue du fragment amplifié<br />

b) Pour réaliser la PCR, quels sont les réactifs que vous <strong>de</strong>vez ajouter au milieu qui contient<br />

déjà l’ADNc à amplifier et les amorces<br />

c) Combien <strong>de</strong> températures différentes utiliserez-vous pour chaque cycle <strong>de</strong> PCR<br />

5.8.11. Vous analysez la séquence <strong>de</strong> l’extrémité 3’ du<br />

premier exon par métho<strong>de</strong> enzymatique. Vous disposez<br />

pour cela <strong>de</strong> l’ADN complémentaire et d’une amorce<br />

simple brin ATg gCA<br />

a) Indiquez le nom complet et le nom abrégé (entre<br />

parenthèses), du nucléoti<strong>de</strong> spécifique qui a été utilisé<br />

pour réaliser la réaction <strong>de</strong> séquençage dont le produit a<br />

été déposé dans chacun <strong>de</strong>s 4 puits du gel<br />

d’électrophorèse représenté ci-<strong>de</strong>ssous (voir b)<br />

b) Représentez l’emplacement attendu <strong>de</strong>s ban<strong>de</strong>s sur le<br />

gel d’électrophorèse (en noircissant les cases<br />

correspondantes)<br />

5.9. Un gène <strong>de</strong> 10 kilobases (Kb) a subi une mutation au niveau d’un seul nucléoti<strong>de</strong> :<br />

remplacement d’une cytosine par une guanine. On cherche à i<strong>de</strong>ntifier la mutation en<br />

soumettant le gène normal et le gène muté à l’action d’une série d’ endonucléases <strong>de</strong><br />

restriction (étudiées indépendamment). Après électrophorèse en gel d’agarose, on<br />

obtient les résultats suivants exprimés en kb<br />

(précision <strong>de</strong> la métho<strong>de</strong> + 0,05 kb)<br />

Enzyme utilisée Spécificité Gène normal Gène muté<br />

EcoR I GAATTC 7,4+2,6 7,4+2,6<br />

Bgl II AGATCT 10 10<br />

Pst I CTGCAG 6+4 10<br />

Sac I GAGCTC 10 6+4<br />

a- Quelles sont vos conclusions en ce qui concerne l’effet <strong>de</strong> chaque enzyme sur<br />

chaque gène <br />

b- A la lumière <strong>de</strong> ces conclusions, reconstituez une séquence <strong>de</strong> 9 nucléoti<strong>de</strong>s en<br />

précisant le siège <strong>de</strong> la mutation.<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie

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