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PCEM1 CAHIER D'EXERCICES de BIOCHIMIE 4. Biologie ...

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FACULTE DE MEDECINE<br />

PIERRE & MARIE CURIE<br />

<strong>PCEM1</strong><br />

<strong>4.</strong> <strong>Biologie</strong><br />

Moléculaire<br />

L'étu<strong>de</strong> <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques<br />

<strong>CAHIER</strong> <strong>D'EXERCICES</strong><br />

<strong>de</strong> <strong>BIOCHIMIE</strong><br />

2005-2006<br />

EDITE PAR LES ENSEIGNANTS DE <strong>BIOCHIMIE</strong><br />

http://www.chusa.jussieu.fr/disc/bio_cell


Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 2<br />

<strong>CAHIER</strong> <strong>D'EXERCICES</strong> POUR <strong>PCEM1</strong><br />

<strong>BIOCHIMIE</strong><br />

IV. BIOLOGIE MOLECULAIRE:<br />

l'étu<strong>de</strong> <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques<br />

SOMMAIRE<br />

Page<br />

1. Structure <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques .........…………. 3<br />

2. Transcription ....................……........ 3<br />

3. Traduction .................……................ 4<br />

<strong>4.</strong> Réplication et Réparation ..........…......... 11<br />

5. Altérations du matériel génétique et<br />

Outils <strong>de</strong> <strong>Biologie</strong> moléculaire ......………... 12<br />

6. QCM ………………………….......………... 17<br />

7. Annales du concours……………….......……….. 25<br />

ANNEXES.<br />

I • Co<strong>de</strong> génétique ................………..... 28<br />

II • Co<strong>de</strong>s <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s aminés ......………..... 28<br />

Image <strong>de</strong> couverture :<br />

Photographie en microscopie électronique d'une fourche <strong>de</strong> réplication déficiente<br />

chez un mutant <strong>de</strong> levure. Une anomalie lors <strong>de</strong> la réplication d'ADN serait l'un <strong>de</strong>s<br />

mécanismes contribuant à l'instabilité génomique (Science-26 juil 2002<br />

www.sciencemag.org)<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie


Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 3<br />

1. STRUCTURE DES ACIDES NUCLEIQUES<br />

1.1 Structure <strong>de</strong> l’ADN<br />

a. Par convention la séquence d’une molécule d’ADN est écrite dans le sens 5’ (gauche) - 3’<br />

(droite).<br />

Quels sont les groupements chimiques correspondant à ces extrémités <br />

b. Un échantillon d’ADN contient 28,9 moles pour 100 d’adénine. Quels sont les<br />

pourcentages <strong>de</strong> thymine, guanine et cytosine Quelles caractéristiques structurales<br />

permettent <strong>de</strong> différencier ces bases<br />

c. Est-ce que la proposition suivante est vraie : « si la séquence d’un déoxyribonucléoti<strong>de</strong><br />

est p C p T p G p G p A p C , alors sa séquence complémentaire est p G p A p C p C p<br />

T p G » <br />

1.2 Soit le fragment d'ADN suivant:<br />

5' ACTTC 3'<br />

3' TGAAG 5'<br />

a. Par l'intermédiaire <strong>de</strong> quels atomes et <strong>de</strong> quel type <strong>de</strong> liaison cette structure est-elle<br />

stabilisée<br />

b. Comment peut-on dénaturer cette molécule<br />

c. Quel intérêt présente la possibilité <strong>de</strong> ré-associer <strong>de</strong>s simples brins d'ADN entre eux<br />

2. TRANSCRIPTION<br />

2.1 Déroulement <strong>de</strong> la transcription d’un gène<br />

a. Quelle est la définition d’un gène<br />

b. Quels sont les composants moléculaires nécesssaires à la transcription<br />

c. Comment se fait l’initiation <strong>de</strong> la transcription<br />

d. Quel est le sens <strong>de</strong> lecture <strong>de</strong> l’ADN lors <strong>de</strong> l’élongation<br />

e. Montrer comment un signal hormonal peut réguler l’expression d’un gène.<br />

2.2 Citer les 3 évènements indispensables à la maturation post-transcriptionnelle <strong>de</strong>s<br />

transcrits primaires d'ARN conduisant à la formation <strong>de</strong>s ARN messagers chez les<br />

Eucaryotes. Vous préciserez le déroulement chronologique, les étapes ainsi que le rôle <strong>de</strong><br />

chacune <strong>de</strong> ces modifications nucléaires.<br />

2.3 Compléter les propositions suivantes.<br />

a. La synthèse d’ARN, qui est aussi appelée ____________________, est un processus<br />

hautement sélectif.<br />

b. La transcription commence quand une molécule d’_________________________ se lie à une<br />

séquence ____________________ sur la double hélice d’ADN;<br />

c. L’___________________________ transcrit les gènes dont les ARN seront traduits en<br />

protéines, l’______________________________ synthétise les grands ARN ribosomiques, et<br />

l’_____________________________ produit une variété d’ARN stables très petits.<br />

d. L’addition d’un nucléoti<strong>de</strong> G méthylé à l’extrémité 5’ d’un transcrit initial forme la<br />

___________________ , qui semble protéger <strong>de</strong> la dégradation l’ARN en élongation, et joue un<br />

rôle important dans l’initiation <strong>de</strong> la synthèse protéique.<br />

e. L’extrémité 3’ <strong>de</strong> la plupart <strong>de</strong>s transcrits <strong>de</strong> la polymérase II est définie par une<br />

modification, au cours <strong>de</strong> laquelle le transcrit en élongation est clivé à un site spécifique, et<br />

une _________________ est ajoutée à l’extrémité 3’ coupée par une polymérase distincte.<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie


Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 4<br />

f. Les modifications <strong>de</strong>s extrémités 5’ et 3’ d’une chaîne d’ARN terminent la formation du<br />

_____________________ .<br />

g. Les séquences codantes d’ARN <strong>de</strong> chaque côté <strong>de</strong> l’intron sont réunies l’une à l’autre<br />

après que la séquence intronique ait été retirée; Cette réaction est connue sous le nom<br />

d’_____________________________ .<br />

h. Les séquences conservées aux <strong>de</strong>ux extrémités d’un intron sont appelées<br />

_______________________ et _____________________.<br />

2.4 Compléter les propositions suivantes.<br />

a. Les protéines _______________________ stimulent ou inhibent la transcription <strong>de</strong> certains<br />

groupes <strong>de</strong> gènes spécifiques.<br />

b. Le motif <strong>de</strong> liaison à l’ADN en ________________________ a été retrouvé dans <strong>de</strong>s protéines<br />

<strong>de</strong> liaison à l’ADN chez les eucaryotes et les procaryotes; il contient dans sa structure un ou<br />

plusieurs ions métalliques.<br />

c. Le motif ______________________________ est ainsi appelé car <strong>de</strong>ux hélices , provenant <strong>de</strong><br />

chaque monomère, se rejoignent pour former une bobine enroulée.<br />

d. Le motif ____________________________ consiste en une courte hélice reliée par une<br />

boucle à une <strong>de</strong>uxième hélice , plus longue.<br />

3. TRADUCTION<br />

3.1 Expression du gène <strong>de</strong> l’apolipoprotéine E<br />

Séquence du gène codant pour l’Apolipoprotéine E humaine(allèle Epsilon 4).<br />

(Genbank : HUMAPOE4)<br />

1 GGAACTTGAT GCTCAGAGAG GACAAGTCAT TTGCCCAAGG TCACACAGCT GGCAACTGGC AGACGAGATT CACGCCCTGG 80<br />

81 CAATTTGACT CCAGAATCCT AACCTTAACC CAGAAGCACG GCTTCAAGCC CTGGAAACCA CAATACCTGT GGCAGCCAGG 160<br />

161 GGGAGGTGCT GGAATCTCAT TTCACATGTG GGGAGGGGGC TCCTGTGCTC AAGGTCACAA CCAAAGAGGA AGCTGTGATT 240<br />

241 AAAACCCAGG TCCCATTTGC AAAGCCTCGA CTTTTAGCAG GTGCATCATA CTGTTCCCAC CCCTCCCATC CCACTTCTGT 320<br />

321 CCAGCCGCCT AGCCCCACTT TCTTTTTTTT CTTTTTTTGA GACAGTCTCC CTCTTGCTGA GGCTGGAGTG CAGTGGCGAG 400<br />

401 ATCTCGGCTC ACTGTAACCT CCGCCTCCCG GGTTCAAGCG ATTCTCCTGC CTCAGCCTCC CAAGTAGCTA GGATTACAGG 480<br />

481 CGCCCGCCAC CACGCCTGGC TAACTTTTGT ATTTTTAGTA GAGATGGGGT TTCACCATGT TGGCCAGGCT GGTCTCAAAC 560<br />

561 TCCTGACCTT AAGTGATTCG CCCACTGTGG CCTCCCAAAG TGCTGGGATT ACAGGCGTGA GCTACCGCCC CCAGCCCCTC 640<br />

641 CCATCCCACT TCTGTCCAGC CCCCTAGCCC TACTTTCTTT CTGGGATCCA GGAGTCCAGA TCCCCAGCCC CCTCTCCAGA 720<br />

721 TTACATTCAT CCAGGCACAG GAAAGGACAG GGTCAGGAAA GGAGGACTCT GGGCGGCAGC CTCCACATTC CCCTTCCACG 800<br />

801 CTTGGCCCCC AGAATGGAGG AGGGTGTCTG TATTACTGGG CGAGGTGTCC TCCCTTCCTG GGGACTGTGG GGGGTGGTCA 880<br />

881 AAAGACCTCT ATGCCCCACC TCCTTCCTCC CTCTGCCCTG CTGTGCCTGG GGCAGGGGGA GAACAGCCCA CCTCGTGACT 960<br />

961 GGGCTGCCCA GCCCGCCCTA TCCCTGGGGG AGGGGGCGGG ACAGGGGGAG CCCTATAATT GGACAAGTCT GGGATCCTTG 1040<br />

1041 AGTCCTACTC AGCCCCAGCG GAGGTGAAGG ACGTCCTTCC CCAGGAGCCG GTGAGAAGCG CAGTCGGGGG CACGGGGATG 1120<br />

1121 AGCTCAGGGG CCTCTAGAAA GAGCTGGGAC CCTGGGAAGC CCTGGCCTCC AGGTAGTCTC AGGAGAGCTA CTCGGGGTCG 1200<br />

1201 GGCTTGGGGA GAGGAGGAGC GGGGGTGAGG CAAGCAGCAG GGGACTGGAC CTGGGAAGGG CTGGGCAGCA GAGACGACCC 1280<br />

1281 GACCCGCTAG AAGGTGGGGT GGGGAGAGCA GCTGGACTGG GATGTAAGCC ATAGCAGGAC TCCACGAGTT GTCACTATCA 1360<br />

1361 TTATCGAGCA CCTACTGGGT GTCCCCAGTG TCCTCAGATC TCCATAACTG GGGAGCCAGG GGCAGCGACA CGGTAGCTAG 1440<br />

1441 CCGTCGATTG GAGAACTTTA AAATGAGGAC TGAATTAGCT CATAAATGGA ACACGGCGCT TAACTGTGAG GTTGGAGCTT 1520<br />

1521 AGAATGTGAA GGGAGAATGA GGAATGCGAG ACTGGGACTG AGATGGAACC GGCGGTGGGG AGGGGGTGGG GGGATGGAAT 1600<br />

1601 TTGAACCCCG GGAGAGGAAG ATGGAATTTT CTATGGAGGC CGACCTGGGG ATGGGGAGAT AAGAGAAGAC CAGGAGGGAG 1680<br />

1681 TTAAATAGGG AATGGGTTGG GGGCGGCTTG GTAAATGTGC TGGGATTAGG CTGTTGCAGA TAATGCAACA AGGCTTGGAA 1760<br />

1761 GGCTAACCTG GGGTGAGGCC GGGTTGGGGG CGCTGGGGGT GGGAGGAGTC CTCACTGGCG GTTGATTGAC AGTTTCTCCT 1840<br />

1841 TCCCCAGACT GGCCAATCAC AGGCAGGAAG ATGAAGGTTC TGTGGGCTGC GTTGCTGGTC ACATTCCTGG CAGGTATGGG 1920<br />

1921 GGCGGGGCTT GCTCGGTTCC CCCCGCTCCT CCCCCTCTCA TCCTCACCTC AACCTCCTGG CCCCATTCAG ACAGACCCTG 2000<br />

2001 GGCCCCCTCT TCTGAGGCTT CTGTGCTGCT TCCTGGCTCT GAACAGCGAT TTGACGCTCT CTGGGCCTCG GTTTCCCCCA 2080<br />

2081 TCCTTGAGAT AGGAGTTAGA AGTTGTTTTG TTGTTGTTGT TTGTTGTTGT TGTTTTGTTT TTTTGAGATG AAGTCTCGCT 2160<br />

2161 CTGTCGCCCA GGCTGGAGTG CAGTGGCGGG ATCTCGGCTC ACTGCAAGCT CCGCCTCCCA GGTCCACGCC ATTCTCCTGC 2240<br />

2241 CTCAGCCTCC CAAGTAGCTG GGACTACAGG CACATGCCAC CACACCCGAC TAACTTTTTT GTATTTTCAG TAGAGACGGG 2320<br />

2321 GTTTCACCAT GTTGGCCAGG CTGGTCTGGA ACTCCTGACC TCAGGTGATC TGCCCGTTTC GATCTCCCAA AGTGCTGGGA 2400<br />

2401 TTACAGGCGT GAGCCACCGC ACCTGGCTGG GAGTTAGAGG TTTCTAATGC ATTGCAGGCA GATAGTGAAT ACCAGACACG 2480<br />

2481 GGGCAGCTGT GATCTTTATT CTCCATCACC CCCACACAGC CCTGCCTGGG GCACACAAGG ACACTCAATA CATGCTTTTC 2560<br />

2561 CGCTGGGCCG GTGGCTCACC CCTGTAATCC CAGCACTTTG GGAGGCCAAG GTGGGAGGAT CACTTGAGCC CAGGAGTTCA 2640<br />

2641 ACACCAGCCT GGGCAACATA GTGAGACCCT GTCTCTACTA AAAATACAAA AATTAGCCAG GCATGGTGCC ACACACCTGT 2720<br />

2721 GCTCTCAGCT ACTCAGGAGG CTGAGGCAGG AGGATCGCTT GAGCCCAGAA GGTCAAGGTT GCAGTGAACC ATGTTCAGGC 2800<br />

2801 CGCTGCACTC CAGCCTGGGT GACAGAGCAA GACCCTGTTT ATAAATACAT AATGCTTTCC AAGTGATTAA ACCGACTCCC 2880<br />

2881 CCCTCACCCT GCCCACCATG GCTCCAAAGA AGCATTTGTG GAGCACCTTC TGTGTGCCCC TAGGTAGCTA GATGCCTGGA 2960<br />

2961 CGGGGTCAGA AGGACCCTGA CCCGACCTTG AACTTGTTCC ACACAGGATG CCAGGCCAAG GTGGAGCAAG CGGTGGAGAC 3040<br />

3041 AGAGCCGGAG CCCGAGCTGC GCCAGCAGAC CGAGTGGCAG AGCGGCCAGC GCTGGGAACT GGCACTGGGT CGCTTTTGGG 3120<br />

3121 ATTACCTGCG CTGGGTGCAG ACACTGTCTG AGCAGGTGCA GGAGGAGCTG CTCAGCTCCC AGGTCACCCA GGAACTGAGG 3200<br />

3201 TGAGTGTCCC CATCCTGGCC CTTGACCCTC CTGGTGGGCG GCTATACCTC CCCAGGTCCA GGTTTCATTC TGCCCCTGTC 3280<br />

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 5<br />

3281 GCTAAGTCTT GGGGGGCCTG GGTCTCTGCT GGTTCTAGCT TCCTCTTCCC ATTTCTGACT CCTGGCTTTA GCTCTCTGGA 3360<br />

3361 ATTCTCTCTC TCAGCTTTGT CTCTCTCTCT TCCCTTCTGA CTCAGTCTCT CACACTCGTC CTGGCTCTGT CTCTGTCCTT 3440<br />

3441 CCCTAGCTCT TTTATATAGA GACAGAGAGA TGGGGTCTCA CTGTGTTGCC CAGGCTGGTC TTGAACTTCT GGGCTCAAGC 3520<br />

3521 GATCCTCCCG CCTCGGCCTC CCAAAGTGCT GGGATTAGAG GCATGAGCAC CTTGCCCGGC CTCCTAGCTC CTTCTTCGTC 3600<br />

3601 TCTGCCTCTG CCCTCTGCAT CTGCTCTCTG CATCTGTCTC TGTCTCCTTC TCTCGGCCTC TGCCCCGTTC CTTCTCTCCC 3680<br />

3681 TCTTGGGTCT CTCTGGCTCA TCCCCATCTC GCCCGCCCCA TCCCAGCCCT TCTCCCCCGC CTCCCCACTG TGCGACACCC 3760<br />

3761 TCCCGCCCTC TCGGCCGCAG GGCGCTGATG GACGAGACCA TGAAGGAGTT GAAGGCCTAC AAATCGGAAC TGGAGGAACA 3840<br />

3841 ACTGACCCCG GTGGCGGAGG AGACGCGGGC ACGGCTGTCC AAGGAGCTGC AGGCGGCGCA GGCCCGGCTG GGCGCGGACA 3920<br />

3921 TGGAGGACGT GCGCGGCCGC CTGGTGCAGT ACCGCGGCGA GGTGCAGGCC ATGCTCGGCC AGAGCACCGA GGAGCTGCGG 4000<br />

4001 GTGCGCCTCG CCTCCCACCT GCGCAAGCTG CGTAAGCGGC TCCTCCGCGA TGCCGATGAC CTGCAGAAGC GCCTGGCAGT 4080<br />

4081 GTACCAGGCC GGGGCCCGCG AGGGCGCCGA GCGCGGCCTC AGCGCCATCC GCGAGCGCCT GGGGCCCCTG GTGGAACAGG 4160<br />

4161 GCCGCGTGCG GGCCGCCACT GTGGGCTCCC TGGCCGGCCA GCCGCTACAG GAGCGGGCCC AGGCCTGGGG CGAGCGGCTG 4240<br />

4241 CGCGCGCGGA TGGAGGAGAT GGGCAGCCGG ACCCGCGACC GCCTGGACGA GGTGAAGGAG CAGGTGGCGG AGGTGCGCGC 4320<br />

4321 CAAGCTGGAG GAGCAGGCCC AGCAGATACG CCTGCAGGCC GAGGCCTTCC AGGCCCGCCT CAAGAGCTGG TTCGAGCCCC 4400<br />

4401 TGGTGGAAGA CATGCAGCGC CAGTGGGCCG GGCTGGTGGA GAAGGTGCAG GCTGCCGTGG GCACCAGCGC CGCCCCTGTG 4480<br />

4481 CCCAGCGACA ATCACTGAAC GCCGAAGCCT GCAGCCATGC GACCCCACGC CACCCCGTGC CTCCTGCCTC CGCGCAGCCT 4560<br />

4561 GCAGCGGGAG ACCCTGTCCC CGCCCCAGCC GTCCTCCTGG GGTGGACCCT AGTTTAATAA AGATTCACCA AGTTTCACGC 4640<br />

4641 ATCTGCTGGC CTCCCCCTGT GATTTCCTCT AAGCCCCAGC CTCAGTTTCT CTTTCTGCCC ACATACTGCC ACACAATTCT 4720<br />

4721 CAGCCCCCTC CTCTCCATCT GTGTCTGTGT GTATCTTTCT CTCTGCCCTT TTTTTTTTTT TAGACGGAGT CTGGCTCTGT 4800<br />

4801 CACCCAGGCT AGAGTGCAGT GGCACGATCT TGGCTCACTG CAACCTCTGC CTCTTGGGTT CAAGCGATTC TGCTGCCTCA 4880<br />

4881 GTAGCTGGGA TTACAGGCTC ACACCACCAC ACCCGGCTAA TTTTTGTATT TTTAGTAGAG ACGAGCTTTC ACCATGTTGG 4960<br />

4961 CCAGGCAGGT CTCAAACTCC TGACCAAGTG ATCCACCCGC CGGCCTCCCA AAGTGCTGAG ATTACAGGCC TGAGCCACCA 5040<br />

5041 TGCCCGGCCT CTGCCCCTCT TTCTTTTTTA GGGGGCAGGG AAAGGTCTCA CCCTGTCACC CGCCATCACA GCTCACTGCA 5120<br />

5121 GCCTCCACCT CCTGGACTCA AGTGATAAGT GATCCTCCCG CCTCAGCCTT TCCAGTAGCT GAGACTACAG GCGCATACCA 5200<br />

5201 CTAGGATTAA TTTGGGGGGG GGTGGTGTGT GTGGAGATGG GGTCTGGCTT TGTTGGCCAG GCTGATGTGG AATTCCTGGG 5280<br />

5281 CTCAAGCGAT ACTCCCACCT TGGCCTCCTG AGTAGCTGAG ACTACTGGCT AGCACCACCA CACCCAGCTT TTTATTATTA 5360<br />

5361 TTTGTAGAGA CAAGGTCTCA ATATGTTGCC CAGGCTAGTC TCAAACCCCT GGCTCAAGAG ATCCTCCGCC ATCGGCCTCC 5440<br />

5441 CAAAGTGCTG GGATTCCAGG CATGGGCTCC GAGCGGCCTG CCCAACTTAA TAATATTGTT CCTAGAGTTG CACTC 5515<br />

La séquence ci-jointe est celle du gène <strong>de</strong> l'apolipoprotéine E humaine, allèle e<strong>4.</strong> Le <strong>de</strong>rnier<br />

nucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> chaque ligne est numéroté sur la droite (n° <strong>de</strong> position).<br />

3.1.1 Certaines parties <strong>de</strong> cette séquences ont été soulignées d'un trait simple; examinez<br />

avec soin le début et la fin <strong>de</strong>s séquences qui sont situées entre ces séquences<br />

soulignées: à quoi correspon<strong>de</strong>nt les séquences soulignées <br />

3.1.2 Quelles sont les fonctions (rôles) <strong>de</strong>s protéines qui se fixent en premier sur ce<br />

gène dans la région allant du nucléoti<strong>de</strong> 975 au nucléoti<strong>de</strong> 1046 <br />

3.1.3 Quel est le rôle du triplet <strong>de</strong> nucléoti<strong>de</strong>s en 1871-1873 <br />

3.1.4 Quelle est la traduction <strong>de</strong> la séquence 1847-1913 <strong>de</strong> ce gène <br />

3.1.5 Le nucléoti<strong>de</strong> en position 1913 est un G qui fait partie <strong>de</strong> la séquence traduite:<br />

quel est sa position dans le cadre <strong>de</strong> lecture: N1, N2 ou N3 <br />

3.1.6 Le nucléoti<strong>de</strong> en position 3007 est un G qui fait partie <strong>de</strong> la séquence traduite:<br />

quel est sa position dans le cadre <strong>de</strong> lecture: N1, N2 ou N3 <br />

3.1.7 Il existe dans le domaine <strong>de</strong> l'apolipoprotéine E codé par l'exon 4 du gène <strong>de</strong>ux<br />

Arginines qui peuvent être mutées en Cystéines par une simple substitution d'un<br />

nucléoti<strong>de</strong>: quelle est à ces endroits (soulignés <strong>de</strong>ux fois), la séquence du brin<br />

sens du gène muté<br />

3.1.8 Quelle sera la longueur après transcription et maturation (comprenant l'addition<br />

<strong>de</strong> 1000 AMP du côté 3'-OH) <strong>de</strong> l'ARN messager <strong>de</strong> l'apolipoprotéine E <br />

3.1.9 Quel est le rôle du codon (souligné <strong>de</strong>ux fois) TGA en 4495<br />

3.1.10 Quels sont les numéros <strong>de</strong>s nucléoti<strong>de</strong>s <strong>de</strong> la boîte <strong>de</strong> polyadénylation <br />

3.1.11 La sécrétion <strong>de</strong> la protéine hors <strong>de</strong>s cellules est suivie <strong>de</strong> l'hydrolyse d'un pepti<strong>de</strong><br />

<strong>de</strong> 18 aci<strong>de</strong>s aminés du côté N-terminal. Quel est le rôle <strong>de</strong> ce pepti<strong>de</strong> <br />

3.1.12 De combien d'aci<strong>de</strong>s aminés se compose l'apolipoprotéine E mature <br />

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 6<br />

3.2 Soit le schéma ci-contre représentant un ARNt (avec son anticodon).<br />

a. Quel est le nom <strong>de</strong> l'aci<strong>de</strong> aminé transporté par cet ARNt <br />

b. Quel est le nom du nucléoti<strong>de</strong> situé à l'extrémité 3' <strong>de</strong> cet ARNt <br />

c. Par quel type <strong>de</strong> liaison l'aci<strong>de</strong> aminé sera-t-il lié à cet ARNt <br />

3.3 Combien <strong>de</strong> liaisons phosphates riches en énergie sont consommées<br />

dans la synthèse d'une protéine <strong>de</strong> 75 résidus d’aci<strong>de</strong> aminé <br />

Commenter votre réponse.<br />

3.<strong>4.</strong><br />

3.<strong>4.</strong>1 Soit une séquence <strong>de</strong> bases présente sur un brin d’ADN (brin 1)<br />

....-G-A-C-T-T-A-C-A-C-G-C-G-A-T-T-T-T-A-T-A-T-A-G-C-....<br />

a. Recopiez cette séquence et écrivez la séquence du brin d’ADN complémentaire (brin 2)<br />

b. Sachant que l’ARNm issu <strong>de</strong> la transcription <strong>de</strong> ce fragment d’ADN co<strong>de</strong> le début d’une<br />

protéine:<br />

- déterminez quel est le brin matrice (justifiez votre réponse) et écrivez la séquence <strong>de</strong><br />

l’ARNm.<br />

- orientez toutes les séquences <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques;<br />

- écrivez la séquence du polypepti<strong>de</strong> traduit à partir <strong>de</strong> cet ARNm.<br />

c. A la suite d’une mutation, la 10 ème base (G) du brin 1 représenté ci-<strong>de</strong>ssus, a été<br />

remplacée par une adénine.<br />

Dans un autre mutant, cette même base G a été remplacée par une cytosine.<br />

Chez un troisième mutant, la même base G a été remplacée par une thymine.<br />

Enfin, chez un quatrième mutant, ce même nucléoti<strong>de</strong> G a été perdu.<br />

Ecrivez pour chaque cas les modifications introduites dans les séquences.<br />

Qu’advient-il <strong>de</strong> la protéine dans chaque cas<br />

3.<strong>4.</strong>2 Le co<strong>de</strong> génétique est dit redondant ou dégénéré.<br />

Comment s’exprime cette dégénérescence et quelle remarque peut-on faire à son<br />

sujet<br />

3.<strong>4.</strong>3 On estime que l’ensemble <strong>de</strong>s molécules d’ADN présentes dans le noyau d’une cellule<br />

humaine (avant la phase <strong>de</strong> réplication) représente 6 x 10 9 paires <strong>de</strong> nucléoti<strong>de</strong>s.<br />

Quelle longueur totale d’ADN cela représente-t-il Justifiez vos calculs en<br />

présentant votre raisonnement.<br />

3.<strong>4.</strong>4 Quels sont les différents types d’ARN matures présents dans une cellule<br />

eucaryote Précisez en 2 lignes maximum (pour chaque type) leur fonction<br />

respective.<br />

3.5 PROBLEME SUR LA SEQUENCE, LA TRANSCRIPTION ET LA TRADUCTION DU GENE SPO II G.<br />

Cet exercice est organisé autour <strong>de</strong> l’exploitation d’une séquence nucléotidique. On se<br />

propose d’analyser cette séquence en vue d’étudier successivement:<br />

- le sens <strong>de</strong> transcription,<br />

- le cadre <strong>de</strong> lecture<br />

- l’enchaînement <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s aminés<br />

- une propriété biologique <strong>de</strong> la protéine,<br />

- les nucléoti<strong>de</strong>s modifiés chez quelques mutants.<br />

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 7<br />

La séquence d’ADN représentée ci-<strong>de</strong>ssous est celle d’un fragment <strong>de</strong> 120 paires <strong>de</strong> bases<br />

entièrement contenu dans la partie traduite du gène spo II G <strong>de</strong> la bactérie Bacillus<br />

subtilis.<br />

5’P<br />

1 11 21 31<br />

G A A A A A A C T G A A A T T A C G G T T G A C G C A C C T C T G G T A T A A G<br />

41 51 61 71<br />

C T G C T G A T G A A A C T T G G G C T G A A A A G T G A T G A A G T C T A T T<br />

81 91 101 111<br />

A C A T A G G C G G<br />

G A G T G A A G C C C T G C C G C C T C C A T T A T C T A A<br />

3’ OH<br />

3.5.1 Le sens <strong>de</strong> transcription<br />

a. Sachant que la séquence donnée est celle du brin sens, indiquer par une flèche sur la<br />

séquence ci-<strong>de</strong>ssous le sens <strong>de</strong> progression <strong>de</strong> la transcription. Justifier.<br />

G A A A A A A C T G A A A T T A C G G T...............G C C C T G C C G C C T C C A T T A T C T A A<br />

1 11 101 111<br />

3.5.2 Le cadre <strong>de</strong> lecture<br />

a. Théoriquement l’information génétique portée par l’ARN m peut être traduite <strong>de</strong> trois<br />

façons différentes. Pourquoi <br />

b. Donner dans le tableau I ci-<strong>de</strong>ssous les différentes séquences prises par les trois<br />

codons stop au niveau <strong>de</strong>s trois brins d’aci<strong>de</strong> nucléique.<br />

TABLEAU I<br />

5’ P 3’ OH Séquences <strong>de</strong>s codons non-sens<br />

ARNm<br />

brin d’ADN sens<br />

brin d’ADN transcrit<br />

1er type 2ème type 3ème type<br />

c. Avec <strong>de</strong>s barres verticales, définir les trois cadres <strong>de</strong> lecture potentiels <strong>de</strong> la séquence<br />

étudiée. Dans chaque cas encadrer les codons stop.<br />

1er CADRE DE LECTURE POTENTIEL<br />

1 11 21 31<br />

G A A A A A A C T G A A A T T A C G G T T G A C G C A C C T C T G G T A T A A G<br />

41 51 61 71<br />

C T G C T G A T G A A A C T T G G G C T G A A A A G T G A T G A A G T C T A T T<br />

81 91 101 111<br />

A C A T A G G C G G<br />

G A G T G A A G C C C T G C C G C C T C C A T T A T C T A A<br />

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2ème CADRE DE LECTURE POTENTIEL<br />

1 11 21 31<br />

G A A A A A A C T G A A A T T A C G G T T G A C G C A C C T C T G G T A T A A G<br />

41 51 61 71<br />

C T G C T G A T G A A A C T T G G G C T G A A A A G T G A T G A A G T C T A T T<br />

81 91 101 111<br />

A C A T A G G C G G<br />

G A G T G A A G C C C T G C C G C C T C C A T T A T C T A A<br />

3ème CADRE DE LECTURE POTENTIEL<br />

1 11 21 31<br />

G A A A A A A C T G A A A T T A C G G T T G A C G C A C C T C T G G T A T A A G<br />

41 51 61 71<br />

C T G C T G A T G A A A C T T G G G C T G A A A A G T G A T G A A G T C T A T T<br />

81 91 101 111<br />

A C A T A G G C G G<br />

G A G T G A A G C C C T G C C G C C T C C A T T A T C T A A<br />

d. Quel est le cadre <strong>de</strong> lecture effectivement utilisé pour la synthèse <strong>de</strong> la protéine <br />

e. Si au cours d’une expérience préliminaire on établit la séquence d’un seul brin d’un<br />

fragment d’ADN que l’on sait être interne à un gène, il est possible, au moins en théorie <strong>de</strong><br />

déterminer le sens <strong>de</strong> la transcription. Comment <br />

3.5.3 L’enchaînement <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s aminés<br />

a. I<strong>de</strong>ntifier sur la séquence ci-<strong>de</strong>ssous l’extrémité qui co<strong>de</strong> pour la région N-terminale du<br />

fragment protéique. Justifier.<br />

1 11 111<br />

GAAAAAACTG AAAT ................................CCTC CATTATCTAA<br />

b. Donner dans le tableau II la composition en aci<strong>de</strong>s aminés du fragment protéique<br />

analysé.<br />

TABLEAU II<br />

Aci<strong>de</strong> aminé Nombre Aci<strong>de</strong> aminé Nombre<br />

ala Alanine leu Leucine<br />

arg Arginine lys Lysine<br />

asn Asparagine met Méthionine<br />

asp Aci<strong>de</strong> Aspartique phe Phénylalanine<br />

cys Cystéine pro Proline<br />

gln Glutamine ser Sérine<br />

glu Aci<strong>de</strong> Glutamique thr Thréonine<br />

gly Glycocolle trp Tryptophane<br />

his Histidine tyr Tyrosine<br />

ile Isoleucine val Valine<br />

3.5.4 Une propriété biologique <strong>de</strong> la protéine<br />

La protéine codée par le gène spo II G interagit avec l’ADN. Ce fait est-il compatible avec la<br />

composition en aci<strong>de</strong>s aminés du fragment analyse Pourquoi <br />

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3.5.5 Les nucléoti<strong>de</strong>s modifiés chez quelques mutants.<br />

Cette protéine peut-être purifiée à partir <strong>de</strong> la souche sauvage et <strong>de</strong> 3 mutants affectés dans<br />

le gène spo II G. Elle est soumise à une électrophorèse en conditions non dénaturantes;<br />

dans ces conditions la migration s’effectue selon la charge électrique.<br />

a. Quel nucléoti<strong>de</strong> doit-on trouver en position 71 chez les mutants pour obtenir les profils<br />

d’électrophorèse présentés dans le figure I <br />

FIGURE I<br />

Sauvage Mutant 1 Mutant 2 Mutant 3<br />

+<br />

- +<br />

Nucléoti<strong>de</strong><br />

G<br />

n°71<br />

3.5.6 En résumé :<br />

Le tableau III concerne 18 <strong>de</strong>s 120 nucléoti<strong>de</strong>s <strong>de</strong> la séquence<br />

TABLEAU III<br />

ADN . . . CAT ATA . . .<br />

DOUBLE<br />

-BRIN . . . GAA . . .<br />

ARNm . . . GUC . . .<br />

ANTICODON<br />

<strong>de</strong>s ARNt<br />

ACIDE<br />

AMINE<br />

CAG<br />

lys<br />

trp<br />

a. Déterminer le sens <strong>de</strong> transcription. Justifier.<br />

b. Orienter l’ARNm, les <strong>de</strong>ux brins <strong>de</strong> la molécule d’ADN et compléter le tableau III.<br />

c. Schématiser par un trait la chaîne polypeptidique en l’orientant et en donnant la<br />

position relative <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s aminés déterminés.<br />

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3.6 TRADUCTION<br />

3.6.1 Compléter directement sur le schéma ci-<strong>de</strong>ssous (Figure 1) les légen<strong>de</strong>s qui doivent<br />

indiquer :<br />

- les sous-unités<br />

ribosomales et le<br />

principal type d’ARN<br />

ribosomal (ARNr) dont<br />

elles sont constituées<br />

- les sites <strong>de</strong> fixation<br />

peptidique (site P) et<br />

aci<strong>de</strong> aminé (site A) du<br />

ribosome<br />

- les molécules d’ARN<br />

messager (ARNm) et<br />

d’ARN <strong>de</strong> transfert<br />

(ARNt)<br />

- les extrémités N -<br />

terminale et C -<br />

terminale <strong>de</strong> la chaîne<br />

peptidique en cours <strong>de</strong><br />

synthèse<br />

3.6.2 Ajouter directement sur le schéma ci-<strong>de</strong>ssous (Figure 2)<br />

- le résidu 7-méthylguanosine<br />

triphosphate (Gppp) à<br />

l’emplacement correct.<br />

- la séquence nucléotidique du<br />

premier codon <strong>de</strong> l’ARN messager.<br />

- la séquence nucléotidique <strong>de</strong><br />

l’extrémité 3’ <strong>de</strong> l’ARN messager.<br />

Déduire <strong>de</strong>s informations dont vous disposez sur la séquence d’ARN messager:<br />

- la séquence <strong>de</strong>s huit premiers aci<strong>de</strong>s aminés du pepti<strong>de</strong>.<br />

- la séquence du gène codant ces huit premiers aci<strong>de</strong>s aminés.<br />

3.6.3 - Citer quatre étapes nécessaires à l’incorporation du quatrième aci<strong>de</strong> aminé à partir <strong>de</strong><br />

cet aci<strong>de</strong> aminé libre.<br />

Indiquer pour chacune <strong>de</strong>s quatre étapes, si elle est directement couplée à l’hydrolyse <strong>de</strong><br />

liaison(s) riche(s) en énergie, en précisant le cas échéant, le nombre <strong>de</strong> liaison(s) riche(s)<br />

en énergie hydrolysées.<br />

- Citer le nom <strong>de</strong> l’enzyme et le numéro <strong>de</strong>s étapes qui permettent d’assurer la spécificité<br />

du quatrième aci<strong>de</strong> aminé incorporé.<br />

3.6.4 - Dans quel(s) compartiment(s) <strong>de</strong> la cellule a lieu la synthèse <strong>de</strong> cette chaîne<br />

peptidique<br />

- Dans quel(s) compartiment(s) <strong>de</strong> la cellule a eu lieu la synthèse du ribosome et quel est<br />

son <strong>de</strong>venir immédiat une fois que la synthèse <strong>de</strong> la chaîne peptidique sera achevée<br />

- Dans quel(s) compartiment(s) <strong>de</strong> la cellule a eu lieu la synthèse <strong>de</strong> l’ARN messager et<br />

quel est son <strong>de</strong>venir immédiat une fois que la synthèse <strong>de</strong> la chaîne peptidique sera<br />

achevée<br />

3.6.5 Le tableau suivant illustre trois mutations différentes <strong>de</strong>s codons 6 et 7 telles qu’elles<br />

apparaissent dans la séquence nucléotidique <strong>de</strong> l’ARN messager.<br />

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Position du codon 1 2 3 4 5 6 7 8<br />

ARNm Normal --- GCU GUU GCU AAU AUC UUU GGU<br />

ARNm avec Mutation X<br />

Suppression <strong>de</strong> 3 nucléoti<strong>de</strong>s<br />

ARNm avec Mutation Y<br />

Remplacement <strong>de</strong> 2 nucléoti<strong>de</strong>s<br />

ARNm avec Mutation Z<br />

Remplacement d’1 nucléoti<strong>de</strong><br />

--- GCU GUU GCU AAU AU U GGU<br />

--- GCU GUU GCU AAU AUC UAG GGU<br />

--- GCU GUU GCU AAU AUC UUC GGU<br />

Citer pour chacune <strong>de</strong>s mutation X, Y et Z:<br />

- le type <strong>de</strong> mutation :<br />

- ses conséquences éventuelles sur le cadre <strong>de</strong> lecture:<br />

- ses conséquences éventuelles sur le pepti<strong>de</strong> synthétisé:<br />

<strong>4.</strong> REPLICATION ET REPARATION<br />

<strong>4.</strong>1 On incube <strong>de</strong>s extraits solubles <strong>de</strong> colibacilles contenant <strong>de</strong> l’ADN avec un mélange <strong>de</strong> dATP,<br />

dTTP, dGTP et dCTP marqués tous avec du 32 P sur le phosphore . Après une pério<strong>de</strong><br />

d’incubation, le mélange est traité à l’aci<strong>de</strong> trichloracétique qui précipite l’ADN et laisse en<br />

solution les petites molécules.<br />

a. Si un <strong>de</strong>s quatre précurseurs manque, on ne trouve pas <strong>de</strong> radioactivité dans le précipité.<br />

Commenter.<br />

b. Aurait-on trouvé <strong>de</strong> la radioactivité si c’était le phosphore ou qui avait été marqué <br />

c. Dans la chaîne synthétisée <strong>de</strong> manière continue suivante, où est l’erreur Comment cette<br />

erreur sera-t-elle corrigée <br />

Matrice<br />

(3’) C - G - T - A - C - A - A - A- C - C - T - G - G - T - T - ...... (5’)<br />

Néosynthètisé<br />

(5’) G - C - A - T - G - T - T- T- G - G - A - A - ...... (3’)<br />

d. Cette chaîne, sous l’influence <strong>de</strong>s UV, peut présenter d’autres altérations. Lesquelles<br />

Comment seront-elles réparées<br />

<strong>4.</strong>2 Quelles sont les caractéristiques principales <strong>de</strong> la télomérase<br />

<strong>4.</strong>3 Compléter les propositions suivantes.<br />

a. L’enzyme responsable <strong>de</strong> la synthèse d’ADN dans la réplication comme dans la réparation<br />

est l’___________________.<br />

b. Lors <strong>de</strong> la réplication, la région active du chromosome est une structure en forme d’Y<br />

appelé une ______________________.<br />

c. L’enzyme qui scelle les brèches dans l’hélice lors <strong>de</strong> la synthèse et <strong>de</strong> la réparation <strong>de</strong><br />

l’ADN s’appelle: l’_____________________ .<br />

d. Lors <strong>de</strong> la réplication <strong>de</strong> l’ADN, le brin fils synthétisé en continu s’appelle:___________, et<br />

le brin synthétisé <strong>de</strong> manière discontinue est appelé_______________ .<br />

e. Si l’ADN polymérase positionne un nucléoti<strong>de</strong> incorrect à l’extrémité 3’, un domaine<br />

catalytique distinct possédant une activité_________________ enlève la base mal appariée.<br />

f. L’initiation <strong>de</strong> la synthèse d’ADN sur le brin à réplication discontinue requiert <strong>de</strong><br />

petites_________________ fabriquées par une enzyme appelée__________________, qui a pour<br />

substrat <strong>de</strong>s _______________________ .<br />

g. La séparation <strong>de</strong> 2 brins d’ADN au niveau <strong>de</strong> la fourche <strong>de</strong> réplication est catalysée par<br />

l’__________________, qui se déplace unidirectionnellemment le long <strong>de</strong> l’ADN grâce à l’énergie<br />

fournie par l’hydrolyse d’ATP;<br />

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h. Les________________, qui participent au relâchement <strong>de</strong> l’ADN, se lient à l’ADN simple brin<br />

<strong>de</strong> sorte que ses bases restent disponibles pour servir <strong>de</strong> matrice.<br />

k. Chez les bactéries et les levures, comme chez plusieurs virus infectant les cellules<br />

eucaryotes, on a montré que les fourches <strong>de</strong> réplication se forment au niveau <strong>de</strong> séquences<br />

particulières <strong>de</strong> l’ADN appelées__________________<br />

l. Les________________peuvent être considérées comme <strong>de</strong>s «nucléases réversibles» qui<br />

créent <strong>de</strong>s cassures transitoires, soit monocaténaires (type I), soit bicaténaires (type II).<br />

<strong>4.</strong>4 Compléter les propositions suivantes.<br />

a. La plupart <strong>de</strong>s modifications spontanées <strong>de</strong> l’ADN sont rapi<strong>de</strong>ment éliminées par un<br />

processus <strong>de</strong> correction appelé la _____________________; il est exceptionnel que les<br />

mécanismes <strong>de</strong> maintenance échouent, et permettent une modification <strong>de</strong> séquence<br />

permanente, qui est appelée une ______________________.<br />

b. Deux modifications spontanées courantes <strong>de</strong> l’ADN sont: la ____________________ qui<br />

résulte d’une rupture <strong>de</strong>s liaisons N-glycosidiques <strong>de</strong> l’adénine ou <strong>de</strong> la guanine au<br />

désoxyribose, et la _____________________ qui transforme la cytosine en uracile.<br />

c. Le processus <strong>de</strong> réparation <strong>de</strong>s fragments d’ l’ADN implique trois étapes: les enzymes<br />

appelées __________________ reconnaissent et excisent la portion modifiée du brin d’ADN, les<br />

__________________ resynthétisent la région excisée, et l’______________________ comble<br />

l’espace laissé.<br />

d. La simple excision <strong>de</strong> base implique 3 enzymes: ______________________<br />

5. ALTERATIONS DU MATERIEL GENETIQUE ET<br />

OUTILS DE BIOLOGIE MOLECULAIRE<br />

5.1 Compléter la séquence palindromique :<br />

A G A T <br />

<br />

5.2 Etablir une séquence d'aci<strong>de</strong> nucléique sur laquelle une endonucléase <strong>de</strong> restriction sera<br />

active.<br />

Si cette séquence était présente dans l'ADN d'une bactérie, serait-elle systématiquement<br />

coupée par l'endonucléase correspondante<br />

5.3 Séquençage d'un ADN par la technique <strong>de</strong> Sanger:<br />

a. Expliquez en quelques lignes le principe <strong>de</strong> la technique.<br />

b. Soit représenté ci-<strong>de</strong>ssous sur la ligne, un segment d'ADN monobrin. Son séquençage est<br />

effectué par la technique <strong>de</strong> Sanger, avec une amorce XY. En examinant le schéma<br />

représentant une partie <strong>de</strong> l'autoradiogrmme du gel <strong>de</strong> migration, écrire :<br />

• la séquence nucléotidique lue directement sur ce schéma du film.<br />

• la séquence réelle du segment d'ADN monobrin correspondant.<br />

A G C T<br />

sens <strong>de</strong><br />

migration<br />

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5.4 Diagnostic d'une maladie génétique<br />

5.<strong>4.</strong>1- Au cours <strong>de</strong> l’exploration d’une famille atteinte d’hypercalcémie hypocalciurique<br />

familiale, <strong>de</strong>s mutations inactivatrices du récepteur sensible au calcium, (responsables<br />

d’une augmentation du niveau <strong>de</strong><br />

calcémie à partir duquel la sécrétion <strong>de</strong><br />

PTH et la réabsorption du calcium par le<br />

tubule rénal sont inhibées) ont été<br />

mises en évi<strong>de</strong>nce par la technique <strong>de</strong><br />

séquençage <strong>de</strong> Sanger chez un sujet<br />

atteint <strong>de</strong> la maladie.<br />

a. En comparant les gels <strong>de</strong><br />

séquence ci-contre d’un sujet<br />

normal et d’un patient atteint,<br />

dites où est située la mutation<br />

<br />

b. De quel type est-elle<br />

c. Quel est le mo<strong>de</strong> probable <strong>de</strong><br />

transmission <strong>de</strong> cette maladie<br />

5.<strong>4.</strong>2 Pour rechercher la mutation chez les apparentés du sujet étudié, une étu<strong>de</strong> par PCR-<br />

RFLP a été pratiquée.<br />

a. Quel est le principe <strong>de</strong> cette métho<strong>de</strong>et son intérêt par rapport au southern<br />

blot<br />

b. Avec la séquence mutée apparait un site supplémentaire <strong>de</strong> digestion par l’enzyme <strong>de</strong><br />

restriction BslI qui coupe le palindrome (imparfait) suivant :<br />

5’ CCnnnnn/nnGG 3’<br />

n= nucléoti<strong>de</strong> indéterminé<br />

Fragment d’ADN amplifié <strong>de</strong> 504 pb:<br />

"/"= site <strong>de</strong> coupure.<br />

Séquence normale : <br />

L’amplification par PCR <strong>de</strong><br />

l’exon concerné du gène du<br />

récepteur du calcium, conduit à<br />

l’obtention d’un fragment <strong>de</strong> 504<br />

paires <strong>de</strong> bases. Ce fragment est<br />

soumis ensuite à une digestion<br />

par BslI qui génère différents<br />

types <strong>de</strong> fragments (cf. schéma).<br />

Séquence mutée :<br />

Bsl I<br />

Bsl I<br />

87 pb 313 pb<br />

104 pb<br />

<br />

Bsl I<br />

Bsl I<br />

Bsl I<br />

87 pb 133 pb 180 pb<br />

104 pb<br />

Sur l’arbre généalogique ci-contre<br />

est représenté le résultat <strong>de</strong> la<br />

migration sur gel d’agarose <strong>de</strong> ce<br />

produit <strong>de</strong> PCR, non digéré puis<br />

digéré par BslI, issu <strong>de</strong><br />

l’amplification <strong>de</strong> l’ADN<br />

génomique <strong>de</strong>s individus A, B, C<br />

et D.<br />

Lesquels <strong>de</strong> ces sujets<br />

présentent la mutation<br />

615 bp<br />

492 bp<br />

369 bp<br />

A<br />

B<br />

C<br />

D<br />

246 bp<br />

123 bp<br />

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5.5 Vous voulez étudier un fragment d'ADN <strong>de</strong> 536 paires <strong>de</strong> base correspondant à la région<br />

régulatrice située en amont (5') du gène <strong>de</strong> votre protéine favorite. Cette séquence est la<br />

suivante :<br />

Brin sens :<br />

5' GATTCAGGAGATTCACAC - - 500 nucléoti<strong>de</strong>s - - TCGGTACAGCTATACAGG 3'<br />

Brin antisens:<br />

3' CTAAGTCCTCTAAGTGTG - - 500 nucléoti<strong>de</strong>s - - AGCCATGTCGATATGTCC 5'<br />

5.5.1 Parmi les 8 amorces suivantes quelles sont les 2 amorces (à désigner par leurs<br />

lettres) qui permettront l'amplification par PCR <strong>de</strong> ce fragment <br />

a) 5' GATTCAGGAGATTCACAC 3'<br />

b) 5' CTAAGTCCTCTAAGTGTG 3'<br />

c) 5' CACACTTAGAGGACTTAG 3'<br />

d) 5' TCGGTACAGCTATACAGG 3'<br />

e) 5' AGCCATGTCGATATGTCC 3'<br />

f) 5' GTGTGAATCTCCTGAATC 3'<br />

g) 5' CCTGTATAGCTGTACCGA 3'<br />

h) 5' GGACATATCGACATGGCT 3'<br />

5.5.2 Décrire brièvement mais précisément les différents ingrédients requis et le principe<br />

<strong>de</strong> base <strong>de</strong> cette métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> PCR.<br />

5.5.3 Quelle expérience simple vous permettra <strong>de</strong> savoir si l'amplification spécifique <strong>de</strong><br />

votre fragment a réussi.<br />

5.6 Les ARN extraits du cytosol <strong>de</strong> différents tissus sont analysés par la technique dite du<br />

"Northern" en utilisant comme son<strong>de</strong> un oligonucléoti<strong>de</strong> correspondant à une partie du<br />

premier exon du gène <strong>de</strong> la calcitonine (hormone hypocalcémiante).<br />

Thyroï<strong>de</strong> Cerveau Foie Rein Muscle Rate<br />

Sens <strong>de</strong><br />

migration<br />

a. Interprétez cette image en indiquant les différentes hypothèses possibles.<br />

b. Lorsque la même expérience est réalisée sur <strong>de</strong>s ARN nucléaires <strong>de</strong> thyroï<strong>de</strong> ou <strong>de</strong><br />

cerveau, on observe surtout <strong>de</strong>s ban<strong>de</strong>s très faibles et diffuses, <strong>de</strong> plus haut poids<br />

moléculaire qu'en partant d'ARN cytosolique. A quoi correspon<strong>de</strong>nt-elles <br />

5.7 La question porte sur un gène codant une protéine humaine synthétisée exclusivement par<br />

le foie.<br />

Vous <strong>de</strong>vez étudier un segment d’ADN codant <strong>de</strong> ce gène, dont la séquence la plus<br />

fréquente dans la population générale est la suivante:<br />

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5’ ACT AAG GCA AAA TTC CGA GAG GCC CTA GAA GAT ACA CGA 3’<br />

La première étape <strong>de</strong> l’étu<strong>de</strong> va consister à amplifier, à partir <strong>de</strong> l’ADN génomique, la<br />

totalité <strong>de</strong> ce segment par PCR (Réaction <strong>de</strong> Polymérisation en Chaîne).<br />

5.7.1 Pouvez-vous utiliser indifféremment l’ADN extrait <strong>de</strong> cellules sanguines, <strong>de</strong> la peau,<br />

du foie ou d’autres tissus pour cette étu<strong>de</strong><br />

5.7.2 Vous <strong>de</strong>vez synthétiser <strong>de</strong>s amorces oligonucléotidiques dont la longueur vous est<br />

imposée: chacune d’elles doit comporter 9 nucléoti<strong>de</strong>s.<br />

Compte tenu <strong>de</strong> cet impératif, donnez la séquence <strong>de</strong> chacune <strong>de</strong>s amorces.


Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 15<br />

5.7.3 Outre l’ADN génomique et les amorces oligonucléotidiques, vous <strong>de</strong>vrez ajouter au<br />

milieu <strong>de</strong> la réaction, une enzyme et les molécules précurseurs nécessaires à la<br />

synthèse d’ADN.<br />

• Citez le nom <strong>de</strong> l’enzyme.<br />

• Citez le terme générique qui désigne l’ensemble <strong>de</strong>s molécules précurseurs<br />

nécessaires à la synthèse d’ADN.<br />

5.7.4 Décrivez en une phrase chacune <strong>de</strong>s 3 étapes qui se répète à chaque cycle <strong>de</strong> PCR:<br />

5.7.5 Un polymorphisme <strong>de</strong> restriction Hae III bi-allélique <strong>de</strong> ce gène, résulte d’une<br />

substitution C T qui fait disparaître le site <strong>de</strong> restriction Hae III (GGCC) dans<br />

l’ADN <strong>de</strong> 5 % <strong>de</strong>s sujets, comme cela est schématisé ci-<strong>de</strong>ssous:<br />

Pour étudier ce polymorphisme,<br />

le fragment<br />

amplifié par PCR est<br />

soumis à une digestion<br />

enzymatique par Hae III,<br />

puis à une<br />

électrophorèse.<br />

Sachant que l’enzyme HaeIII coupe sans décalage l’ADN double brin entre GG et CC,<br />

indiquez quels sont le nombre et la taille du ou <strong>de</strong>s fragments obtenus par<br />

électrophorèse, chez chacun <strong>de</strong>s trois sujets suivants:<br />

• Homozygote pour la version allélique fréquente.<br />

• Homozygote pour la version allélique rare.<br />

• Hétérozygote.<br />

5.7.6 Existe-t-il <strong>de</strong>s différences dans la séquence protéique correspondant à ce segment<br />

d’ADN (dont les codons sont représentés sur la figure) entre les 3 sujets<br />

Comment qualifiez-vous dans ce cas, la substitution C T<br />

5.7.7 Chez un sujet donné la même séquence correspondant à ce segment d’ADN, pourra-telle<br />

être détectée<br />

• dans une préparation d’ADN complémentaire <strong>de</strong> son foie<br />

• dans une préparation d’ADN complémentaire <strong>de</strong> ses cellules sanguines<br />

Justifiez vos réponses.<br />

5.8<br />

Ci-<strong>de</strong>ssous est représenté un gène <strong>de</strong> ménage (dont l’expression est, par définition, ubiquitaire)<br />

qui co<strong>de</strong> une enzyme humaine E.<br />

5.8.1. Combien ce gène comporte d’introns <br />

5.8.2. Si la taille <strong>de</strong> chaque intron est <strong>de</strong> 10 kpb, et celle du promoteur <strong>de</strong> 100 pb, quelle est,<br />

sans compter d’autres séquences régulatrices éventuelles, la taille du gène<br />

5.8.3. Si tous les exons sont conservés au cours <strong>de</strong> l’épissage, quelle sera, sans compter la<br />

coiffe et la queue poly A, la taille du transcrit primaire et la taille <strong>de</strong> l’ARN messager<br />

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5.8.<strong>4.</strong> En adoptant la même représentation que celle du gène <strong>de</strong> l’enzyme E, représentez la<br />

structure du transcrit primaire, celle <strong>de</strong> l’ARNm et celle d’un ARNm qui résulterait<br />

d’un épissage alternatif <strong>de</strong> votre choix<br />

Pour chacune <strong>de</strong>s trois molécules, positionnez s’il y lieu, la coiffe et la queue polyA, en<br />

abrégé.<br />

5.8.5. a) Quel est le nom <strong>de</strong> la molécule complète qui constitue la coiffe<br />

b) Quel est le nom <strong>de</strong> chacune <strong>de</strong>s molécules simples qui composent la coiffe <br />

c) Citez <strong>de</strong>ux fonctions <strong>de</strong> la coiffe<br />

5.8.6. Que signifie polyA<br />

5.8.7. Quelle est la taille totale <strong>de</strong>s séquences codantes du gène qui co<strong>de</strong> l’enzyme E<br />

5.8.8. Quel est le nombre d’aci<strong>de</strong>s aminés <strong>de</strong> l’enzyme E<br />

5.8.9. Compte tenu <strong>de</strong>s éléments dont vous disposez sur le schéma, quelle est la séquence<br />

d’aci<strong>de</strong>s aminés en N-et en C-terminal <strong>de</strong> la protéine<br />

5.8.10. Une paire d’amorces correspondant aux <strong>de</strong>ux séquences nucléotidiques indiquées sur<br />

le schéma, est utilisée pour réaliser une amplification par PCR, d’ADN complémentaire<br />

(ADNc).<br />

a) Pouvez-vous utiliser l’ADNc <strong>de</strong> n’importe quel tissu <strong>de</strong> l’organisme (entourez)<br />

Justifiez en une phrase votre réponse<br />

Quelle est la taille attendue du fragment amplifié<br />

b) Pour réaliser la PCR, quels sont les réactifs que vous <strong>de</strong>vez ajouter au milieu qui contient<br />

déjà l’ADNc à amplifier et les amorces<br />

c) Combien <strong>de</strong> températures différentes utiliserez-vous pour chaque cycle <strong>de</strong> PCR<br />

5.8.11. Vous analysez la séquence <strong>de</strong> l’extrémité 3’ du<br />

premier exon par métho<strong>de</strong> enzymatique. Vous disposez<br />

pour cela <strong>de</strong> l’ADN complémentaire et d’une amorce<br />

simple brin ATg gCA<br />

a) Indiquez le nom complet et le nom abrégé (entre<br />

parenthèses), du nucléoti<strong>de</strong> spécifique qui a été utilisé<br />

pour réaliser la réaction <strong>de</strong> séquençage dont le produit a<br />

été déposé dans chacun <strong>de</strong>s 4 puits du gel<br />

d’électrophorèse représenté ci-<strong>de</strong>ssous (voir b)<br />

b) Représentez l’emplacement attendu <strong>de</strong>s ban<strong>de</strong>s sur le<br />

gel d’électrophorèse (en noircissant les cases<br />

correspondantes)<br />

5.9. Un gène <strong>de</strong> 10 kilobases (Kb) a subi une mutation au niveau d’un seul nucléoti<strong>de</strong> :<br />

remplacement d’une cytosine par une guanine. On cherche à i<strong>de</strong>ntifier la mutation en<br />

soumettant le gène normal et le gène muté à l’action d’une série d’ endonucléases <strong>de</strong><br />

restriction (étudiées indépendamment). Après électrophorèse en gel d’agarose, on<br />

obtient les résultats suivants exprimés en kb<br />

(précision <strong>de</strong> la métho<strong>de</strong> + 0,05 kb)<br />

Enzyme utilisée Spécificité Gène normal Gène muté<br />

EcoR I GAATTC 7,4+2,6 7,4+2,6<br />

Bgl II AGATCT 10 10<br />

Pst I CTGCAG 6+4 10<br />

Sac I GAGCTC 10 6+4<br />

a- Quelles sont vos conclusions en ce qui concerne l’effet <strong>de</strong> chaque enzyme sur<br />

chaque gène <br />

b- A la lumière <strong>de</strong> ces conclusions, reconstituez une séquence <strong>de</strong> 9 nucléoti<strong>de</strong>s en<br />

précisant le siège <strong>de</strong> la mutation.<br />

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 17<br />

6. QCM<br />

1. Structure <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques<br />

1 Un nucléoti<strong>de</strong>, compris dans la structure d’un<br />

aci<strong>de</strong> ribonucléique a tous les caractères suivants<br />

sauf un, indiquer lequel :<br />

a. Il contient toujours <strong>de</strong>s atomes <strong>de</strong> carbone,<br />

d’hydrogène, d’oxygène, <strong>de</strong> phosphore et d’azote<br />

b. Il contient trois fonctions aci<strong>de</strong>s dont <strong>de</strong>ux<br />

estérifiées<br />

c. Il contient une liaison N-osidique<br />

d. Il contient une base azotée, purine ou<br />

pyrimidine<br />

e. Il contient un ose à six carbones (hexose)<br />

2 Dans la structure d’un ADN normal, toutes les<br />

structures ci-contre existent, sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a. d.<br />

b. e.<br />

c<br />

c. Le désoxyribose correspond à une molécule<br />

<strong>de</strong> ribose dans laquelle le OH en position 3' est<br />

remplacée par un H.<br />

d. Dans une molécule d'ADN, le caractère<br />

polyanionique est dû à l’ionisation du résidu<br />

phosphate.<br />

e. Les <strong>de</strong>ux chaînes d'une molécule d'ADN sont<br />

anti-parallèles.<br />

6 Toutes les affirmations concernant la<br />

structure <strong>de</strong> l’ADN, ci-<strong>de</strong>ssous sont vraies<br />

sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. Les molécules d’ADN sont formées <strong>de</strong> 2<br />

chaînes anti-parallèles.<br />

b. Les bases azotées liées 2 à 2 par <strong>de</strong>s<br />

liaisons hydrogènes sont tournées vers<br />

l’extérieur<br />

c. Les bases azotées sont parallèles entre elles,<br />

leurs noyaux empilés comme <strong>de</strong>s assiettes.<br />

d. Les désoxyriboses et les phosphates se<br />

trouvent à l’extérieur <strong>de</strong> la molécule d’ADN.<br />

e. Chaque nucléosome est constitué d’un<br />

fragment d’ADN <strong>de</strong> 145 nucléoti<strong>de</strong>s et <strong>de</strong> 8<br />

molécules d’Histones.<br />

7 La base azotée représentée ci-<strong>de</strong>ssous<br />

3 Dans la structure du fragment d'ADN représenté<br />

par la séquence A C T C , il y a toutes les<br />

liaisons, fonctions, molécules simples ou<br />

groupes d'atomes suivants, sauf un, indiquer<br />

lequel :<br />

a. Quatre liaisons N-osidiques<br />

b. Quatre ß-D-riboses<br />

c. Un noyau purine<br />

d. Trois fonctions amine primaire libres<br />

e. Deux cytidines<br />

4 Dans l'ADN, indiquez le ou les couple(s) <strong>de</strong><br />

trinucléoti<strong>de</strong>(s) complémentaire(s) en tenant<br />

compte <strong>de</strong>s conventions d'écriture <strong>de</strong>s<br />

séquences (c'est-à-dire <strong>de</strong> 5' vers 3')<br />

a. AAC et GTT<br />

b. AAC et TTG<br />

c. CAT et GTA<br />

d. CAT et ATG<br />

e. CTA et GAT<br />

5 Dans l'ADN, quelles sont les propositions<br />

justes<br />

a.Les bases G et C sont appariées par <strong>de</strong>ux<br />

liaisons hydrogènes.<br />

b.Les bases pyrimidiques sont appariées entre<br />

elles.<br />

a. est une base purique<br />

b. est la thymine<br />

c. s’apparie à une base pyrimidique dans la<br />

double hélice d’ADN<br />

d. forme 3 liaisons « hydrogène » avec la base<br />

complémentaire à laquelle elle s’apparie dans la<br />

double hélice d’ADN<br />

e. peut être méthylée dans l’ADN génomique<br />

8 Le nucléoti<strong>de</strong> composé représenté ci<strong>de</strong>ssous<br />

-<br />

O<br />

O<br />

P<br />

O-<br />

O<br />

O P O<br />

O-<br />

a. est l’adénosine triphosphate<br />

b. contient du désoxyribose<br />

c. possè<strong>de</strong> 2 liaisons riches en énergie<br />

d. possè<strong>de</strong> 2 liaisons « phosphoester »<br />

e. sert <strong>de</strong> précurseur à la synthèse d’ARN<br />

O<br />

P<br />

O-<br />

O<br />

CH2<br />

OH<br />

O<br />

OH<br />

N<br />

N<br />

NH2<br />

N<br />

N<br />

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Cahier d'Exercices <strong>de</strong> Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 18<br />

2. Transcription<br />

1 Un épissage alternatif à partir du site donneur <strong>de</strong> l’intron 2 dans un gène à 7 exons peut aboutir à tous les<br />

messagers suivants, sauf un, indiquer lequel:<br />

<br />

<br />

<br />

<br />

<br />

2 Parmi les propositions suivantes concernant la<br />

séquence <strong>de</strong> tous les ARN messagers,<br />

lesquelles sont exactes<br />

a. elle débute par un codon AUG<br />

b. elle se termine par un site <strong>de</strong> polyadénylation<br />

c. elle est formée exclusivement d'une séquence<br />

codant une protéine<br />

d. elle possè<strong>de</strong> à son extrémité 5' une coiffe<br />

formée d'un nucléoti<strong>de</strong> à méthylguanosine<br />

e. elle contient toujours un codon stop<br />

3 Parmi les propositions suivantes sur la<br />

transcription certaines sont exactes,<br />

lesquelles<br />

a. la transcription ne concerne que la production<br />

<strong>de</strong>s ARN messagers<br />

b. la transcription <strong>de</strong>s ARN <strong>de</strong> transfert est<br />

réalisée par l'ARN polymérase III<br />

c. la transcription utilise toujours les 2 brins du<br />

gène comme matrice, ce qui permet la production<br />

<strong>de</strong> 2 molécules d'ARN messager différentes<br />

d. la transcription nécessite l'ouverture <strong>de</strong><br />

l'hélice d'ADN<br />

e. seuls les exons sont transcrits<br />

4 La transcription<br />

a. l’ARN polymérase II synthétise les ARN<br />

précurseurs <strong>de</strong>s ARN messagers<br />

b. l’initiation <strong>de</strong> la transcription par l’ARN<br />

polymérase II nécessite l’assemblage d’un<br />

complexe <strong>de</strong> facteurs généraux <strong>de</strong> transcription sur<br />

le site promoteur du gène<br />

c. l’initiation <strong>de</strong> la transcription par l’ARN<br />

polymérase II n’est pas influencée par l’état <strong>de</strong><br />

con<strong>de</strong>nsation <strong>de</strong> la chromatine<br />

d. les séquences d’ADN régulatrices peuvent être<br />

séparées du promoteur par plusieurs milliers <strong>de</strong><br />

paires <strong>de</strong> nucléoti<strong>de</strong>s<br />

e.les facteurs <strong>de</strong> transcription peuvent se lier aux<br />

séquences d’ADN régulatrices par l’intermédiaire<br />

<strong>de</strong> liaisons hydrogène<br />

6 Le facteur TFIID<br />

a. est un facteur <strong>de</strong> transcription.<br />

b. est nécessaire à l’activité <strong>de</strong> transcription <strong>de</strong><br />

l’ARN polymérase II.<br />

c. se lie à une séquence d’ADN dans le promoteur<br />

<strong>de</strong>s gènes.<br />

d. se lie à une séquence d’ADN qui peut être<br />

localisée à plusieurs milliers <strong>de</strong> paires <strong>de</strong><br />

nucléoti<strong>de</strong>s du site d’initiation <strong>de</strong> la transcription.<br />

e. se lie à l’ADN par l’intermédiaire <strong>de</strong> son petit<br />

sillon.<br />

7 Les ARN messagers (ARNm)<br />

a. sont toujours synthétisés dans le sens 5’ 3’<br />

b. sont toujours traduits dans le sens 5’ 3’<br />

c. comportent toujours tous les exons du gène<br />

d. ont toujours une coiffe 7-méthylguanosine<br />

triphosphate en 5’<br />

e. ont toujours au moins un codon AUG<br />

8 Un exon<br />

a. est retrouvé sous forme <strong>de</strong> séquence d'ARN<br />

dans l'ARN messager.<br />

b. est une séquence d'ADN obligatoirement<br />

codante.<br />

c. est une séquence d'ADN présente en <strong>de</strong>hors<br />

<strong>de</strong>s gènes.<br />

d. est un domaine protéique particulier <strong>de</strong><br />

l'enveloppe <strong>de</strong> certains virus.<br />

e. co<strong>de</strong> pour un nombre entier d'aci<strong>de</strong>s aminés.<br />

9 La transcription d'un gène codant une protéine<br />

a. a lieu sur les ribosomes.<br />

b. met en jeu l'ARN polymérase II.<br />

c. utilise <strong>de</strong>s désoxyribonucléoti<strong>de</strong>s<br />

triphosphates.<br />

d. a lieu sur les <strong>de</strong>ux brins.<br />

e. fait intervenir la fixation <strong>de</strong> facteurs<br />

transcriptionnels sur le promoteur.<br />

5 L’ARN messager chez les eucaryotes<br />

a.possè<strong>de</strong> une séquence complémentaire du brin<br />

codant <strong>de</strong> l’ADN génomique<br />

b. ne comporte pas les introns<br />

c. peut comporter une partie seulement <strong>de</strong>s exons<br />

d. est toujours entièrement traduit<br />

e. possè<strong>de</strong> une longue répétition polyadénylique<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 19<br />

10 Transcription d'un gène par l'ARN polymérase II<br />

a. On appelle "région promotrice" l'ensemble<br />

<strong>de</strong>s séquences d'ADN situées immédiatement en<br />

amont du site d'initiation <strong>de</strong> la transcription et<br />

contrôlant la transcription.<br />

b. Un même gène peut donner <strong>de</strong>ux protéines<br />

différentes selon le tissu où il est transcrit.<br />

c. les séquences stimulatrices ou "enhancers"<br />

peuvent agir en trans.<br />

d. les séquences stimulatrices ou "enhancers"<br />

peuvent être situées dans un intron.<br />

e. les séquences stimulatrices ou "enhancers"<br />

peuvent être situées à plusieurs centaines <strong>de</strong><br />

paires <strong>de</strong> bases en 5' d'un gène.<br />

11 Parmi les propositions concernant les ARN<br />

messagers <strong>de</strong>s eucaryotes<br />

a. Leur biosynthèse est sous le contrôle <strong>de</strong><br />

facteurs TFII<br />

b. Ils sont codés par <strong>de</strong>s gènes dont le<br />

promoteur est situé à l'intérieur <strong>de</strong> la région<br />

transcrite.<br />

c. L'excision <strong>de</strong>s introns se fait dans le<br />

cytoplasme après fixation du pré-ARNm sur le<br />

ribosome.<br />

d. Au cours <strong>de</strong> l'excision-épissage se crée une<br />

liaison 2'-5' phosphodiester.<br />

e. La séquence poly A n'est pas traduite .<br />

12 Toutes les affirmations concernant la<br />

transcription ci-<strong>de</strong>ssous sont vraies sauf une,<br />

laquelle<br />

a. Le brin sens est le brin sur lequel la boîte<br />

TATA est du côté 3 ‘ <strong>de</strong> la boîte CAAT<br />

b. L’ARN polymérase I synthétise les ARN<br />

ribosomiques 28S, 18S et 5,8S<br />

c. L’ARN polymérase II synthétise les ARN<br />

messagers<br />

d. Les séquences cis-régulatrices sont reconnues<br />

par <strong>de</strong>s facteurs protéiques transrégulateurs<br />

ayant <strong>de</strong>s effets sur la vitesse <strong>de</strong> transcription<br />

e. L’excision-épissage est une étape <strong>de</strong> la<br />

maturation <strong>de</strong>s transcrits primaires où les exons<br />

sont coupés <strong>de</strong> la structure primaire et les introns<br />

liés les uns à la suite <strong>de</strong>s autres<br />

13 Le transcrit primaire du gène <strong>de</strong> la lipoprotéinelipase<br />

comprend toutes les séquences ou<br />

structures suivantes, sauf une, indiquer laquelle<br />

a. Boîte TATA.<br />

b. Site donneur <strong>de</strong> l’intron 1.<br />

c. Codon <strong>de</strong> la Méthionine.<br />

d. A du branchement.<br />

e. Boîte AAUAAA <strong>de</strong> polyadénylation.<br />

14 Le promoteur du gène <strong>de</strong> l’apolipoprotéine A-II<br />

contient toutes les séquences suivantes, sauf<br />

une, indiquer laquelle<br />

a. TGACTCA où vient se fixer un facteur transrégulateur<br />

<strong>de</strong> la famille AP-1<br />

b. ATG où vient se fixer le tARN <strong>de</strong> la méthionine<br />

c. GGCCC où vient se fixer la protéine Sp1<br />

<br />

<br />

d. TATA où vient se fixer la TATA binding protein<br />

e. CATCCAT où vient se fixer la CAAT binding<br />

protein<br />

15 Au cours <strong>de</strong> la transcription, toutes les espèces<br />

chimiques suivantes ont un rôle à jouer sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a. RNA polymérase II<br />

b. ribonucléoti<strong>de</strong>s<br />

c. désoxy- thymidine triphosphate (dTTP)<br />

d. protéine liant la boîte TATA (TBP)<br />

e. guanosine triphosphate<br />

16 Les propriétés suivantes sont toutes en accord<br />

avec la définition <strong>de</strong>s exons et <strong>de</strong>s introns chez<br />

les Eucaryotes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. l’exon est une séquence <strong>de</strong> nucléoti<strong>de</strong>s<br />

b. l’intron est compris entre 5’GT (site donneur) et<br />

AG 3’ (site receveur)<br />

c. la queue poly A ne fait partie d’aucun exon<br />

d. les introns sont transformés en lassos, puis<br />

détruits par la ribonucléase<br />

e. un exon est toujours situé entre <strong>de</strong>ux introns<br />

17 Au cours <strong>de</strong> la transcription d’un gène actif en<br />

pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> jeûne, les facteurs suivants<br />

s’unissent <strong>de</strong>ux à <strong>de</strong>ux comme indiqué, sauf<br />

dans un cas, indiquer lequel :<br />

a.Le récepteur <strong>de</strong>s glucocorticoï<strong>de</strong>s + le cortisol<br />

avec le Glucocorticoid Responsive Element (GRE)<br />

b. La RNA polymérase II avec le brin sens du<br />

gène à transcrire<br />

c. Une adénine du brin antisens avec un uracile<br />

du transcrit primaire<br />

d. Une sous-unité <strong>de</strong> la protéine TFIID avec la<br />

séquence TATA du promoteur<br />

e. Un nucléoti<strong>de</strong> triphosphate avec l’extrémité<br />

3’OH terminale du transcrit en cours <strong>de</strong> synthèse<br />

18 La fin <strong>de</strong> la transcription est le résultat <strong>de</strong> tous<br />

les évènements suivants sauf un, indiquer<br />

lequel :<br />

a. l’ARN polymérase (RNA polymerase) a<br />

synthétisé un ARN contenant la séquence<br />

AAUAAA<br />

b. l’ARN polymérase (RNA polymerase) s'est<br />

dissociée <strong>de</strong> l’ADN<br />

c. l’ARN polymérase (RNA polymerase) a lu la<br />

séquence TTATTT sur le brin antisens du gène<br />

transcrit<br />

d. l’ARN polymérase (RNA polymérase) a reconnu<br />

un codon <strong>de</strong> terminaison<br />

e. l’ARN polymérase (RNA polymerase) ne<br />

synthétise plus <strong>de</strong> liaisons et le transcrit primaire<br />

est coupé à son extrémité 3’OH terminale<br />

19 L’ARN messager mature a passé par toutes les<br />

étapes suivantes après la transcription, sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a. Le premier nucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> l’exon 3 a été<br />

hydrolysé <strong>de</strong> sa liaison avec le site donneur <strong>de</strong><br />

l’intron 2<br />

b. Il a traversé la membrane nucléaire<br />

c. Son extrémité 3’-OH a été allongée <strong>de</strong> plus <strong>de</strong><br />

1000 nucléoti<strong>de</strong>s<br />

d. Son extrémité 5’-phosphate a été complètée<br />

d’un nucléoti<strong>de</strong><br />

e. Sa séquence codante est <strong>de</strong>venue unique et<br />

continue<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 20<br />

3. Traduction<br />

1 Au cours du cycle d’initiation<br />

<strong>de</strong> la traduction, toutes les<br />

liaisons suivantes sont<br />

essentielles pour déterminer<br />

le cadre <strong>de</strong> lecture exact,<br />

sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. Fixation d’un Met-ARNt Met<br />

dans le site peptidique<br />

b. Liaison du l’uracile du<br />

codon AUG avec le <strong>de</strong>uxième<br />

nucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> l’anticodon<br />

c. Liaison <strong>de</strong> la guanine du<br />

codon AUG avec le troisième<br />

nucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> l’anticodon<br />

d. Présence <strong>de</strong>s trois<br />

nucléoti<strong>de</strong>s suivants (en 3’ du<br />

codon AUG) dans le site aci<strong>de</strong> aminé du ribosome<br />

e. Liaison du fragment 5’-non-codant <strong>de</strong> l’ARNm<br />

avec les ARNr et protéines du ribosome<br />

2 La lysyl-tRNA synthétase reconnaît spécifiquement<br />

tous les ligands suivants, sauf un,<br />

indiquer lequel :<br />

a. ARNt dont la boucle centrale porte l’anticodon<br />

UUU<br />

b. ATP<br />

c. ion Mg ++<br />

<br />

<br />

d. Lysine<br />

e. ARNt dont la boucle centrale porte l’anticodon<br />

AAA<br />

3 La tryptophanyl-tRNA synthétase possè<strong>de</strong> toutes les<br />

propriétés suivantes sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. elle possè<strong>de</strong> un site <strong>de</strong> liaison spécifique du<br />

tryptophane<br />

b. elle reçoit <strong>de</strong> l’énergie lors <strong>de</strong> l’hydrolyse <strong>de</strong><br />

l’ATP<br />

c. elle transfère spécifiquement le tryptophane sur<br />

le pepti<strong>de</strong> au cours <strong>de</strong> la traduction<br />

d. elle active le tryptophane en le liant à un ARNt<br />

e. elle n’est active qu’en présence d’un ARN<br />

comprenant <strong>de</strong>ux séquences 5’CCA 3’, à <strong>de</strong>ux<br />

endroits différents <strong>de</strong> sa structure primaire<br />

4 Toutes les liaisons suivantes sont hydrolysées ou<br />

rompues au cours <strong>de</strong> l’élongation d’une protéine,<br />

à chaque aci<strong>de</strong> aminé incorporé, sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a. Liaison ester à l’extrémité 3’-OH <strong>de</strong> l’ARNt du<br />

site peptidique<br />

b. Liaison anhydri<strong>de</strong> d’aci<strong>de</strong>s entre les phosphates<br />

du GTP lié au ribosome et au facteur eEF2 lors <strong>de</strong><br />

la translocation du messager<br />

c. Liaisons hydrogène entre l’anticodon <strong>de</strong> l’ARNt<br />

<strong>de</strong>venu libre du site peptidique et le codon <strong>de</strong><br />

l’aci<strong>de</strong> aminé incorporé à l’étape précé<strong>de</strong>nte<br />

d. Liaison anhydri<strong>de</strong> d’aci<strong>de</strong>s entre les phosphates<br />

du GTP fixé sur le facteur eEF1<br />

e. Liaison ami<strong>de</strong> entre l’extrémité COOH-terminale<br />

du pepti<strong>de</strong> en cours <strong>de</strong> synthèse et la fonction<br />

amine <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> aminé incorporé<br />

5 Au cours <strong>de</strong> l’élongation, du début d’une protéine,<br />

un ribosome se trouve successivement dans les<br />

<strong>de</strong>ux états ci-<strong>de</strong>ssous<br />

a. site P : ARNt~Val-COOH;<br />

site A : ARNt~Leu-Phe-Leu-Ala-Met-NH 2<br />

b. site P : ARNt non chargé ;<br />

site A : ARNt~Val- Met -Ala- Leu-Phe-Leu -NH 2<br />

c. site P : ARNt~Val- NH 2;<br />

site A : ARNt~Leu-Phe-Leu-Ala-Met -COOH<br />

d. site P : ARNt non chargé;<br />

site A : ARNt~Val-Leu-Phe-Leu-Ala-Met-NH 2<br />

e. site P : ARNt~Val-Leu-Phe-Leu-Ala-Met- NH 2;<br />

site A : ARNt non chargé<br />

6 Au cours <strong>de</strong> la traduction <strong>de</strong> l'extrémité 5'-<br />

terminale d'un messager dans un polyribosome<br />

lié, une ribonucléoprotéine du cytoplasme<br />

(Signal Recognition Particle = SRP) provoque<br />

tous les effets suivants, sauf un, indiquer lequel<br />

a. Transport et fixation du ribosome sur la<br />

ribophorine<br />

b. Arrêt <strong>de</strong> l'élongation <strong>de</strong> la protéine traduite<br />

c. Liaison spécifique <strong>de</strong> cette ribonucléoprotéine<br />

avec un récepteur du reticulum endoplasmique.<br />

d. Synthèse d'un chaînon d'aci<strong>de</strong>s aminés<br />

hydrophobes à l'extrémité NH 2-terminale <strong>de</strong> la<br />

protéine traduite.<br />

e. Liaison spécifique <strong>de</strong> cette ribonucléo-protéine<br />

avec les aci<strong>de</strong>s aminés hydrophobes <strong>de</strong> l'extrémité<br />

NH 2-terminale <strong>de</strong> la protéine traduite.<br />

7 L'incorporation d'un aci<strong>de</strong> aminé libre comme la<br />

leucine, dans la structure primaire d'une<br />

protéine en cours d'élongation requiert<br />

l'hydrolyse <strong>de</strong>s liaisons riches en énergie<br />

suivantes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. ATP AMP + pyrophosphate<br />

b. peptidyl-tARN tARN + pepti<strong>de</strong> transféré sur la<br />

leucine<br />

c. GTP-eEF1 GDP-eEF1<br />

d. GTP GDP + phosphate<br />

e. ATP ADP + phosphate<br />

8 Le méthionyl-ARNt<br />

a. est nécessaire à l’initiation <strong>de</strong> la traduction<br />

b. comprend l’ARNt dont l’anticodon est 5’ CAU 3’<br />

c. est synthétisé par une réaction enzymatique<br />

couplée à l’hydrolyse <strong>de</strong> 4 liaisons riches en<br />

énergie<br />

d. est synthétisée par une aminoacyl-ARNt<br />

synthétase spécifique <strong>de</strong> la méthionine<br />

e. comporte une liaison ester riche en énergie<br />

nécessaire à la formation d’une liaison peptidique<br />

entre la méthionine et un autre aci<strong>de</strong> aminé<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 21<br />

9 Les ARN <strong>de</strong> transfert (ARNt)<br />

a. représentent le type d’ARN le plus abondant <strong>de</strong><br />

la cellule<br />

b. sont au nombre <strong>de</strong> 20<br />

c. chacun d’entre eux se lie à un seul aminé<br />

d. chacun d’entre eux se lie à un seul codon<br />

e. se lient aux aci<strong>de</strong>s aminés par l’intermédiaire<br />

d’une liaison riche en énergie<br />

10 Quel est (ou quels sont) le(s) triplet(s)<br />

nucléotidique(s) du (ou <strong>de</strong>s) anti-codon(s) du<br />

(ou <strong>de</strong>s) ARNt Glu s'appariant avec les<br />

codons <strong>de</strong> l'aci<strong>de</strong> glutamique GAA et GAG<br />

a. CUU<br />

b. CUC<br />

c. UUC<br />

c. TTC<br />

c. CTC<br />

11 Indiquez la ou les propositions exactes<br />

a. La fixation du complexe aci<strong>de</strong> aminé ARNt<br />

sur l'ARN messager se fait par l'aci<strong>de</strong> aminé.<br />

b. Il existe trois triplets différents codant la fin <strong>de</strong><br />

la synthèse d'une chaîne peptidique.<br />

c. Le codon initiateur <strong>de</strong> la traduction co<strong>de</strong><br />

toujours pour la méthionine.<br />

d. Chez les eucaryotes, la transcription et la<br />

traduction ont lieu dans le même compartiment<br />

cellulaire.<br />

e. La transcription d'un gène se fait dans le sens<br />

5' -------> 3'.<br />

12 Parmi les codons suivants quels sont les 2 qui<br />

correspon<strong>de</strong>nt au codon d'initiation <strong>de</strong> la<br />

traduction d'une part et à l'un <strong>de</strong>s codons <strong>de</strong><br />

terminaison <strong>de</strong> chaîne protéique d'autre part<br />

a. AUC<br />

b. AUG<br />

c. UAG<br />

d. GAU<br />

e. UAC<br />

<br />

e. La mobilisation du peptidyl-tRNA du site A au<br />

site P sur le ribosome est rendue possible par<br />

l'hydrolyse <strong>de</strong> L'ATP<br />

15 Toutes les affirmations concernant la traduction<br />

ci-<strong>de</strong>ssous sont vraies sauf une, laquelle<br />

a. L’ARN messager mature est toujours traduit<br />

dans sa totalité<br />

b. Le codon <strong>de</strong> terminaison <strong>de</strong> la traduction est<br />

UGA<br />

c. Le co<strong>de</strong> génétique est fondé sur <strong>de</strong>s mots <strong>de</strong> 3<br />

lettres les codons<br />

d. Le codon <strong>de</strong> l’ARN m AUG est<br />

complémentaire <strong>de</strong> l’anticodon CAU <strong>de</strong> l’ARNt<br />

e. Le bilan énergétique <strong>de</strong> la traduction est<br />

fonction du nombre d’aci<strong>de</strong>s aminés incorporés<br />

dans la protéine.<br />

16. Toutes les affirmations concernant la<br />

traduction ci-<strong>de</strong>ssous sont vraies sauf une,<br />

laquelle<br />

a. Le signal pepti<strong>de</strong> est un pepti<strong>de</strong> d’adressage<br />

situé à l’extrémité NH2-terminale <strong>de</strong>s protéines à<br />

excréter<br />

b. L’acylation du pepti<strong>de</strong> néosynthétisé est une<br />

<br />

modification post– transcriptionnelle du pepti<strong>de</strong><br />

c. Le ribosome catalyse le transfert du pepti<strong>de</strong><br />

situé sur l’ARNt du site P sur la fonction amine <strong>de</strong><br />

l’aci<strong>de</strong> aminé <strong>de</strong> l’ARNt du site A. Il utilise<br />

l’énergie <strong>de</strong> la liaison riche en énergie entre le<br />

pepti<strong>de</strong> et l’ARNt du site P<br />

d. Le complexe ribosomique qui se dissocie <strong>de</strong><br />

l’ARN messager, nécessite un cofacteur eRF<br />

lorsque le site A se trouve en regard d’un codon<br />

non sens<br />

e. La séquence 5’ non traduite <strong>de</strong> l’ARN messager<br />

est reconnue par <strong>de</strong>s cofacteurs eIF4A, eIF4B et<br />

eIF4F qui s’y fixent<br />

13 La séquence nucléotidique <strong>de</strong> l'anticodon d'un<br />

ARNt est 5' -CCU - 3' quelle est dans la<br />

séquence suivante d'un ARN messager le triplet<br />

nucléotidique qui pourra s'apparier à<br />

l'anticodon<br />

a. d.<br />

b. e.<br />

c.<br />

14 Synthèse protéique :<br />

a. La synthèse protéique débute par l'aa N<br />

terminal et se termine par l'aa C terminal<br />

b. Les aci<strong>de</strong>s aminés sont activés par une<br />

liaison ester aux molécules d'ARN t<br />

c.La terminaison d'une synthèse protéique<br />

requiert la liaison d'un t RNA terminateurs à un<br />

codon stop du mRNA<br />

d. On trouve <strong>de</strong> la thymine dans la majorité <strong>de</strong>s<br />

tRNA<br />

<strong>4.</strong> Réplication et réparation<br />

1 La DNA-polymérase a toutes les activités<br />

suivantes au cours <strong>de</strong> la réplication d'un<br />

fragment <strong>de</strong> chromosome sauf une, indiquer<br />

laquelle :<br />

a. elle ajoute un nucléoti<strong>de</strong> en liant son phosphate<br />

à la fonction alcool en 3' d'un brin d'ADN qu'elle<br />

synthétise<br />

b. elle hydrolyse les amorces du brin "retardé" en<br />

commençant par leur côté 5'<br />

c. elle ajoute un nucléoti<strong>de</strong> en liant sa fonction<br />

alcool en 3' au phosphate 5' terminal d'un brin<br />

d'ADN qu'elle synthétise<br />

d. elle hydrolyse l'ARN <strong>de</strong>s amorces du brin<br />

"avancé" en commençant par leur côté 5'<br />

e. elle ajoute un nucléoti<strong>de</strong> en liant le phosphate à<br />

la fonction alcool en 3' d'une amorce d'ARN créée<br />

par la DNA-primase<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie


Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 22<br />

2 La synthèse du brin retardé par l'ADN polymérase<br />

se distingue <strong>de</strong> celle du brin rapi<strong>de</strong> par toutes les<br />

différences suivantes, sauf une, indiquer<br />

laquelle :<br />

a. elle consomme moins <strong>de</strong> désoxyribonucléosi<strong>de</strong>s<br />

triphosphates<br />

b. elle fait intervenir beaucoup plus souvent les<br />

enzymes ADN-primase et ADN-ligase<br />

c. elle engendre la production <strong>de</strong>s fragments<br />

d'Okazaki<br />

d. elle fait appel à <strong>de</strong>s amorces plus nombreuses<br />

e elle se fait à contre-sens du déplacement <strong>de</strong><br />

l'enzyme sur l'ADN<br />

3 L'ADN polymérase humaine est capable <strong>de</strong> toutes<br />

les activités enzymatiques suivantes, sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a.Con<strong>de</strong>nsation du phosphate d'un désoxyribonucléoti<strong>de</strong><br />

sur la fonction 3' alcool libre d'un brin<br />

d'ADN hybridé à un autre brin servant <strong>de</strong> modèle<br />

b. Hydrolyse <strong>de</strong> la liaison anhydri<strong>de</strong> entre le<br />

premier et les <strong>de</strong>ux autres phosphates d'un<br />

désoxyribonucléosi<strong>de</strong> triphosphate<br />

c. Con<strong>de</strong>nsation du phosphate du désoxyribonucléoti<strong>de</strong><br />

5' initial d'un brin d'ADN avec le<br />

désoxyribonucléoti<strong>de</strong> 3' terminal d'un autre brin<br />

d'ADN<br />

d. Hydrolyse du désoxyribonucléoti<strong>de</strong> 3' terminal<br />

d'un brin d'ADN<br />

e. Hydrolyse du ribonucléoti<strong>de</strong> 5' initial d'un ARN<br />

4 L'ADN polymérase catalyse toutes les réactions<br />

suivantes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. réparation d'une brèche étendue sur un ADN<br />

double brin lésé.<br />

b. synthèse d'une liaison ester entre un nucléosi<strong>de</strong><br />

triphosphate et l'extrémité 3'-OH d'un brin d'ADN<br />

c. hydrolyse <strong>de</strong> la liaison ester entre le <strong>de</strong>rnier et<br />

l'avant-<strong>de</strong>rnier nucléoti<strong>de</strong>s à l'extrémité 3'-OH d'un<br />

brin d'ADN<br />

d. hydrolyse <strong>de</strong> la liaison ester entre le premier et<br />

le <strong>de</strong>uxième nucléoti<strong>de</strong>s à l'extrémité 5'-phosphate<br />

d'un ARN<br />

e. synthèse <strong>de</strong> la liaison ester entre l'extrémité 3'-<br />

OH d'un brin d'ADN et l'extrémité 5'-phosphate d'un<br />

autre brin d'ADN<br />

5 Au cours <strong>de</strong> la réplication <strong>de</strong> l’ADN,<br />

l’incorporation d’un désoxyribonucléoti<strong>de</strong><br />

a. est catalysée par une ADN polymérase<br />

b. consomme l’énergie fournie par l’hydrolyse <strong>de</strong><br />

<strong>de</strong>ux liaisons riches en énergie<br />

c. peut avoir lieu à l’extrémité 3’-OH ou 5’-OH d’un<br />

brin amorce d’ADN<br />

d. peut avoir lieu à l’extrémité 3’-OH ou 5’-OH d’un<br />

brin amorce d’ARN synthétisé par une primase<br />

e. peut avoir lieu à l’extrémité 3’-OH d’un brin<br />

amorce d’ARN synthétisé par une télomérase<br />

6 Les ARN polymérases et les ADN polymérases<br />

ont en commun les caractéristiques suivantes<br />

a. catalysent l’addition d’unités nucléotidiques dans<br />

le sens 5’ 3’<br />

b. catalysent la formation <strong>de</strong> liaisons<br />

« phosphodiester »<br />

c. nécessitent une chaîne polynucléo-tidique<br />

matrice<br />

d. nécessitent une chaîne polynucléo-tidique<br />

amorce<br />

e. possè<strong>de</strong>nt une activité exonucléasique 3’ 5’<br />

7 Les principes et mécanismes généraux <strong>de</strong> la<br />

réplication<br />

a. Il est nécessaire d'ouvrir la molécule d'ADN<br />

en un point précis pour procé<strong>de</strong>r<br />

enzymatiquement à sa réplication in vivo.<br />

b La synthèse d'un brin nouveau d'ADN<br />

nécessite toujours la fabrication préalable d'une<br />

amorce d'ARN.<br />

c. Il existe au niveau d'une fourche <strong>de</strong><br />

réplication, <strong>de</strong>ux molécules d'ADN polymérases à<br />

fonctionnement simultané mais différent, l'une<br />

allongeant un brin d'ADN dans le sens 5' --->3' et<br />

l'autre allongeant l'autre brin dans le sens 3'--->5'.<br />

d. Le brin dit "précoce" est celui à synthèse<br />

discontinue et le brin dit "tardif" est celui à<br />

synthèse continue.<br />

e. Dans une boucle <strong>de</strong> réplication, les <strong>de</strong>ux<br />

fourches progressent en direction opposée, à la<br />

même vitesse.<br />

8 L'enzymologie <strong>de</strong> la réplication<br />

a. La primase est une catégorie d'ARN<br />

polymérase spécialisée dans la synthèse <strong>de</strong>s<br />

amorces d'ARN sur le brin à synthèse<br />

discontinue.<br />

b. La <strong>de</strong>struction <strong>de</strong>s amorces d'ARN sur le brin<br />

retardé est effectuée par l'enzyme nommée<br />

ligase.<br />

c. On appelle "ADN hélicase" la protéine<br />

séparant les <strong>de</strong>ux brins appariés <strong>de</strong> la molécule<br />

d'ADN à répliquer, au niveau <strong>de</strong> la pointe <strong>de</strong><br />

chaque fourche.<br />

d. Les enzymes <strong>de</strong> relaxation, fonctionnant en<br />

amont <strong>de</strong>s fourches, suppriment les contraintes<br />

mécaniques induites par la progression <strong>de</strong> la<br />

réplication le long <strong>de</strong> l'ADN.<br />

e. Les protéines dites <strong>de</strong> "stabilisation" se fixent<br />

sur les <strong>de</strong>ux double hélices récemment<br />

synthétisées pour les protéger <strong>de</strong> l'action <strong>de</strong>s<br />

nucléases.<br />

9 Quelle est l'activité enzymatique, retrouvée chez<br />

la plupart <strong>de</strong>s ADN polymérases, qui leur<br />

permet d'assurer une très gran<strong>de</strong> fidélité <strong>de</strong> la<br />

réplication<br />

a. Activité d'exonucléase 3' ----> 5'<br />

b. Activité d'exonucléase 5' ----> 3'<br />

c. Activité <strong>de</strong> polymérase<br />

d. Activité d'endonucléase<br />

e. Activité <strong>de</strong> synthèse d'amorce<br />

10 La réplication <strong>de</strong> l'ADN <strong>de</strong>s eucaryotes<br />

a. utilise <strong>de</strong>s désoxyribonucléoti<strong>de</strong>s<br />

triphosphates.<br />

b. fait intervenir <strong>de</strong> l'ARN.<br />

c. débute en un seul site.<br />

d. met en jeu <strong>de</strong>s ADN polymérases<br />

bidirectionnelles.<br />

e. est semi-conservative.<br />

11 Au cours <strong>de</strong> la réplication<br />

a. la croissance <strong>de</strong> la chaîne se fait toujours<br />

dans le sens 5' ----->3'<br />

b. les <strong>de</strong>ux brins <strong>de</strong> l'ADN se séparent grâce à<br />

<strong>de</strong>s protéines.<br />

c. les précurseurs sont les<br />

désoxyribonucléoti<strong>de</strong>s pour un brin et les<br />

ribonucléoti<strong>de</strong>s pour l'autre.<br />

d. il y a un épissage <strong>de</strong> l' ADN néoformé.<br />

e.la synthèse est continue pour un brin d'ADN et<br />

discontinue pour l'autre.<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 23<br />

12 On rencontre <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s nucléiques hybri<strong>de</strong>s<br />

(brins <strong>de</strong> ribonucléoti<strong>de</strong>s et <strong>de</strong> désoxyribonucléoti<strong>de</strong>s<br />

liés <strong>de</strong> façon antiparallèle et<br />

complémentaire) dans toutes les circonstances<br />

suivantes sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. entre l'amorce et le brin avancé <strong>de</strong> DNA au<br />

cours <strong>de</strong> la réplication<br />

b. au cours <strong>de</strong> la transcription inverse du RNA<br />

viral<br />

c. entre un élément cis-régulateur et un facteur<br />

trans-régulateur<br />

d. entre l'amorce et le brin retardé <strong>de</strong> DNA au<br />

cours <strong>de</strong> la réplication<br />

e. dans le site catalytique d'une RNA polymérase<br />

13 Toutes ces affirmations concernant la réplication<br />

sont vraies sauf une, laquelle :<br />

a Les 2 brins <strong>de</strong> l’ADN parental servent chacun <strong>de</strong><br />

modèle pour la synthèse d’un nouveau brin au<br />

cours <strong>de</strong> la réplication<br />

b. L’hélicase sert à stabiliser les brins séparés<br />

c. Les ADN Polymérases ont une activité<br />

exonucléasique<br />

d. Le Mg++ est essentiel pour l’activité <strong>de</strong>s ADN<br />

polymérases<br />

e. L’ADN Polymérase est associée à la primase<br />

et L’ADN Polymérase est la principale enzyme <strong>de</strong><br />

réplication en synthétisant sur le brin direct aussi<br />

bien que sur le brin retardé<br />

14 Toutes les affirmations concernant la réplication<br />

et la réparation ci-<strong>de</strong>ssous sont vraies sauf une,<br />

laquelle :<br />

a. La télomérase est une ADN polymérase qui<br />

peut continuer la synthèse d’un ADN simple brin ;<br />

b. Une structure avec entrecroisement <strong>de</strong> brins <strong>de</strong><br />

2 ADN homologues est appelée structure Holliday<br />

c. Le remplacement d’un A par un G est une<br />

transition<br />

d. Le remplacement d’un C par un T est une<br />

transversion<br />

e. Une mutation somatique n’est pas transmissible<br />

à la <strong>de</strong>scendance d’un sujet<br />

5. Altération du matériel génétique et outils<br />

<strong>de</strong> biologie moléculaire<br />

1 Dans la séquence suivante du gène d’une protéine<br />

CAGGCCGAGGCCAAAGTAAATCTCA<br />

correspondant à l’extrémité 3’ <strong>de</strong> l’exon 3, qui se<br />

traduit par Gln Ala Glu Ala Lys, indiquer quelle<br />

transition G A (nucléoti<strong>de</strong>s soulignés) est<br />

susceptible d’entraîner un empêchement <strong>de</strong><br />

l’excision épissage <strong>de</strong> l’intron 3 <strong>de</strong> cette<br />

protéine :<br />

a. CAAGCCGAGGCCAAAGTAAATCTCA<br />

b. CAGGCCGAGGCCAAAATAAATCTCA<br />

c. CAGACCGAGGCCAAAGTAAATCTCA<br />

d. CAGGCCGAGACCAAAGTAAATCTCA<br />

e. CAGGCCGAAGCCAAAGTAAATCTCA<br />

2 Toutes les lésions moléculaires suivantes peuvent<br />

se traduire par un caractère ou une maladie chez<br />

l’enfant qui les reçoit dans son patrimoine<br />

génétique, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. transition GA dans un codon <strong>de</strong> terminaison<br />

b. insertion d’un C dans le codon CCC d’une<br />

proline<br />

c. délétion <strong>de</strong> la boîte TATA<br />

d. transversion dans le codon d’un aci<strong>de</strong><br />

aspartique<br />

e. délétion du site receveur du <strong>de</strong>rnier intron<br />

3 Parmi les mutations nucléotidiques lesquelles<br />

vont changer la séquence en aci<strong>de</strong>s aminés <strong>de</strong><br />

la protéine<br />

a. mutation silencieuse<br />

b. mutation faux sens<br />

c. mutation non sens<br />

d. mutation somatique<br />

e. mutation conservatrice<br />

4 Parmi les propositions suivantes concernant le<br />

séquençage <strong>de</strong> l'ADN par la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

Sanger, lesquelles sont exactes<br />

a. les réactions parallèles <strong>de</strong> séquençage ne<br />

diffèrent entre elles que par la nature du<br />

didéoxynucléoti<strong>de</strong><br />

b. l'ADN à séquencer doit être sous forme<br />

double brin<br />

c. les réactions <strong>de</strong> séquence sont <strong>de</strong>s réactions<br />

<strong>de</strong> polycon<strong>de</strong>nsation <strong>de</strong> l'ADN<br />

d. chacune <strong>de</strong>s 4 réactions parallèles <strong>de</strong><br />

séquence se fait en présence d'un seul<br />

nucléoti<strong>de</strong><br />

e. la région séquencée est déterminée par la<br />

matrice d'ADN et non l'amorce<br />

5 Classer dans l’ordre les étapes <strong>de</strong> la métho<strong>de</strong> du<br />

« Southern blot »<br />

1 - Electrophorèse<br />

2 - Hybridation<br />

3 - Transfert sur membrane<br />

4 - Digestion <strong>de</strong> l’ADN par une enzyme <strong>de</strong> restriction<br />

5 - Autoradiographie<br />

a. 4 – 3 – 1 – 2 – 5<br />

b. 1 – 4 – 3 – 5 – 2<br />

c. 4 – 1 – 3 – 2 – 5<br />

d. 2 – 5 – 3 – 4 – 1<br />

e. 1 – 4 – 5 – 3 – 2<br />

6 L’ADN complémentaire<br />

a. l’ADN complémentaire est synthétisé par<br />

transcriptase inverse à partir d’ARN messager<br />

b. les banques d’ADN complémentaire sont<br />

i<strong>de</strong>ntiques quel que soit le tissu humain (foie,<br />

poumon, cœur, rein…) à partir duquel elles sont<br />

préparées<br />

c. les banques d’ADN complémentaire préparées<br />

à partir <strong>de</strong> différents tissus humains (foie, poumon,<br />

cœur, rein…) ont en commun les séquences<br />

correspondant aux gènes domestiques<br />

d. la séquence en aci<strong>de</strong>s aminés d’une protéine<br />

peut être déterminée à partir d’une séquence<br />

d’ADN complémentaire<br />

e. la séquence d’un intron peut être déterminée à<br />

partir d’une séquence ADN complémentaire<br />

7 Parmi les enzymes suivantes, laquelle ou<br />

lesquelles sont utilisées dans la technique <strong>de</strong><br />

RT-PCR<br />

a. ligase<br />

b. ADN polymérase thermostable<br />

c. transcriptase inverse<br />

d. ARN polymérase<br />

e. hélicase<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 24<br />

8 Les didésoxyribonucléosi<strong>de</strong>s triphosphates<br />

a. possè<strong>de</strong>nt trois liaisons riches en énergie<br />

b. ne possè<strong>de</strong>nt pas <strong>de</strong> groupement OH en 3’<br />

c. peuvent être incorporés par l’ADN polymérase<br />

à l’extrémité 3’-OH d’un brin d’ADN<br />

d. empêchent l’extension du brin d’ADN dans<br />

lequel ils sont incorporés<br />

e. peuvent être utilisés dans les techniques <strong>de</strong><br />

séquençage <strong>de</strong> l’ADN<br />

14 L'autoradiographie d'un gel <strong>de</strong> polyacrylami<strong>de</strong><br />

réalisée pour déterminer la séquence d'un<br />

fragment d'ADN selon la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Sanger est<br />

représentée ci-contre. Chaque indication figurant<br />

sur le schéma en haut du gel: G, A, T, C<br />

correspond à l'incubation en présence d'un <strong>de</strong>s 4<br />

didéoxynucléoti<strong>de</strong>s triphosphate. Quelle est la<br />

séquence <strong>de</strong> 5' vers 3' du fragment d'ADN matrice<br />

9 La transcriptase inverse<br />

a. est une ADN polymérase ARN dépendante .<br />

b. est une enzyme qui permet l'entrée d'un<br />

rétrovirus dans la cellule hôte.<br />

c. est utilisée pour la synthèse in vitro d'ADNc.<br />

d. a été isolée à partir d'un virus à ARN.<br />

e. est une enzyme qui permet la synthèse<br />

d'ADN à partir d'ARN.<br />

10 Parmi les propositions concernant la technique<br />

<strong>de</strong> Southern,<br />

a. fait obligatoirement intervenir une ADN<br />

polymérase<br />

b. permet l'analyse <strong>de</strong>s ARN messagers<br />

exprimés dans un tissu ou une cellule<br />

c. on peut utiliser comme son<strong>de</strong> un<br />

oligonucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> synthèse<br />

d. On peut utiliser comme son<strong>de</strong> un fragment<br />

d'ADN simple brin <strong>de</strong> séquence inconnue.<br />

e. permet <strong>de</strong> détecter <strong>de</strong>s mutations<br />

11 Parmi les propositions concernant la PCR<br />

a. permet l'amplification <strong>de</strong> fragments d'ADN <strong>de</strong><br />

séquence complètement inconnue<br />

b. nécessite <strong>de</strong>s amorces ARN.<br />

c. <strong>de</strong>ux amorces différentes sont nécessaires<br />

d. fait intervenir une ADN-ligase<br />

e. l'élongation par la Taq-polymérase se fait à<br />

72°C<br />

12. Un ADNc est:<br />

a. une séquence fabriquée in vitro pour <strong>de</strong>s<br />

besoins expérimentaux.<br />

b. une séquence ne contenant aucune<br />

information autre que celle qui est présente dans<br />

un ARN messager mature<br />

c. une séquence contenant l'ensemble <strong>de</strong>s<br />

exons et <strong>de</strong>s introns.<br />

d. une séquence dont on peut déduire une<br />

séquence polypeptidique.<br />

e. une séquence naturellement présente dans le<br />

génome humain.<br />

13 Les enzymes <strong>de</strong> restriction<br />

a. interviennent dans la réplication.<br />

b. ont une fonction chez les bactéries d'où on les<br />

extrait.<br />

c. reconnaissent le plus souvent <strong>de</strong>s<br />

palindromes.<br />

d. coupent l'ADN simple brin.<br />

e. peuvent couper un ADN circulaire.<br />

a. 5'-TACCTAGACATTGGTACCC-3'<br />

b. 5'-GG GTACCA ATGTCT AGGTA-3'<br />

c. 5'-ATGGATCTGTAACCATGGG-3'<br />

d. 5'-CC CATGGT TACAGA TCCAT-3'<br />

e. 5'-TACCTACACATTGGTACCC-3'<br />

15 La télomérase<br />

a. synthétise une séquence répétée d’ADN<br />

b. utilise une matrice d’ADN<br />

c. utilise comme amorce l’extrémité 3’-OH d’un brin<br />

d’ADN<br />

d. utilise une matrice d’ARN<br />

e. utilise comme amorce l’extrémité 3’-OH d’un brin<br />

d’ARN<br />

16 La délétion d’un codon entier dans l’ADN<br />

génomique<br />

a. est une mutation ponctuelle<br />

b. peut entraîner une modification <strong>de</strong> la séquence<br />

peptidique<br />

c. peut modifier le cadre <strong>de</strong> lecture<br />

d. peut affecter l’excision-épissage d’un intron<br />

e. peut introduire un codon stop<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie


Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 25<br />

7. Annales 2005<br />

QCM<br />

1. La figure suivante représente un fragment d’aci<strong>de</strong><br />

nucléique <strong>de</strong> quatre nucléoti<strong>de</strong>s.<br />

O<br />

H N<br />

C<br />

C<br />

CH3<br />

- O<br />

O<br />

P<br />

O<br />

C C H<br />

O N<br />

O CH2<br />

O<br />

NH2<br />

C H H C<br />

C<br />

H<br />

N C N<br />

H<br />

C C<br />

H C C C H<br />

O H<br />

N N<br />

- O P O CH2<br />

O<br />

O<br />

O<br />

C H H C<br />

C<br />

H<br />

N C N<br />

H<br />

C C<br />

C C C H<br />

O<br />

H H2N N H N<br />

- O P O CH2<br />

O<br />

NH2<br />

O<br />

C H H C<br />

C<br />

H<br />

C C<br />

H<br />

H N<br />

C<br />

C H<br />

C H<br />

O H<br />

O N<br />

- O P O CH2<br />

O<br />

O<br />

C H H C<br />

H<br />

C C<br />

H<br />

Ce fragment se situe dans une <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux séquences que<br />

voici :<br />

5’-AAGCGGCTATAGCCGCTT-3’<br />

5’-UUCGCCUAUAGCGCGAA-3’<br />

Quels sont dans cette séquence les cinq nucléoti<strong>de</strong>s<br />

suivants en allant du côté 3’ Indiquer ces cinq<br />

nucléoti<strong>de</strong>s parmi les propositions suivantes :<br />

a. CGCTT<br />

b. ATCGC<br />

c. CGCTA<br />

d. GCTAT<br />

e. GCGAA<br />

2. Une mutation non-sens (CAGTAG) du gène <strong>de</strong><br />

l’apolipoprotéine C-I (apoC-I) engendre une<br />

modification du site spécifique (CAG/CTG) <strong>de</strong><br />

l’enzyme <strong>de</strong> restriction Pvu II.<br />

Parmi les techniques suivantes, toutes permettent <strong>de</strong><br />

faire le diagnostic <strong>de</strong> la présence ou <strong>de</strong> l’absence <strong>de</strong><br />

cette mutation chez un sujet, sauf une, indiquer<br />

laquelle<br />

a. extraction d’ARN + RT-PCR + digestion par Pvu<br />

II + électrophorèse avec BET<br />

b. extraction d’ADN + PCR + digestion par Pvu II +<br />

électrophorèse avec BET<br />

c. extraction d’ADN + PCR + électrophorèse +<br />

hybridation avec une son<strong>de</strong> ASO<br />

d. extraction d’ARN + digestion par Pvu II +<br />

électrophorèse avec BET<br />

e. extraction d’ADN + digestion par Pvu II +<br />

Southern blot avec son<strong>de</strong> du gène apoC-I<br />

ASO = allele specific oligonucleoti<strong>de</strong> ; BET = bromure<br />

d’éthidium ; PCR = polymerase chain reaction ; RT<br />

= reverse transcription ;<br />

3. Un polymorphisme du gène <strong>de</strong> l’apolipoprotéine C-<br />

II (apoC-II) a été mis en évi<strong>de</strong>nce sur l’ADN <strong>de</strong>s<br />

sujets après digestion par l’enzyme <strong>de</strong> restriction<br />

Taq I, puis électrophorèse et Southern blot révélé<br />

par une son<strong>de</strong> cDNA <strong>de</strong> l’apoC-II.<br />

Le sujet n° 6 vu sur le film <strong>de</strong> l’autoradiographie a<br />

tous les caractères suivants sauf un, indiquer<br />

lequel :<br />

O<br />

H<br />

a. il est le fils <strong>de</strong>s sujets n° 1 et 3<br />

b. il a un autre site <strong>de</strong> restriction Taq I, 300 pb plus<br />

loin<br />

c. il a un site <strong>de</strong> restriction Taq I <strong>de</strong> plus que les<br />

sujets n° 2 et 4<br />

d. il est homozygote pour le fragment <strong>de</strong> restriction<br />

le plus court (3,5 Kb)<br />

e. il est homozygote pour le fragment <strong>de</strong> restriction<br />

le plus long (3,8 Kb)<br />

<strong>4.</strong> Le promoteur du gène <strong>de</strong> l’apolipoprotéine A-II<br />

(apoA-II) contient toutes les séquences suivantes,<br />

sauf une, indiquer laquelle<br />

a. TGACTCA (élément cis-régulateur TRE)<br />

b. TATA (boîte TATA)<br />

c. CCAT (boîte CAT ou CAAT)<br />

d. GGCCC (boîte GC)<br />

e. ATG (codon d’initiation)<br />

5 . Au cours <strong>de</strong> la transcription du gène d’une<br />

protéine extracellulaire, la RNA polymerase II agit<br />

en fonction <strong>de</strong> l’orientation indiquée <strong>de</strong>s molécules<br />

suivantes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. elle transcrit chaque intron en commençant par<br />

son site donneur<br />

b. elle parcourt le brin antisens du gène <strong>de</strong> 3’ vers 5’<br />

c. elle achève la synthèse du transcrit primaire par<br />

son extrémité 5’-phosphate<br />

d. elle transcrit la séquence qui co<strong>de</strong>ra pour les<br />

aci<strong>de</strong>s aminés du signal-pepti<strong>de</strong> avant celle qui<br />

co<strong>de</strong>ra pour le reste <strong>de</strong> la protéine<br />

e. elle commence la transcription en séparant les<br />

<strong>de</strong>ux brins <strong>de</strong> l’ADN du gène à partir <strong>de</strong> l’extrémité<br />

5’ <strong>de</strong> l’exon 1<br />

6. Selon les gènes, <strong>de</strong>s combinaisons <strong>de</strong> structure<br />

peuvent être obtenues par épissage alternatif<br />

aboutissant à <strong>de</strong>s transcrits différents. Toutes les<br />

combinaisons d’exons suivantes sont possibles,<br />

sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. l’exon 5 peut être suivi <strong>de</strong> l’exon 7<br />

b. il peut y avoir plusieurs exons avec un codon <strong>de</strong><br />

terminaison, dont un seul sera épissé à la suite <strong>de</strong><br />

l’avant-<strong>de</strong>rnier exon du même gène<br />

c. l’exon 4 peut être suivi <strong>de</strong> l’exon 3<br />

d. plusieurs promoteurs peuvent initier la<br />

transcription du même gène par plusieurs exons 1,<br />

chacun étant épissé ensuite avec le même exon 2<br />

e. le même lasso peut contenir l’intron 3, l’exon 4 et<br />

l’intron 4<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 26<br />

7. La prolyl-tRNA synthétase est spécifique <strong>de</strong> toutes<br />

les actions suivantes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

a. elle hydrolyse <strong>de</strong>ux liaisons riches en énergie<br />

b. elle con<strong>de</strong>nse la proline sur l’AMP par une liaison<br />

anhydri<strong>de</strong> d’aci<strong>de</strong><br />

c. elle reconnaît la proline, aci<strong>de</strong> aminé<br />

d. elle reconnaît un tRNA dont l’anticodon est GGG<br />

e. elle produit un aci<strong>de</strong> pyrophosphorique<br />

8. A différentes étapes <strong>de</strong> la traduction du fragment<br />

<strong>de</strong> messager suivant, les sites aci<strong>de</strong> aminé et<br />

pepti<strong>de</strong> d’un ribosome sont occupés <strong>de</strong> toutes les<br />

façons suivantes, sauf une, indiquer laquelle :<br />

…CUG ACU CCU GAG GAG AAG UCU…<br />

a. site P : tRNA Pro~Pro-Thr-Leu-…<br />

site A : tRNA Glu~Glu<br />

b. site P : tRNA Glu~Glu<br />

site A : tRNA Glu~Glu-Pro-Thr-Leu-…<br />

c. site P : tRNA Glu~Glu-Pro-Thr-Leu-…<br />

site A : rien<br />

d. site P : tRNA Glu~Glu-Pro-Thr-Leu-…<br />

site A : tRNA Glu~Glu<br />

e. site P : tRNA Glu~Glu-Glu-Pro-Thr-Leu-…<br />

site A : tRNA Lys~Lys<br />

9. Lors <strong>de</strong> la progression d’une fourche <strong>de</strong><br />

réplication, les mécanismes suivants<br />

accompagnent la synthèse du DNA, sauf un,<br />

indiquer lequel :<br />

a. La DNA primase synthétise <strong>de</strong>s amorces d’ARN<br />

sur le brin retardé<br />

b. La DNA polymérase d hydrolyse les nucléoti<strong>de</strong>s<br />

mésappariés en 3’ <strong>de</strong>s brins nouveaux<br />

c. La DNA ligase associe les fragments d’Okazaki<br />

sur le brin retardé<br />

d. L’hélicase (topoisomérase) déroule la double<br />

hélice en avant <strong>de</strong> la polymérase<br />

e. La DNA polymérase d ajoute <strong>de</strong>s nucléoti<strong>de</strong>s à<br />

l’extrémité 5’ <strong>de</strong>s fragments d’Okazaki<br />

10. La réparation par excision <strong>de</strong> base permet <strong>de</strong><br />

corriger toutes les lésions du DNA suivantes, sauf<br />

une, indiquer laquelle :<br />

a. hydrolyse d’une liaison N-osidique (site sans<br />

base)<br />

b. dimère <strong>de</strong> thymines (cyclobutylique)<br />

c. 5-bromouracile (analogue structural <strong>de</strong> l’uracile)<br />

d. désamination d’une adénine (hypoxanthine)<br />

e. méthylation d’une cytosine (5-méthylcytosine)<br />

11. Une structure Holliday peut se produire par<br />

croisement <strong>de</strong>s brins <strong>de</strong> <strong>de</strong>ux DNA homologues<br />

provenant <strong>de</strong>s molécules suivantes, sauf une,<br />

indiquer laquelle :<br />

a. <strong>de</strong>ux gènes homologues, sur <strong>de</strong>s chromosomes<br />

différents<br />

b. <strong>de</strong>ux chromosomes appariés au cours <strong>de</strong> la<br />

méiose<br />

c. <strong>de</strong>ux DNA fils après la réplication<br />

d. <strong>de</strong>ux gènes dupliqués l’un à la suite <strong>de</strong> l’autre (en<br />

tan<strong>de</strong>m)<br />

e. <strong>de</strong>ux chromosomes au cours <strong>de</strong> la réparation<br />

homologue<br />

EXERCICE<br />

9 questions à choix multiples (Cocher les cases vraies pour chaque QCM)<br />

Soit l’ADN complémentaire double brin (ADNc) qui a été synthétisé à partir <strong>de</strong> l’ARN messager <strong>de</strong> l’apolipoprotéine A-II<br />

(apoA-II). La séquence du brin sens <strong>de</strong> cet ADNc est :<br />

1 AGGCACAGAC ACCAAGGACA GAGACGCTGG CTAGGCCGCC<br />

41 CTCCCCACTG TTACCAACAT GAAGCTGCTC GCAGCAACTG<br />

81 TGCTACTCCT CACCATCTGC AGCCTTGAAG GAGCTTTGGT<br />

121 TCGGAGACAG GCAAAGGAGC CATGTGTGGA GAGCCTGGTT<br />

161 TCTCAGTACT TCCAGACCGT GACTGACTAT GGCAAGGACC<br />

201 TGATGGAGAA GGTCAAGAGC CCAGAGCTTC AGGCCGAGGC<br />

241 CAAGTCTTAC TTTGAAAAGT CAAAGGAGCA GCTGACACCC<br />

281 CTGATCAAGA AGGCTGGAAC GGAACTGGTT AACTTCTTGA<br />

321 GCTATTTCGT GGAACTTGGA ACACAGCCTG CCACCCAGTG<br />

361 AAGTGTCCAG ACCATTGTCT TCCAACCCCA GCTGGCCTCT<br />

401 AGAACACCCA CTGGCCAGTC CTAGAGCTCC TGTCCCTACC<br />

441 CACTCTTTGC TACAATAAAT GCTGAATGAA TCC<br />

Pour faciliter les comptes, la séquence a été divisée en groupes <strong>de</strong> 10 lettres et le numéro du premier<br />

nucléoti<strong>de</strong> <strong>de</strong> chaque ligne a été mentionné.<br />

12. Parmi les constituants suivants, quels sont ceux<br />

qui ont été utilisés pour la synthèse <strong>de</strong> cet ADNc :<br />

a. une ARN polymérase<br />

b. une transcriptase réverse<br />

c. une ADN ligase<br />

d. les ribonucléosi<strong>de</strong>s triphosphates : ATP, UTP,<br />

GTP, CTP<br />

e. les désoxyribonucléosi<strong>de</strong>s triphosphates :<br />

dATP, dTTP, dGTP, dCTP<br />

13. Cet ADNc:<br />

a. comporte la séquence du promoteur du gène <strong>de</strong><br />

l’apoA-II<br />

b. reproduit la séquence <strong>de</strong> l’ARNm <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

(hors mis la coiffe et la queue polyA)<br />

c. reproduit la séquence <strong>de</strong> tous les exons du gène<br />

<strong>de</strong> l’apoA-II<br />

d. reproduit en partie la séquence du brin sens du<br />

gène <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

e. reproduit en partie la séquence du brin anti-sens<br />

du gène <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 27<br />

1<strong>4.</strong> Les <strong>de</strong>ux séquences <strong>de</strong> 3 nucléoti<strong>de</strong>s en<br />

caractères gras comprennent :<br />

a. un site d’initiation <strong>de</strong> la transcription du gène <strong>de</strong><br />

l’apoA-II<br />

b. un signal <strong>de</strong> fin <strong>de</strong> traduction <strong>de</strong> la protéine<br />

apoA-II<br />

c. un site d’épissage du transcrit primaire <strong>de</strong><br />

l’apoA-II<br />

d. un signal <strong>de</strong> polyadénylation du transcrit<br />

primaire <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

e. un élément cis-régulateur d’expression du gène<br />

<strong>de</strong> l’apoA-II<br />

15. Sachant que le gène <strong>de</strong> l’apoA-II comporte 4<br />

exons et que le 1 er exon n’est pas traduit, cet<br />

ADNc :<br />

a. a la même longueur que le gène <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

b. a la même longueur que la séquence du gène<br />

<strong>de</strong> l’apoA-II située entre les sites d’initiation et <strong>de</strong><br />

terminaison <strong>de</strong> la transcription<br />

c. a la même longueur que le transcrit primaire <strong>de</strong><br />

l’apoA-II<br />

d. a la même longueur que la séquence codante<br />

du gène <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

e. a la même longueur que l’ARNm <strong>de</strong> l’apoA-II<br />

(hors mis la coiffe et la queue polyA)<br />

16. Vous souhaitez à partir <strong>de</strong> ce cDNA, synthétiser<br />

par réaction <strong>de</strong> polymérisation en chaîne (PCR), le<br />

fragment situé entre les <strong>de</strong>ux séquences en<br />

caractères gras. Parmi les constituants suivants,<br />

quels sont ceux que vous utiliserez pour cette<br />

synthèse :<br />

a. l’oligonucléoti<strong>de</strong> : 5’-<br />

ATGAAGCTGCTCGCAGC-3’<br />

b. l’oligonucléoti<strong>de</strong> : 5’-<br />

CAGCCTGCCACCCAGTGA-3’<br />

c. l’oligonucléoti<strong>de</strong> : 5’-<br />

TCACTGGGTGGCAGGCTG-3’<br />

d. les didésoxyribonucléosi<strong>de</strong>s triphosphates :<br />

ddATP, ddTTP, ddGTP, ddCTP<br />

e. une ADN polymérase<br />

17. La température <strong>de</strong> fusion du produit <strong>de</strong> PCR<br />

ainsi obtenu :<br />

a. est i<strong>de</strong>ntique à celle d’un fragment <strong>de</strong> même<br />

taille, constitué uniquement <strong>de</strong> désoxythymidylate<br />

(polydT)<br />

b. est supérieure à celle d’un fragment <strong>de</strong> même<br />

taille, constitué uniquement <strong>de</strong> désoxythymidylate<br />

(polydT)<br />

c. est supérieure à celle d’un fragment <strong>de</strong> même<br />

taille, constitué uniquement <strong>de</strong> désoxyadénylate<br />

(polydA)<br />

d. est supérieure à celle d’un fragment <strong>de</strong> même<br />

taille, constitué uniquement <strong>de</strong> désoxyguanylate<br />

(polydG)<br />

e. est supérieure à celle d’un fragment <strong>de</strong> même<br />

taille, constitué uniquement <strong>de</strong> désoxycytidylate<br />

(polydC)<br />

18. Le produit <strong>de</strong> PCR ainsi obtenu, est soumis à une<br />

digestion par l’enzyme <strong>de</strong> restriction HypCH4 V<br />

pour laquelle il n’existe qu’un site <strong>de</strong> restriction<br />

dans l’ADNc <strong>de</strong> l’apoA-II (situé aux nucléoti<strong>de</strong>s 98-<br />

101), puis à une électrophorèse en gel d’agarose.<br />

Sachant que l’enzyme HypCH4 V hydrolyse l’ADN<br />

<strong>de</strong> la façon suivante :<br />

5’…TG CA…3’<br />

3’…AC GT…5’<br />

vous observerez à l’électrophorèse :<br />

a. <strong>de</strong>ux fragments <strong>de</strong> 41 pb et 262 pb<br />

b. <strong>de</strong>ux fragments <strong>de</strong> 99 pb et 342 pb<br />

c. quatre fragments <strong>de</strong> 41 pb, 99 pb, 262 pb et 342<br />

pb.<br />

d. trois fragments <strong>de</strong> 99 pb, 342 pb et 473 pb.<br />

e. trois fragments <strong>de</strong> 41 pb, 303 pb et 473 pb.<br />

19. Une délétion <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux nucléoti<strong>de</strong>s numérotés<br />

100-101 dans la séquence d’ADNc sera<br />

accompagnée :<br />

a. d’un décalage du cadre <strong>de</strong> lecture<br />

b. <strong>de</strong> la synthèse d’une protéine tronquée (plus<br />

courte que la protéine normale)<br />

c. d’un défaut d’épissage du transcrit primaire<br />

d. d’un changement du 14 ème aci<strong>de</strong> aminé <strong>de</strong><br />

l’apoA-II (le 1 er étant la méthionine)<br />

e. <strong>de</strong> la disparition du site <strong>de</strong> restriction <strong>de</strong> l’enzyme<br />

<strong>de</strong> restriction HypCH4 V dans l’ADNc<br />

20. La séquence d’ADNc d’un sujet homozygote pour<br />

la délétion <strong>de</strong>s nucléoti<strong>de</strong>s numérotés 100-101 est<br />

soumise comme dans la question 4 à une<br />

amplification du fragment situé entre les <strong>de</strong>ux<br />

séquences en caractères gras, puis à une digestion<br />

par l’enzyme <strong>de</strong> restriction HypCH4 V.<br />

Vous observerez à l’electrophorèse en gel<br />

d’agarose :<br />

a. trois fragments <strong>de</strong> 41 pb, 262 pb et 303 pb<br />

b. un fragment <strong>de</strong> 301 pb<br />

c. un fragment <strong>de</strong> 473 pb<br />

d. <strong>de</strong>ux fragments <strong>de</strong> 41 pb et 262 pb<br />

e. <strong>de</strong>ux fragments <strong>de</strong> 99 pb et 342 pb<br />

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Cahier d'Exercices en Biochimie / <strong>PCEM1</strong> <strong>Biologie</strong> Moléculaire / 28<br />

ANNEXE I .<br />

1er<br />

Nucléoti<strong>de</strong><br />

U<br />

C<br />

A<br />

G<br />

CODE GENETIQUE<br />

2ème<br />

Nucléoti<strong>de</strong><br />

U C A G<br />

Phe Ser Tyr Cys<br />

“ “ “ “<br />

Leu “ Stop Stop<br />

“ “ Stop Trp<br />

“ Pro His Arg<br />

“ “ “ “<br />

“ “ Gln “<br />

“ “ “ “<br />

Ileu Thr Asn Ser<br />

“ “ “ “<br />

“ “ Lys Arg<br />

Met “ “ “<br />

Val Ala Asp Gly<br />

“ “ “ “<br />

“ “ Glu “<br />

“ “ “ “<br />

3ème<br />

Nucléoti<strong>de</strong><br />

U<br />

C<br />

A<br />

G<br />

U<br />

C<br />

A<br />

G<br />

U<br />

C<br />

A<br />

G<br />

U<br />

C<br />

A<br />

G<br />

ANNEXE II.<br />

- Co<strong>de</strong>s <strong>de</strong>s aci<strong>de</strong>s aminés<br />

A: ala F: phe K: lys P: pro T: thr<br />

C: cys G: gly L: leu Q : gln V: val<br />

D: asp H: his M: met R: arg W: trp<br />

E: glu I: ile N: asn S: ser Y: tyr<br />

Faculté <strong>de</strong> Mé<strong>de</strong>cine Pierre & Marie Curie

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